奥林巴斯生化分析仪问题与解答.docx

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奥林巴斯生化分析仪问题与解答

奥林巴斯生化分析仪五十问(应用部分)

(1)问题:

工作结束之后不能再次开始工作或正常关机。

(2)问题:

是否每天定标就能保证结果稳定?

(3)问题:

病人输液时加入右旋糖苷影响总蛋白的结果吗?

(4)问题:

可以用总蛋白试剂测定尿或脑脊液中的蛋白吗?

(5)问题:

奥林巴斯水平I和水平II质控血清可以用在干化学的仪器上吗?

(6)问题:

可以用CKMB试剂盒测定CKBB吗?

(7)问题:

OSR6121的葡萄糖试剂可以测定CSF(脑脊液)中的葡萄糖吗?

(8)问题:

如何防止ALT对LDH的交叉污染?

(9)问题:

EDTA血浆影响苦味酸法的肌酐吗?

(10)问题:

高葡萄糖的标本影响苦味酸法的肌酐吗?

(11)问题:

奥林巴斯DBIL直接胆红素试剂所测定结果是否包含△胆红素?

(12)问题:

为什么TP总蛋白的试剂空白为负数?

(13)问题:

为什么有些质控CKMB结果大于CK?

(14)问题:

APOA1/APOB是依照IFCC还是CDC标准追踪的?

(15)问题:

葡萄试剂可以测定尿标本吗?

(16)问题:

为什么有时HBDH的结果大于LDH?

LDHopt与LDHIFCC有什么关系?

(17)问题:

新换了一个试剂,有反应曲线、因数是正确的、方法学、读点、波长均无问题,结果是“0”,为什么?

(18)问题:

新换了一个厂家的肌酐试剂,重新定标后,结果均为1500多,是何种原因?

(19)问题:

经常丢试剂,但仅限某一项目,原因是什么?

(20)问题:

给一新项目定标时,报警ACALincomplete,为什么?

(21)问题:

新上了一个实验项目,定标不通过,报CalibrationError,是什么原因?

(22)问题:

如果测定的标本特别多,如何给一个项目设定多瓶试剂?

(23)问题:

经常发现某一种试剂用的特别快,比如早上检查有100个TP试剂,做四、五十个肝功后仪器就报警没有试剂了,可能是什么原因?

(24)问题:

如何设定奥林巴斯带样品空白的TBIL/DBIL?

(25)问题:

新设定一个计算实验后,仪器不能正常工作,在退出时显示“LIHReagentTestNo./CalculatedTestNo.MissMatch”,是何原因?

(26)问题:

新设定一个计算实验后,仪器不能正常工作,在退出时显示“TotalSample:

Item”,是何原因?

(27)问题:

新设定一个计算实验后,仪器不能正常工作,在退出时显示“R1+DilutionVolume:

Item”,是何原因?

(28)问题:

新设定一个计算实验后,仪器不能正常工作,在退出时显示“NumberofMuti:

Item”,是何原因?

(29)血清磷的测定有时偏高1倍以上,复查结果正常,为什么?

(30)溶血、黄疸、乳糜血对临床生化的那些项目有干扰?

(31)测定结果后面有时出现标志“u“,是什么原因?

(32)怎么样判断K,Na,Cl电极膜破裂?

(33)TG测定时,质控高、低值都符合要求,病人结果偏低,为什么?

(34)ISE定标时,SLOPE值突然下降10点以上,为什么?

(35)如何在AU400/600/640仪器实验自动重做?

(36)为什么要定标?

多长时间要定标一次?

(37)AU400/600/640在编参数时有哪几项基本点?

(38)Olympus生化分析仪可以做前带检查吗?

(39)CKMB﹥CK会出现在什么情况?

(40)溶血标本可测定CKMB吗?

(41)CKMB正常,CK特别高可能会出现在什么情况的病人?

(42)OlympusCKMB试剂中抗M亚基抗体的特异性如何?

(43)Olympus质控或定标液中应选哪种方法的靶值?

(44)标本的某一项或几项的结果是零或负数,复查后正常,其它标本的结果和质控结果均正常,可能是什么原因?

(45)在酶项目分析中“SerumStart”(血清启动)“SubstrateStart”(底物启动)有什么区别?

(46)如何判断水的质量?

(47)如何排除仪器方面的问题?

(48)甘油三酯会发生类似免疫反应的前带现象吗?

(49)如何判断试剂针与搅拌棒的交叉污染?

(50)如何判断比色杯的交叉污染?

(1)问题:

工作结束之后不能再次开始工作或正常关机。

原因:

最常见的原因是打印机处于实时打印状态(DataLogList或RealtimeReport状态),打印机可能缺纸、卡纸、被误操作为暂停或关机等。

解决方法:

排除打印机故障,点击<仪器状态><(6)DPR状态>,点击,按Resume继续打印,按Cancel取消打印操作。

(2)问题:

是否每天定标就能保证结果稳定?

答:

不一定,可能您在定标时并不是每天都新溶解定标液,因为定标液复溶后有一些项目不稳定,比如:

TBIL、DBIL(见光分解)、GLU(细菌分解)、酶项目(冰冻后复溶降解)。

解决方法:

以上项目在定标时一定要新溶解一瓶定标液,至少溶解三十分钟,在一小时内测定完成。

(3)问题:

病人输液时加入右旋糖苷影响总蛋白的结果吗?

答:

影响。

右旋糖苷存在血清中可引起轻度乳糜,双缩脲法测定总蛋白会使右旋糖苷形成沉淀及绿色化合物而导致错误的结果,偏高的结果最多可以达到20克/升。

(4)问题:

可以用总蛋白试剂测定尿或脑脊液中的蛋白吗?

答:

不能。

因为敏感度太低。

应选用OSR6170(尿/脑脊液蛋白试剂盒)。

(5)问题:

奥林巴斯水平I和水平II质控血清可以用在干化学的仪器上吗?

答:

不能。

常规的质控血清在奥林巴斯仪器上测定时被试剂稀释,而干化学的质控系统质控液直接加到干片上。

相对于常规质控,干化学质控中的保护剂、添加剂、稳定剂的浓度相对较高。

实际上,没有任何一种质控同时适用于干化学与湿化学。

(6)问题:

可以用CKMB试剂盒测定CKBB吗?

答:

理论上可以,但提供的标本中必须不含有CKMB,这些可以用电泳法来检查。

(7)问题:

OSR6121的葡萄糖试剂可以测定CSF(脑脊液)中的葡萄糖吗?

答:

可以,因为与尿标本一样,都不含有蛋白质,但是前没有官方报道。

(8)问题:

如何防止ALT对LDH的交叉污染?

答:

在ALT试剂中加入终浓度为5mmol/L的EDTA,可以降低约50%的交叉污染(可降低至14U/L的LDH)。

(9)问题:

EDTA血浆影响苦味酸法的肌酐吗?

答:

影响。

EDTA抑制肌酐与苦味酸反应,使结果偏低。

(10)问题:

高葡萄糖的标本影响苦味酸法的肌酐吗?

答:

苦味酸与肌反应不特异,假肌酐如:

酮体、抗坏血酸盐、丙酮酸盐、葡萄糖和尿酸都对Jaffe氏反应有明显的扰作用。

通过调整NaOH与苦味酸的浓度,调节反应温度与测量窗口,可以减低这些竟争反应,奥林巴斯改良的Jaffe法可以做到葡萄糖浓度达到17mmol/L没有干扰。

(11)问题:

奥林巴斯DBIL直接胆红素试剂所测定结果是否包含△胆红素?

答:

是。

因为奥林巴斯DBIL直接胆红素试剂带有样品空白,可以扣除△胆红素的干扰。

所以有用户说结果太低,不是太低,是其它试剂的结果太高了。

(12)问题:

为什么TP总蛋白的试剂空白为负数?

答:

在测定试剂空白时,因为当试剂II加入后,在副波长660nm的吸光度大于主波长540nm的吸光度。

用双波长测定,试剂空白为负数。

(13)问题:

为什么有些质控CKMB结果大于CK?

答:

因为质控中有一些添加成份,可能动物组织(牛脑),此组织中含有CKBB,所以CKMB的结果大于CK,但不应大于CK的二倍。

(14)问题:

APOA1/APOB是依照IFCC还是CDC标准追踪的?

答:

中国是最早是由卫生部老年病研究所根据美国疾病控制中心CDC引进的此项目,美国CDC的结果比国际卫生组织WHO低,APOA1乘以0.91,APOB乘以0.79就与国内一致。

一般欧州公司的产品都是IFCC标准的。

(15)问题:

葡萄试剂可以测定尿标本吗?

答:

可以。

建议用已糖激酶法的葡萄糖试剂。

葡萄糖氧化酶法的试剂会受尿中Vc的干扰。

(16)问题:

为什么有时HBDH的结果大于LDH?

LDHopt与LDHIFCC有什么关系?

答:

从某种意义上讲,HBDH是LDH的一部分,但是可能由于方法学(底物、缓冲液、PH值等)的不同,会出现HBDH的结果大于LDH,如果LDH是opt法就没有这种现象。

LDHopt是欧洲的方法,底物是丙酮酸。

LDHIFCC的底物是乳酸,两者的正常值范围相比LDHopt比LDHIFCC大约高2.2倍。

(17)问题:

新换了一个试剂,有反应曲线、因数是正确的、方法学、读点、波长均无问题,结果是“0”,为什么?

答:

在参数中CorrectionFactorA常规下是:

1.0000,不小心被改为了0。

(18)问题:

新换了一个厂家的肌酐试剂,重新定标后,结果均为1500多,是何种原因?

答:

在参数中CorrectionFactorB常规下是:

0.0000,不小心被改为了1500。

(19)问题:

经常丢试剂,但仅限某一项目,原因是什么?

答:

最常见的原因是您没有使用原厂的试剂瓶,国产的试剂瓶的形状可能不规则,在取试剂的过程中试剂针碰到试剂瓶的瓶口,就会报警设有试剂。

(20)问题:

给一新项目定标时,报警ACALincomplete,为什么?

答:

最可能的有以下几种原因:

①定标液的位置不正确;

②定标液所用的样品杯太小、太低,不能被仪器探测到(比如有些用户用离心管);

③试剂量不足,试剂I或试剂II任何一瓶试剂小于2ml(旧版)或低于报警测试数目(新版);

④没有定标申请而放入空白(蓝)和/或定标(黄)架子。

(21)问题:

新上了一个实验项目,定标不通过,报CalibrationError,是什么原因?

答:

在定标过种中如果有任何报警,将会定标失败:

①在定标过程中定标液不足;(#)

②Rate法的项目线性不好或范围设置不正确;(*)

③试剂空白超出所设定的范围或波长设定错误;(Y、y、U、u)

④在P-B-I定标参数中,因数范围过窄,先报CalibrationFactorOverRange,后报CalibrationError。

(22)问题:

如果测定的标本特别多,如何给一个项目设定多瓶试剂?

答:

奥林巴斯的生化分析仪最多可以给一个项目设定九瓶试剂:

点击<仪器状态>

<(0)试剂状态>,先设一瓶试剂,再用光标选定一个空位置,点后,选定项目、瓶子的规格,退出后,最后设定的为第一瓶试剂,以前的为第二瓶试剂,依此类推。

(23)问题:

经常发现某一种试剂用的特别快,比如早上检查有100个TP试剂,做四、五十个肝功后仪器就报警没有试剂了,可能是什么原因?

答:

在P-Y-A中,最下面是LIHReagentTestName:

您一定是选定的此项目,它的意义是,LIH的测定与此项目共用一瓶试剂,但这个地方的误选,仪器不会了生错误而吸此项目的试剂,在另外一个画面P-Y-C(Round)中,LIHMeasure:

中默认是“Selected”,被不小心改成了“ALL”,也就是说您让仪器每个标本都做LIH(血清信息),用的是您所选定的试剂。

(24)问题:

如何设定奥林巴斯带样品空白的TBIL/DBIL?

答:

按以下六步设定实验参数:

1.首先,在[Parameter]-[CommonTestParameter]-[TestName]编TBIL与DBIL的实验名称,然后在91号与92号编TBILb与DBILb(总胆红素与直接胆红素的空白实验)

2.其次,在[Parameter]-[SpecificTestParameter]中,编辑TBIL与91TBILb的参数(详见试剂盒内的说明书),DBIL与92DBILb的参数。

请注意TBIL与91TBILb的参数要完全一样,DBIL与92DBILb的参数要完全一样。

3.[Parameter]-[Inter-RelatedTests]-[SampleBlank]中,选ColorTest(颜色实验)为TBIL与DBIL,BlankTest[空白实验]为91TBILb与DBILb。

4.[Parameter]-[Calibration]-[CalibrationSpecific]中,选TBIL与DBIL为AB定标方式,91TBILb与92DBILb为MB定标方式,Factor为1.0000。

5.设试剂位:

TBIL/DBIL为红盖,TBILb/DBILb为白盖,共设定了四个试剂位。

6.[User]-[Calibration]中,TBIL与DBIL两点定标,TBILb与DBILb空白定标。

(25)问题:

新设定一个计算实验后,仪器不能正常工作,在退出时显示“LIHReagentTestNo./CalculatedTestNo.MissMatch”,是何原因?

答:

在P-Y-A中,最下面是LIHReagentTestName:

您一定是选定的此项目,这个地方的默认为96:

LIH。

(26)问题:

新设定一个计算实验后,仪器不能正常工作,在退出时显示“TotalSample:

Item”,是何原因?

答:

在P-I中,SV(标本量)+DILVOL(吐水量)+R1(试剂I)+DILVOL(吐水量)+R2(试剂II)+DILVOL(吐水量);在AU400/600/640应在150-550微升之间,在AU2700/5400应在120-440微升之间。

(27)问题:

新设定一个计算实验后,仪器不能正常工作,在退出时显示“R1+DilutionVolume:

Item”,是何原因?

答:

在P-I中,R1(试剂I)+DILVOL(吐水量)在AU400/600/640应小于300微升,AU2700/5400应小于250微升。

(28)问题:

新设定一个计算实验后,仪器不能正常工作,在退出时显示“NumberofMuti:

Item”,是何原因?

答:

在P-Q-I的质控参数编辑中,一个项目只能有两个“Muti”,表示用这两个项目画二维质控图(TwinPlot),多了或者少了仪器都不能正常工作。

(29)血清磷的测定有时偏高1倍以上,复查结果正常,为什么?

答:

交叉污染,例如仪器试剂针加完含磷酸盐的试剂(BG),再加磷试剂,当冲洗不完全时造成污染。

解决方法:

A.调整试验顺序,把磷项目放在前面,先测定即可避免污染。

B.利用仪器本身提供的抗交叉污染程序,通过增加冲洗次数可避免污染。

(30)溶血、黄疸、乳糜血对临床生化的那些项目有干扰?

答:

溶血、黄疸、乳糜对临床项目的干扰见以下表格(本结果仅供参考)

表1:

溶血对部分生化项目的干扰

无干扰

(﹥1000mg/dLHb)

低干扰

(500~1000mg/dL)

高干扰

(100-500mg/dL)

极高干扰

(﹤100mg/dL)

ALB(BCG)

APOA1、APOB

Ca、CHE、CREA

GLU(HK)、

UA、UREA

ALP(IFCC)

AMYL、ALT

GGT(Szasz)

GLU(PAP)、Mg

PHOS、TG

ACP*、ALP(AMP)

CK、AST*

HDL

TBIL、DBIL

CKMB

HBDH*

LDH*

注:

“*”表示红细胞中含有分析成份

表2:

黄疸对部分生化项目的干扰

无干扰

(﹥60mg/dL)

低干扰

(20~60mg/dL)

高干扰

(7~20mg/dL)

极高干扰

(﹤7mg/dL)

ALB(BCG)、ALP(AMP)

AMYL、Ca、CHE、CK、GGTSzasz、GLU(HK)、AST、HBDH、Fe、LDH、PHOS、TG、UA、UREA、

IgG、IgA、IgM

AMYL-P

CKMB

Mg

TP

CHOL

CREA

GLU(PAP)

ACP

HDL

表3:

乳糜对部分生化项目的干扰

无干扰

(﹥1000mg/dL)

低干扰

(500~1000mg/dL)

高干扰

(200~500mg/dL)

极高干扰

(﹤200mg/dL)

ALB、ALP、AMY、APOA1、APOB、Ca、CHE、CHOL、CKMB、CK、CREA、Fe、

GGTSzasz、HDL

GLU(HK)、HBDH、LDH、TP、UA、UREA

PHOS

ACP

ALP(AMP)

AMYL-P

TBIL、DBIL

AST、ALT

Lipase、Mg

GLU(PAP)

(31)测定结果后面有时出现标志“u“,是什么原因?

答:

试剂空白的吸光度超出设定范围。

解决方法:

A如为试剂变质,则更换试剂;B重新调整试剂空白的吸光度范围;C如更换灯泡或做过保养,重新做杯空白(PHOTOCAL)。

(32)怎么样判断K,Na,Cl电极膜破裂?

答:

如果电极膜破裂,在ISE诊断中测定高值标准,底值标准和MID的电位值,如果三者电位值一致,没有明显区别。

(33)TG测定时,质控高、低值都符合要求,病人结果偏低,为什么?

答:

可能的原因是用户所用定标液为甘油(无色水剂),试剂中的关键酶(脂肪酶)量不足或者活性中够,就会造成这种现象。

(34)ISE定标时,SLOPE值突然下降10点以上,为什么?

答:

Na,K,ClSlope值从53,55,52突然下降为34,38,40.常见原因:

A.定标液敞口放置时间过长,更换新定标液。

B.清洗混匀棒。

C.更换三通管。

(35)如何在AU400/600/640仪器实验自动重做?

答:

⑴.[Parameter]-[System]-[System]中:

RoutineTestRequsition由Sequential—RackNo;Auto/StandardRepeat:

由Stanard→Auto。

⑵在Online参数中:

改成Batch-None-Batch-None。

⑶报警限确定(仅供参考):

见表1。

⑷重做规则以及相关实验:

[Parameter]-[RepeatParameter]-[RepeatCommon]中设置:

RepeatNormalorMode:

#;?

;*;!

;G;P;T

DilutionorMode:

@;$;D;B;&;Z;F

相关试验:

ALB—TP;DBIL—TBIL;CKMB—CK;TG—LDL。

表4:

各项目建议报警限(仅供参考)国际单位

序号

项目

报警范围

序号

项目

报警范围

1

ALT

2~2000

17

GLU

2.0~50.0

2

AST

2~2000

18

UA

20~1000

3

TP

20~120

19

Ca

1.5~10

4

ALB

10~80

20

Phos

0.4~10.0

5

A/G

0.5~3.0

21

Mg

0.4~5.0

6

TBIL

3~600

22

Fe

5.0~100.0

7

DBIL

2~400

23

APOA1

0.2~3.0

8

ALP

10~2000

24

APOB

0.2~3.0

9

GGT

2~1000

25

CHO

2.0~25.0

10

LDH

30~3000

26

TG

0.2~10.0

11

HBDH

30~3000

27

HDL

0.2~10.0

12

CK

10~3000

28

LDL

1.0~20.0

13

CKMB

2~1000

29

K

1.0~10.0

14

AMYL

10~3500

30

Na

70.0~200

15

UREA

1.0~80.0

31

Cl

70.0~140.0

16

CREA

20~5000

32

CO2CP

5.0~50.0

(36)为什么要定标?

多长时间要定标一次?

答:

⑴定标的意义:

定标就是要找出一个参考点,就是一个K值(或F值)。

它是由仪器与试剂状态确定下来的。

当我们测定一个标本时,无论您是用手工的方法或全自动生化分析仪,测出来的值只是一个吸光度,这个吸光度对我们没有什么意义,我们要把这个吸光度转换成一个浓度或是酶的活性。

那就要乘上一个K值,计算并打印出来的结果对我们就有意义了。

K值就是我们通过定标找出来的。

一般上最低要求是有试剂空白与标准品。

经过仪器测定出两个吸光度:

标准浓度-试剂空白

K=————————————

A标准-A试剂空白(试剂空白通常是0)

标准液的浓度我们是知道的,这两个吸光度可以由仪器测出,这样就得出一个K值。

无论什么样的标本,用其吸光度乘以K值我们就得到了答案。

因此,K值具有非常决定性的意义,可以决定标本的准确性。

⑵K值的决定因素:

我们看看K值会受到什么影响呢?

第一,标准液的浓度一定要准确(标准液最好与标本一样是以血清为基质的)。

第二,标准液的吸光度与试剂空白的吸光度一定要准确。

吸光度受仪器状况、试剂状况的影响,如果您的仪器相当稳定,试剂是影响K值的一个主要因素。

⑶如何确定K值是正确的?

一般我们用质控血清来检查,最好是两种水平的质控来检查,如果质控结果很好,可以说K值是准确的,用这个K值计算出来病人的结果也是准确的,所以K值非常关键。

⑷K值的真面目:

K值实际上代表了斜率,截距代表试剂空白,试剂空白每天都在变化,所以K值的稳定性决定您的仪器与试剂,如果仪器与试剂都十分稳定,那K值也很稳定。

⑸多长时间定一次标合适?

这要看您试剂的稳定性,质控结果不好,有些项目做试剂空白可以解决,有些项目要做两点定标。

⑹酶的项目如何确定K值:

一是计算出来的理论K值;

TV⨯1000

K=————————

SV⨯L⨯ε

二是用有酶项目的定标液得出K值:

目前OLYMPUS公司可以提供多项目的定标液,不仅有底物类的项目,也有酶类的项目。

(37)AU400/600/640在编参数时有哪几项基本点?

答:

Samplevol(样品量):

2~50μl,可以按0.5μl为单位增减。

Dilvol.(稀释液-吐水量):

一般建议样品量少于5μl时,加10μl水。

Reagent1vol(第一试剂量):

25-300μl,可以按1μl为单位增减。

Dilvol(稀释液-吐水量):

一般用浓缩试剂时才用。

Reagent2vol(第二试剂量):

25-300μl,可以按1μl为单位增减。

Dilvol(稀释液-吐水量):

一般用浓缩试剂时才用。

第二试剂是固定的10-11点之间加入的。

WavelengthPri:

(主波长)Sec.(付波长)

测定波长共有十三种可以选择:

340,380,410,450,520,540,570,600,660,700,750,800nm。

Method(方法学)共六种:

End,Rate,Fixed;End1,Rate1,Fixed1。

前三种与后三种的差别为:

前三种是以试剂为空白的,后三种是以比色杯为空白的。

Reaction(反应方向):

+,-。

End与Fixed法不起作用,但是Rate法一定要输正确。

请记住!

向下反应一般来说只有三种:

AST、ALT、HBDH,其它均为向上反应。

Point1FstLst

Point2FstLst

(读点设置)Point1为主测定,Point2为辅助测定。

End法:

a)单试剂:

一般均为0--27,特例:

ALB为0—4;

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