检验标本的采集与处理 新的doc.docx

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各种标本的采集

一、血液标本的采集

（一）毛细血管采血

常用采血部位为耳垂和手指末梢，凡用血量较少的检查，一般从手指取血，手指采血操作方便，可获得较多血量，成人以左手无名指为宜；婴幼儿可从拇指或足跟部采血。

严重烧伤患者，可选择皮肤完整处采血。

（二）静脉血标本采集

【目的】

1.全血标本将人体内血液采集到采血袋内所形成的混合物称为全血，即包括血细胞和血浆的所有成分。

测定血沉、血常规及血液中某些物质如血糖、尿素氮、肌酐、尿酸、肌酸、血氨的量。

2.血清标本全血自然凝固后析出的液体。

用于生物化学、免疫学检测等，如血清酶、脂类、电解质、肝功能。

3.血培养标本培养检测血液中的病原菌。

【注意事项】

1.采血时，严格执行查对制度和无菌操作原则。

2.应尽量在使用止血带1min内采血；肘部采血不要拍打手臂。

3.当需要重复使用止血带时，推荐再次使用前应保证至少间隔2分钟，或者使用另一上臂。

4.采血时只能向外抽不能向静脉内推，以免注入空气。

5.采集标本的方法、时间、采血量要正确，抽取血生化时应空腹采集。

【常见溶血原因】

（1）注射器、针头或容器不干燥；

（2）压脉带捆扎时间太久，淤血过久；（3）穿刺不畅，损伤组织过多；（4）抽血速度太慢或太快；（5）采血时反复穿刺，针尖在静脉中反复进出；（6）抗凝血混合时，振荡力量过大；（7）血液存放时间过长；（8）静脉采血时，为增加血流而挤压采血部位；（9）血液标本在送检或运输过程中，挤压或振动过大等。

【分类】

（1）血常规

使用浅紫色瓶塞真空采血管（EDTA抗凝），采集2ml静脉血后，立即颠倒混匀，至少5次，但不能剧烈震荡，如果血液有凝块，一定要重新抽血

（2）生化分析

使用绿色瓶塞真空采血管，采集3-5ml空腹血，避免溶血，避免强光照射。

（3）红细胞沉降率（血沉）

使用黑色瓶塞真空采血管（抗凝），采集1.6ml空腹血（至2ml瓶签刻度处），立即颠倒混匀，至少8次。

（4）免疫血清分析（如：

肝炎系列、甲功、激素等）

使用红色瓶塞真空采血管（不抗凝），采集3—5ml空腹血，避免溶血，避免强光照射。

（5）凝血四项

使用浅蓝色瓶塞真空采血管（枸橼酸钠抗凝），采集1.8ml空腹血（至2ml瓶签刻度处），立即颠倒混匀，至少5次。

避免溶血，避免凝固。

（6）血培养

1.血培养的指征：

当怀疑血流感染或脓毒症时，应常规行血培养。

怀疑患者有血流感染的症状有：

不明原因的发烧（＞38℃）或体温过低（＜36℃）

细胞增多（＞10,000/ul），粒细胞减少（＜1,000ul）

休克，寒颤，僵直

严重的局部感染（脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹部术后感染等）

心率异常加快

低血压或高血压

呼吸频率加快。

2.血培养样本的最佳时间：

尽可能在患者寒战或开始发热时采血

在患者接受抗生素治疗前采血

如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养。

3.血培养样本的采血套数及部位

成人一般应采2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶5－10ml，共20ml。

儿童一般只需采集需氧瓶，在保证采集血量＜1％总血量下，一般为1－3ml；采血量不足时应优先保证需氧瓶，因临床90％以上的感染为需氧菌或兼性需氧菌感染。

4.血培养样本培养瓶的消毒程序：

去掉培养瓶口的塑料瓶盖。

75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子60秒。

自然待干。

将标本注入培养瓶内。

颠倒混匀标本与肉汤，以避免血液凝集。

5.采集血培养样本的注意事项：

严格无菌操作。

检查培养瓶的有效期、有无渗漏。

一般血培养的采血量为5ml--10ml（8--10ml）为最佳量，亚急性心内膜炎患者，为提高培养阳性率，采血量增至10--15ml

血培养对无菌操作的要求比注射、采集生化、凝血等其它标本要高，所以要最先采集血培养标本。

标本采集后最好在2h内送检，不能送检应放于室温环境，不可放于冰箱内。

6.导管相关性血流感染的采血方法：

（1）保留深静脉导管者，至少两套，一套来自外周静脉，另一套来自导管，两个来源的采血时间应接近（≤5分钟）。

（2）拔除深静脉置管者，从独立的2个外周静脉部位，无菌采集2套血培养，同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室。

（三）动脉血标本采集

【目的】

采集动脉血标本，做血液气体分析。

血气分析是医学上常用于判断机体是否存在酸碱平衡失调以及缺氧和缺氧程度等。

【操作步骤】

1.部位选择：

桡动脉：

穿刺点在前臂掌侧腕关节上2cm动脉搏动明显处。

股动脉：

腹股沟扪及搏动最明显处（腹股沟韧带下1.5～2.0cm）。

2..局部消毒：

直径大于10cm。

3.抽吸肝素：

抽吸2ml入注射器内，湿润注射器内壁后，余液去掉。

4.穿刺抽血：

消毒左手的食指和中指，用左手的食指、中指固定好穿刺的动脉。

右手持注射器，在两指之间垂直或与动脉走向呈40°刺入动脉，见有鲜红色回血，右手固定穿刺针的方向及深度，左手以最快速度抽取血液。

5.拔针按压：

抽血毕，迅速拔针，同时用无菌纱布加压穿刺点止血10-15min。

6.处理标本：

立即将针头斜面刺入无菌软木塞内，以隔绝空气，并轻轻搓动注射器使血液与肝素混匀，连同化验单立即送检。

7.整理记录【注意事项】

抽吸肝素抗凝动脉血2ml，抽血后要求严加密封，不能接触空气，立即送检，天热可放冰箱中，并记录当时患者体温、给氧浓度，hb值。

二、尿液标本的采集

【操作步骤】

1.尿常规

自理患者：

清晨首次尿，1/3到1/2杯，约10ml

留置尿管：

用安尔碘消毒尿管与尿液引流袋的连接上方2cm处，用5ml一次性注射器刺入尿管，回抽活塞收集尿液。

如果取量不足先夹一会尿管，但不能超过半小时。

2.尿培养标本：

（1）中段尿留取法

女性病人：

收集标本前用清洗液冲洗干净，从前向后仔细消毒尿道区域→分开阴唇，开始排尿→排出几毫升后，不停止尿流，采集中段尿（5-10ml）。

男性病人：

回缩包皮并消毒龟头，排出几毫升后，不停止尿流，采集中段尿。

（2）导尿术留取法

方法一：

先夹闭尿管，用安尔碘消毒尿管与尿液引流袋的连接上方2cm处，用5ml一次性注射器刺入尿管，回抽活塞收集尿液。

方法二：

采用无菌操作将导尿管直接经尿道插入膀胱，获取膀胱尿液，可减少尿液样本污染，准确反映膀胱受感染情况。

但这样做有可能将下尿道细菌引入膀胱，导致继发感染。

（3）经耻骨上膀胱穿刺使用无菌注射器直接从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合两厘米处刺入膀胱吸取尿液，（用于厌氧菌培养或留置尿管困难的病人）

3.12或24小时尿标本留取12小时尿标本，嘱患者于晚7：

00排空膀胱后开始留尿至次晨7：

00留取最后一次尿液；若留取24小时尿标本，于晨7：

00排空膀胱后留取（留第一次尿后加入防腐剂）至次晨7：

00留取最后一次尿液。

常用防腐剂的用法:

（1）甲苯（或二甲苯）保持尿液的化学成分不变，常用作尿蛋白、尿糖的定量测定。

用法：

每100ml尿液中加入0.5％-1％甲苯2ml，使之形成一薄膜，覆盖于尿液的表面，防止细菌感染。

如果测定尿中的肌酸、肌酐、钾、钠、氯等需加10ml。

（2）浓盐酸保持尿液在酸性环境中，防止尿中激素被氧化。

常用于内分泌系统的检查，如17-羟类固醇、17-酮类固醇等。

用法：

24小时尿中加5-10ml。

（3）甲醛防腐和固定尿中有机成分适用于艾迪计数（12小时尿白细胞计数）等。

用法：

每30ml尿液中加40％甲醛液1滴。

【注意事项】

（1）留取尿标本时，不可混入粪便，以防粪便中的微生物使尿液变质

（2）女病人月经期间不宜留取尿标本，必要时先清洁外阴，再用干燥棉球塞住阴道口后留取（3）昏迷或尿潴留患者可通过留置导尿术留取（4）留取尿培养标本时要严格无菌操作，尽量在用药前采集标本（5）留取12小时或24小时尿标本时，应将盛尿器放于阴凉处，并根据检验要求在尿液内加入防腐剂。

若尿标本不能立即送检者，可暂存4℃冰箱，但保存不超过8h。

（6）集尿袋内的尿液不能用作培养；导尿管末端的尿液也不能用于培养，因为很难避免没有尿道菌群污染；收集或24小时尿不能用作培养。

三、粪便标本的采集

【粪便标本的采集】

1.常规标本排空膀胱，异常粪便挑取有脓血，粘液的部分，外观无异常的粪便应从中央取材，5g蚕豆大小

2.细菌培养标本用无菌棉签取中央部分或脓血、粘液部分2-5g致培养瓶内，塞紧瓶盖

3.隐血试验（0B）检查前三天禁食肉类、肝、血、含大量绿叶素的食物或含铁剂药物，三天后留取标本送检

4.寄生虫或虫卵标本虫卵：

不同部位的异常粪便5-10g蛲虫：

嘱患者睡前或清晨起床前，将透明胶带贴于肛门周围处。

阿米巴：

将便器加温至接近人体的体温，排便后标本连同便盆立即送检。

【采集粪标本的注意事项】

1.采集培养标本时，如患者无便意，用长棉签蘸0.9％氯化钠溶液，由肛门插入6-7cm，顺一个方向轻轻旋转后退出，将干棉签至于培养瓶内，盖紧瓶盖

2.如患者服用驱虫药或做血吸虫孵化检查，应该留取全部粪便

3.患者腹泻时的水样便应盛于容器中送检

四、痰标本的采集

【操作步骤】

1.用物携至病人床旁，对床号、姓名、住院号，对昏迷和新生儿要核对腕带。

2.常规标本采集嘱病人晨起漱口后用力咳出气管深处的痰液，盛于清洁容器内送检，如找癌细胞，应立即送检。

3.24小时痰标本采集标签贴于容器上，注明留痰起止时间；嘱病人将24小时（晨7时至次晨7时）痰吐于容器内，不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰内；及时送检。

4.痰培养标本采集嘱病人清晨用复方硼砂溶液漱口，再用清水漱口深吸气后用力咳嗽，将痰吐入无菌培养瓶（皿）内，立即送检。

5.无法咳痰或不合作者（如昏迷、气管切开、气管插管等）用一次性集痰器收集。

【采集痰标本的注意事项】

1.在抗生素应用前采集痰标本

2.痰标本容器应加盖，避免痰中微生物传播。

3.标本采集后1～2h内必须立即进行实验室处理如不能及时送达，应将标本暂存于4℃，但放置时间不可超过24h。

4.无痰可用3％～5％NaCl5ml雾吸约5min导痰，也可用物理疗法、体位引流、鼻导管抽吸等法取痰。

5.如查癌细胞，应用10％甲醛溶液或95％乙醇溶液固定痰液后立即送检。

6.收集痰液应在清晨，此时痰量多，痰内细菌多，提高阳性率。

7.不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰内。

8.作24小时痰量和分层检查时，应嘱患者将痰吐在无色广口瓶内，需要时可加少许石炭酸以防腐。

五、咽拭子培养采集法

【目的】取咽部及扁桃体分泌物做细菌培养或病毒分离，以协助诊断。

【操作步骤】

1.备齐用物带至床旁，向病人解释目的，取得合作。

2.点燃酒精灯，指导患者张口发“啊”音，3.用长棉签蘸以敏捷、轻柔的动作擦拭两侧腭弓、咽扁桃体上的分泌物，4.取毕，将试管口及棉塞在酒精灯火焰上消毒后插入棉签，塞紧5.清理用物，及时送检，洗手。

【注意事项】

避免交叉感染；做真菌培养时须在口腔溃疡面上采集分泌物；注意面前棉签不要触及其他部位防止标本污染；避免在进食后2小时留取标本，以防呕吐。