流式细胞术.docx
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流式细胞术
流式细胞术
科技名词定义
中文名称：
流式细胞术
英文名称：
flowcytometryassay;flowcytometry;FCM
其他名称：
荧光激活细胞分选法（fluorescence-activatedcellsorting,FACS）
定义1：
一种细胞分选或分析技术。
即以荧光素标记抗体结合相应细胞，用激光束激发单行流动的细胞，根据细胞所携带荧光（强度或类别）进行分选或分析。
应用学科：
免疫学（一级学科）；应用免疫（二级学科）；免疫学检测和诊断（三级学科）
定义2：
一种对悬液中细胞、微生物或细胞器等进行单个快速识别、分析和分离的技术。
用以分析细胞大小、细胞周期、DNA含量、细胞表面分子以及进行细胞分选等。
应用学科：
生物化学与分子生物学（一级学科）；方法与技术（二级学科）
定义3：
用荧光剂对细胞特定成分染色，利用流式细胞仪对处在快速、直线、流动状态中的单细胞或生物颗粒进行多参数、快速定量分析，并能对特定群体加以分选的现代细胞分析技术。
应用学科：
细胞生物学（一级学科）；细胞生物学技术（二级学科）
流式细胞术（FlowCytoMeter，FCM）是一种在功能水平上对单细胞或其他生物粒子进行定量分析和分选的检测手段，它可以高速分析上万个细胞，并能同时从一个细胞中测得多个参数，与传统的荧光镜检查相比，具有速度快、精度高、准确性好等优点，成为当代最先进的细胞定量分析技术。
简介
一种在液流系统中，快速测定单个细胞或细胞器的生物学性质，并把特定的细胞或细胞器从群体中加以分类收集的技术。
其特点是通过快速测定库尔特电阻、荧光、光散射和光吸收来定量测定细胞DNA含量、细胞体积、蛋白质含量、酶活性、细胞膜受体和表面抗原等许多重要参数。
根据这些参数将不同性质的细胞分开，以获得供生物学和医学研究用的纯细胞群体。
目前最高分选速度已达到每秒钟3万个细胞。
特点
1.测量速度快；2.可进行多参数测量；3.是一门综合性的高科技方法（FCM综合了光学，电子学，流体力学，细胞化学，免疫学，激光和计算机等多门学科和技术）；4.既是细胞分析技术，又是精确的分选技术。
工作原理
将待测细胞染色后制成单细胞悬液。
用一定压力将待测样品压入流动室，不含细胞的磷酸缓冲液在高压下从鞘液管喷出，鞘液管入口方向与待测样品流成一定角度，这样，鞘液就能够包绕着样品高速流动，组成一个圆形的流束，待测细胞在鞘液的包被下单行排列，依次通过检测区域。
流式细胞仪通常以激光作为发光源。
经过聚焦整形后的光束，垂直照射在样品流上，被荧光染色的细胞在激光束的照射下，产生散射光和激发荧光。
这两种信号同时被前向光电二极管和90°方向的光电倍增管接收。
光散射信号在前向小角度进行检测，这种信号基本上反映了细胞体积的大小；荧光信号的接受方向与激光束垂直，经过一系列双色性反射镜和带通滤光片的分离，形成多个不同波长的荧光信号。
这些荧光信号的强度代表了所测细胞膜表面抗原的强度或其核内物质的浓度，经光电倍增管接收后可转换为电信号，再通过模/数转换器，将连续的电信号转换为可被计算机识别的数字信号。
计算机把所测量到的各种信号进行计算机处理，将分析结果显示在计算机屏幕上，也可以打印出来，还可以数据文件的形式存储在硬盘上以备日后的查询或进一步分析。
检测数据的显示视测量参数的不同由多种形式可供选择。
单参数数据以直方图的形式表达，其X轴为测量强度，Y轴为细胞数目。
一般来说，流式细胞仪坐标轴的分辨率有512或1024通道数，这视其模数转换器的分辨率而定。
对于双参数或多参数数据，既可以单独显示每个参数的直方图，也可以选择二维的三点图、等高线图、灰度图或三维立体视图。
细胞的分选是通过分离含有单细胞的液滴而实现的。
在流动室的喷口上配有一个超高频电晶体，充电后振动，使喷出的液流断裂为均匀的液滴，待测定细胞就分散在这些液滴之中。
将这些液滴充以正负不同的电荷，当液滴流经带有几千伏特的偏转板时，在高压电场的作用下偏转，落入各自的收集容器中，不予充电的液滴落入中间的废液容器，从而实现细胞的分离。
应用范围
可用于白血病的分型、肿瘤细胞染色体的异倍性测定，以及免疫学研究，并已开始用于细菌鉴定，病毒感染细胞的识别合爱滋病感染者T4、T8细胞的记数。
自70年代以来，随着流式细胞技术水平的不断提高，其应用范围也日益广泛。
流式细胞术已普遍应用于免疫学、血液学、肿瘤学、细胞生物学、细胞遗传学、生物化学等临床医学和基础医学研究领域。
技术特点
流式细胞仪作为一种最先进的细胞定量分析检测仪器，设计上采用了许多独特的技术，其中涉及到液流系统、光路系统、信号测量和细胞分选等4个方面。
展望
流式细胞仪从细胞技术开始发展到今天，60年代至70年代是其飞速发展时期，激光技术、喷射技术以及计算机的应用使流式细胞仪在原理和结构上形成了固定的模式。
80年代则是流式细胞仪的商品化时期，这期间不断有新型号的仪器推出，在多参数检测技术上不断提高。
进入90年代，随着微电子技术特别是计算机技术的发展，计算能力不断提高，流式细胞仪的功能也越来越强大。
在数据管理、数据分析方面有了长足进步。
但是，在技术原理和设计方面并没有突破性的进展。
人们的注意力开始转向流式细胞仪的应用，新的荧光探针、新的荧光染料、新的染色方法不断推出，使流式细胞技术在新的细胞参数分析方面日益发展。
从新推出的仪器看，流式细胞仪会在硬件上不断更新，采用更新的器件（如半导体激光、大规模集成电路），以实现小型化；用数字电路取代模拟电路，充分发挥微处理器的功能以实现简单化；在软件上提高数据自动分析能力，充分发挥图形界面的优点，使操作更加简便。
目前，FCM是定量周血中HPC的参考方法，广泛应用于外周血干细胞移植实验室，用于决定PBSC采集的时机及评价外周血采集液的收益。
其基本原理为荧光免疫分析，即根据外周血与骨髓中HPC表达同样的CD34抗原（CD34+），并利用荧光标记CD34抗体与HPC膜表面CD34抗原结合，在特定波长的激光照射下，检测CD34+胞发出的荧光强度并结合其光学特性，即较低的侧向散射（SSC）和较高的前向散射（FSC），从而检测CD34+细胞。
CD34+细胞实际上包括所有的HPC，如CFU-GM，红细胞暴发形成单位（BFU-E）,巨核细胞形成单位（CFU-Mk）,混合细胞集落形成单位（CFU-Mix）和原始细胞集落形成单位（CFU-Blast）。
后两种HPC明显具有许多干细胞的特征，如它们可以自我更新，也可定向分化为一定数目的造血细胞系。
体内试验也发现，经过致死剂量照射的狒狒移植足够数量的自体CD34+细胞，可以完全恢复其造血功能，同样的现象也可在经过骨髓、摧毁性治疗的病人中出现。
有人认为，CD34+细胞在功能上可根据是否表达CD33抗原而分为2个细胞群。
早期的HPC，如CFU-Blast和LTC-IC仅表达QCD34抗原（CD34+/CD33-），而较为成熟的定向祖细胞可同时表达CD34和CD33抗原（CD34+/CD33+）。
还有人根据CD38抗原表达与否，将CD34+细胞分为CD34+/CD38-和CD34+/CD38+两个亚型，并且认为LTC-IC主要分布于CD34+/CD38-亚型，而更为原始的ELTC-IC则仅分布于CD34+/CD28-细胞群，说明CD34+/CD38-亚型性质上更接近PBSC。
回顾性资料表面，移植经历了与移植物中不同分化程度的HPC有关的两个阶段。
起初，与早期造血恢复有关的是移植物中定向祖细胞（committedprogenitorcell）；继之，持续性的移植相由多能造血干细胞产生。
因此，周血中不同分化程度的HPC，对指导干细胞采集及移植成功尤为必要。
目前多参数及双参数流式细胞低度均可通过CD34、CD33和CD38抗体等检测标本中不同CD34+细胞亚型，来决定采血的时机和预测移植效果。
Barnett等报道，采集液CD34+细胞数量与外周血中CD34+细胞百分率显著相关（r=0.71），并且认为准确计数循环中CD34+细胞，可更好地预测采集液中造血干/祖细胞含量。
Weaver等观察692例患者外周血祖细胞（PBPC）采集液中CD34+细胞、单个核细胞、集落形成单位的数量与移植动力学关系，认为PBPC采集液中CD34+细胞含量是预移植后中性粒细胞和血小板数量回升最有力的指标。
虽然，FCM测定CD34+细胞是检测HPC数量的参考方法，但仍有一些技术问题有待解决：
（1）单平台分析代替传统双平台分析的可行性；
（2）应对单平台FCM分析实验室进行多中心的横向研究；（3）标本制备方法；（4）确定引起移植后快速和长期造血功能恢复的不同干细胞亚型及移植所需数目等。
此外，FCM法需特殊仪器，操作技术要求高，价格昂贵，结果的重复性欠佳，促使人们追求更经济、快捷、简便的方法。
流式细胞计的基本结构和工作原理
流式细胞计是对细胞进行自动分析和分选的装置。
它可以快速测量、存贮、显示悬浮在液体中的分散细胞的一系列重要的生物物理、生物化学方面的特征参量，并可以根据预选的参量范围把指定的细胞亚群从中分选出来。
多数流式细胞计是一种零分辨率的仪器，它只能测量一个细胞的诸如总核酸量，总蛋白量等指标，而不能鉴别和测出某一特定部位的核酸或蛋白的多少。
也就是说，它的细节 分辨率为零。
国外又把流式细胞计称作荧光激活细胞分选器（Flu－orescenceActivatedCellSorter,FACS）。
美国Becton—Dickinson公司生产的流式细胞计系列均冠以FACS字头。
目前我国国内使用的仪器多为美国、西欧及日本等国的产品，国内有些单位也已研制成功，但尚无定型产品面市。
1．流式细胞计的基本结构流式细胞计主要由四部分组成。
它们是：
流动室和液流系统；激光源和光学系统；光电管和检测系统；计算机和分析系统。
图10-1为其结构示意图。
图10-1流式细胞计结构示意图
（1）流动室和液流系统：
流动室由样品管、鞘液管和喷嘴等组成，常用光学玻璃、石英等透明、稳定的材料制作。
设计和制作均很精细，是液流系统的心脏。
样品管贮放样品，单个细胞悬液在液流压力作用下从样品管射出；鞘液由鞘液管从四周流向喷孔，包围在样品外周后从喷嘴射出。
为了保证液流是稳液，一般限制液流速度υ<10m/s。
由于鞘液的作用，被检测细胞被限制在液流的轴线上。
流动室上装有压电晶体，受到振荡信号可发生振动。
（2）激光源和光学系统：
经特异荧光染色的细胞需要合适的光源照射激发才能发出荧光供收集检测。
常用的光源有弧光灯和激光；激光器又以氩离子激光器为普遍，也有配和氪离子激光器或染料激光器。
光源的选择主要根据被激发物质的激发光谱而定。
汞灯是最常用的弧光灯，其发射光谱大部分集中于300～400nm，很适合需要用紫外光激发的场合。
氩离子激光器的发射光谱中，绿光514nm和蓝光488nm的谱线最强，约占总光强的80%；氪离子激光器光谱多集中在可见光部分，以647nm较强。
免疫学上使用的一些荧光染料激发光波长在550nm以上，可使用染料激光器。
将有机染料做为激光器泵浦的一种成份，可使原激光器的光谱发生改变以适应需要即构成染料激光器。
例如用氩离子激光器的绿光泵浦含有Rhodamine6G水溶液的染料激光器,则可得到550～650nm连续可调的激光，尤在590nm处转换效率最高，约可占到一半。
为使细胞得到均匀照射，并提高分辨率，照射到细胞上的激光光斑直径应和细胞直径相近。
因此需将激光光束经透镜会聚。
光斑直径d可由下式确定：
d=4λf/πD。
λ为激光波长；f为透镜焦距；D为激光束直径。
色散棱镜用来选择激光的波长，调整反射镜的角度使调谐到所需要的波长λ。
为了进一步使检测的发射荧光更强，并提高荧光讯号的信噪比，在光路中还使用了多种滤片。
带阻或带通滤片是有选择性地使某一滤长区段的光线滤除或通过。
例如使用525nm带通滤片只允许FITC（Fluoresceinisothiocyanate,异硫氰荧光素）发射的525nm绿光通过。
长波通过二向色性反射镜只允许某一波长以上的光线通过而将此波长以下的另一特定波长的光线反射。
在免疫分析中常要同时探测两种以上的波长的荧光信号，就采用二向色性反射镜，或二向色性分光器，来有效地将各种荧光分开。
（3）光电管和检测系统：
经荧光染色的细胞受合适的光激发后所产生的荧光是通过光电转换器转变成电信号而进行测量的。
光电倍增管（PMT）最为常用。
PMT的响应时间短，仅为ns数量级；光谱响应特性好，在200～900nm的光谱区，光量子产额都比较高。
光电倍增管的增益从103到108可连续调节 ，因此对弱光测量十分有利。
光电管运行时特别要注意稳定性问题，工作电压要十分稳定，工作电流及功率不能太大。
一般功耗低于0.5W；最大阳极电流在几个毫安。
此外要注意对光电管进行暗适应处理，并注意良好的磁屏蔽。
在使用中还要注意安装位置不同的PMT，因为光谱响应特性不同，不宜互换。
也有用硅光电二极管的，它在强光下稳定性比PMT好。
从PMT输出的电信号仍然较弱，需要经过放大后才能输入分析仪器。
流式细胞计中一般备有两类放大器。
一类是输出信号辐度与输入信号成线性关系，称为线性放大器。
线性放大器适用于在较小范围内变化的信号以及代表生物学线性过程的信号，例DNA测量等。
另一类是对数放大器，输出信号和输入信号之间成常用对数关系。
在免疫学测量中常使用对数放大器。
因为在免疫分析时常要同时显示阴性、阳性和强阳性三个亚群，它们的荧光强度相差1～2个数量级；而且在多色免疫荧光测量中，用对数放大器采集数据易于解释。
此外还有调节 便利、细胞群体分布形状不易受外界工作条件影响等优点。
（4）计算机和分析系统：
经放大后的电信号被送往计算机分析器。
多道的道数是和电信号的脉冲高度相对应的，也是和光信号的强弱相关的。
对应道数年纵坐标通常代表发出该信号的细胞相对数目。
多道分析器出来的信号再经模-数转换器输往微机处理器编成数据文件，或存贮于计算机的硬盘和软盘上，或存于仪器内以备调用。
计算机的存贮容量较大，可存贮同一细胞的6～8个参数。
存贮于计算机内的数据可以在实测后脱机重现，进行数据处理和分析，最后给出结果。
除上述四个主要部分外，还备有电源及压缩气体等附加装置。
2．流式细胞计的工作原理下面分别简要介绍流式细胞计有关的参数测量、样品分选及数据处理等工作原理。
（1）参数测量原理：
流式细胞计可同时进行多参数测量，信息主要来自特异性荧光信号及非荧光散射信号。
测量是在测量区进行的，所谓测量区就是照射激光束和喷出喷孔的液流束垂直相交点。
液流中央的单个细胞通过测量区时，受到激光照射会向立体角为2π的整个空间散射光线，散射光的波长和入射光的波长相同。
散射光的强度及其空间分布与细胞的大小、形态、质膜和细胞内部结构密切相关，因为这些生物学参数又和细胞对光线的反射、折射等光学特性有关。
未遭受任何损坏的细胞对光线都具有特征性的散射，因此可利用不同的散射光信号对不经染色活细胞进行分析和分选。
经过固定的和染色处理的细胞由于光学性质的改变，其散射光信号当然不同于活细胞。
散射光不仅与作为散射中心的细胞的参数相关，还跟散射角、及收集散射光线的立体角等非生物因素有关。
在流式细胞术测量中，常用的是两种散射方向的散射光测量：
①前向角（即0。
角）散射（FSC）；②侧向散射（SSC），又称90。
角散射。
这时所说的角度指的是激光束照射方向与收集散射光信号的光电倍增管轴向方向之间大致所成的角度。
一般说来，前向角散射光的强度与细胞的大小有关，对同种细胞群体随着细胞截面积的增大而增大；对球形活细胞经实验表明在小立体角范围内基本上和截面积大小成线性关系；对于形状复杂具有取向性的细胞则可能差异很大，尤其需要注意。
侧向散射光的测量主要用来获取有关细胞内部精细结构的颗粒性质的有关信息。
侧向散射光虽然也与细胞的形状和大小有关，但它对细胞膜、胞质、核膜的折射率更为敏感，也能对细胞质内较大颗粒给出灵敏反映。
在实际使用中，仪器首先要对光散射信号进行测量。
当光散射分析与荧光探针联合使用时，可鉴别出样品中被染色和未被染色细胞。
光散射测量最有效的用途是从非均一的群体中鉴别出某些亚群。
荧光信号主要包括两部分：
①自发荧光，即不经荧光染色细胞内部的荧光分子经光照射后所发出的荧光；②特征荧光，即由细胞经染色结合上的荧光染料受光照而发出的荧光，其荧光强度较弱，波长也与照射激光不同。
自发荧光信号为噪声信号，在多数情况下会干扰对特异荧光信号的分辨和测量。
在免疫细胞化学等测量中，对于结合水平不高的荧光抗体来说，如何提高信噪比是个关键。
一般说来，细胞成分中能够产生的自发荧光的分子（例核黄素、细胞色素等）的含量越高，自发荧光越强；培养细胞中死细胞/活细胞比例越高，自发荧光越强；细胞样品中所含亮细胞的比例越高，自发荧光越强。
减少自发荧光干扰、提高信噪比的主要措施是：
①尽量选用较亮的荧光染料；②选用适宜的激光和滤片光学系统；③采用电子补偿电路，将自发荧光的本底贡献予以补偿。
（2）样品分选原理：
流式细胞计的分选功能是由细胞分选器来完成的。
总的过程是：
由喷嘴射出的液柱被分割成一连串的小水滴，根据选定的某个参数由逻辑电路判明是否将被分选，而后由充电电路对选定细胞液滴充电，带电液滴携带细胞通过静电场而发生偏转，落入收集器中；其它液体被当作废液抽吸掉，某些类型的仪器也有采用捕获管来进行分选的。
稳定的小液滴是由流动室上的压电晶体在几十KHz的电信号作用下发生振动而迫使液流均匀断裂而形成的。
一般液滴间距约距约数百μm。
实验经验公式f=v/4.5d给出形成稳定水滴的振荡信号频率。
其中v是液流速度，d为喷孔直径。
由此可知使用不同孔径的喷孔及改变液流速度，可能会改变分选效果。
使分选的含细胞液滴在静电场中的偏转是由充电电路和偏转板共同完成的。
充电电压一般选+150V，或-150V；偏转板间的电位差为数千伏。
充电电路中的充电脉冲发生器是由逻辑电路控制的，因此从参数测定经逻辑选择再到脉冲充电需要一段延迟时间，一般为数十ms。
精确测定延迟时间是决定分选质量的关键，仪器多采用移位寄存器数字电路来产生延迟。
可根据具体要求予以适当调整。
（3）数据处理原理：
FCM的数据处理主要包括数据的显示和分析，至于对仪器给出的结果如何解释则随所要解决的具体问题而定。
①数据显示：
FCM的数据显示方式包括单参数直方图（histogram）、二维点图（dotplot）、二维等高图（contour）、假三维图（pseudo3D）和列表模式（listmode）等。
直方图是一维数据用昨最多的图形显示形式，既可用于定性分析，又可用于定量分析，形同一般X—Y平面描图仪给出的曲线。
根据选择放大器类型不同，横座标可以是线性标度或对数标度，用“道数”（ChannelNo.）来表示,实质上是所测的荧光或散射光的强度。
纵座标一般表示的是细胞的相对数。
图10-2给出的是直方图形式。
只能显示一个参数与细胞之间的关系是它的局限性。
二维点图能够显示两个独立参数与细胞相对数之间的关系。
横座标和纵座标分别为与细胞有关的两个独立参数，平面上每一个点表示同时具有相应座标植的细胞存在（图10-3）。
可以由二维点图得到两个一维直方图，但是由于兼并现象存在，二维点图的信息量要大于二个一维直方图的信息量。
所谓兼并就是说多个细胞具有相同的二维座标在图上只表现为一个点，这样对细胞点密集的地方就难于显示它的精细结构。
图10-2 直方图图10-3 二维点图
二维等高图类似于地图上的等高线表示法。
它是为了克服二维点图的不足而设置的显示方法。
等高图上每一条连续曲线上具有相同的细胞相对或绝对数，即“等高”。
曲线层次越高所代表的细胞数愈多。
一般层次所表示的细胞数间隔是相等的，因此等高线越密集则表示变化率越大，等高线越疏则表示变化平衡。
图10-4给出了二维等高图的样式。
假三维图是利用计算机技术对二维等高图的一种视觉直观的表现方法。
它把原二维图中的隐座标—细胞数同时显现，但参数维图可以通过旋转、倾斜等操作，以便多方位的观察“山峰”和“谷地”的结构和细节 ，这无疑是有助于对数据进行分析的。
图10-5为假三维图的示意图。
图10-4 二维等高图
图10-5 假三维图
列表模式其实只是多参数数据文件的一种计算机存贮方式，三个以上的参数数据显示是用多个直方图、二维图和假三维图来完成的。
可用ListMode中的特殊技术，开窗或用游标调出相关部分再改变维数进行显示。
例如，“一调二”就是在一维图上调出二维图来；“二调一”就是从二维图中调出一维图来。
图10-6给出了从二维图等高图中调出相应窗口的直方图的示意图。
图10-6 从二维图设窗调出直方图示意
上面简要地介绍了几种数据显示形式，在实际应用中，可根据需要选择匹配，以便了解和获得尽可能多的有用信息。
②数据分析：
数据分析的方法总的可分为参数方法和非参数方法两大类。
当被检测的生物学系统能够用某种数学模型技术时则多使用参数方法。
数学模型可以是一个方程或方程组，方程的参数产生所需要的信息来自所测的数据。
例如在测定老鼠精子的DNA含量时，可以获取细胞频数的尖锐波形分布。
如果采用正态分布函数来描述这些数据，则参数即为面积、平均值和标准偏差。
方程的数据拟合则通常使用最小二乘法。
而非参数分析法对测量得到的分布形状不需要做任何假设，即采用无设定参数分析法。
分析程序可以很简单，只需要直观观测频数分布；也可能很复杂，要对两个或多个直方图逐道地进行比较。
逐点描图（或用手工，或用描图仪、计算机系统）是大家常用的数据分析的重要手段。
我们常可以用来了解数据的特性、寻找那些不曾预料的特异征兆、选择统计分析的模型、显示最终结果等。
事实上，不经过先对数据进行直观观察分析就决不应该对这批数据进行数值分析。
从这一点来看，非参数分析是参数分析的基础。
逐道比较工作量较大，但用直观法很容易发现明显的差异，特别是对照组和测试组。
考虑到FCM的可靠性，要注意到对每组测量，都要有对照组，对照组可以是空白对照组、阴性对照组、或零时刻对照组等，具体设置应根据整体实验要求而定。
对照组和测试组的逐道比较往往可以减少许多不必要的误差和错误解释。
顺便指出，进行比较时对曲线的总细胞数进行归一化处理，甚至对两条曲线逐道相减而得到“差结果曲线”往往是适宜的。
因为数据分析往往和结果解释关系十分密切，也就是说和生物学背景相关，因此具体的分析法和原理将在后面结合实例再介绍。
3．流式细胞计的技术参数 为了表征仪器性能，往往根据使用目的和要求而提出几个技术参数或指标来定量说明。
对于流式细胞计常用的技术指标有荧光分辨率、荧光灵敏度、适用样品浓度、分选纯度、可分析测量参数等。
（1）荧光分辨率：
强度一定的荧光在测量时是在一定道址上的一个正态分布的峰，荧光分辨率是指两相邻的峰可分辨的最小间隔。
通常用变异系数（C.V值）来表示。
C.V的定义式为：
C.V=σ/μ
式中，σ为标准偏差，μ是平均值。
在实际应用中，我们使用挖关系式σ=0.423FWHM；其中FWHM为峰在峰高一半处的峰宽值。
目前仪器的荧光分辨率均优于2.0%。
（2）荧光灵敏度：
反映仪器所能探测的最小荧光光强的大小。
一般用荧光微球上所标可测出的FITC（fluoresceinisothiocyanate异硫氰基荧光素）的最少分子数来表示。
目前仪器均可达到1000左右。
（3）分析速度/分选速度：
仪器每秒种可分析/分选的数目。
一般分析速度为5000～10000；分选速度掌握在1000以下。
（4）样品浓度：
主要给出仪器工作时样品浓度的适用范围。
一般在105～107细胞/ml的数量级。
其它技术参数尚多，不再一一介绍。
4．流式细胞计的调试和使用 古语说：
“工欲善其事，必先利其器”。
要想很好地应用流式细胞分析和分选技术，必需先对仪器进行调试，使其处于良好的工作状态，并能正确使用仪器。
下面简要介绍细胞计的调试项目及要点、使用的程序等等。
（1）调试和校准：
流式细胞计在使用
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