疼痛实验动物模型.docx
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疼痛实验动物模型
疼痛实验动物模型
I．Modelsofimflammatorypain
1．按部位分：
脚掌炎症痛、关节炎症痛
2．按致炎剂分：
福尔马林、角叉菜胶、弗氏佐剂、胶原
3．其它有钾离子皮下透入致痛模型、扭体疼痛模型等等
II．Modelsofneuropathicpain
1．Centralpainmodel
（1）Weight-droporcontusionmodel（allentechnique）
最古老、应用最广的脊髓损伤模型，胸腰水平脊髓损伤引起的严重截瘫以及相应节段的坏死。
目前应用减少。
（2）PhotochemicalSCImodel
静脉给予光敏感物质赤鲜红B，引起脊髓暴露段血管堵塞以及脊髓血管内皮细胞损伤，导致脊髓缺血。
该动物模型表现出自残，机械、冷痛觉超敏，痛觉过敏。
（3）Excitotoxicspinalcordinjury（ESCI）
脊髓内注射具有兴奋毒作用的物质如使君子酸（quisqualicacid,QUIS）引起大鼠长期自发痛，机械性痛觉超敏，热痛觉过敏。
该模型也可以在小鼠身上复制。
可用来制作这类模型的有其他兴奋性氨基酸（如glutamate,N-methyl-Dasparticacid,kainicacid），dynorphinA（1-17）,des-Tyr-dynophinApeptides,serotonin,tryptamine等。
也可鞘内注射。
2．Peripheralnerveinjurymodels
（1）Neuromamodel
模拟临床截肢，大小鼠神经完全切断后，在神经干的远端由于神经出芽再生形成神经瘤，该模型鼠主要表现出自发性痛行为（自残），而痛觉超敏和痛觉过敏不明显。
（2）Chronicconstrictioninjurymodel（CCIorBennettmodel）
Bennet和谢的CCI模型，大鼠大腿中部坐骨神经上结扎四道羊肠线，CCI大鼠表现自发性疼痛（如轻到中度的自残，自卫，过度的舔爪以及损伤同侧后肢的跛行，负重能力降低等）、冷痛觉超敏、触痛觉超敏、伤害性热、机械性痛觉过敏。
疼痛行为可持续2月以上。
（3）Partialsciaticnerveligationmodel（PSLorSeltzermodel）
模拟临床部分神经损伤引起的灼性神经痛，坐骨神经大腿中上部的1/3-1/2结扎，引起机械性痛觉超敏，热痛觉过敏和机械性痛觉过敏，同时伴有自发性痛行为如自卫、舔爪。
疼痛症状可持续超过7月。
激发痛可以为双侧的。
（4）L5/L6spinalnerveligationmodel（SNL）
模拟灼性神经痛，紧扎L5和L6脊神经的背根神经节的远端，结扎后表现出痛觉过敏和痛觉超敏，可持续至少4月。
有自发性痛行为如自卫、舔爪但无自残表现。
（5）L5spinalnerveligation
结扎L5脊神经大鼠表现长时程的痛觉过敏和机械性痛觉超敏。
Sciaticcryoneurolysismodel（SCN）
坐骨神经冻伤引起的神经痛模型，表现自残和触诱发痛，损伤前7天表现与结扎、切断模型不同，该模型的优点神经损伤时可逆的，自残、自发性伤害性行为及触诱发痛觉超敏只能持续15-21天。
（7）Inferiorcaudaltrunkresectionmodel（ICTR）
低位尾干切断引起机械性痛觉超敏、冷热痛觉过敏，持续数周。
该模型较新，测痛方便，易于单盲试验。
Sciaticinflammatoryneuritismodel（SIN）
酵母聚糖、致炎性羊肠线、灭活细菌、角叉菜胶等引起坐骨神经炎，表现痛觉超敏，不表现热痛觉过敏。
III．Peripheralneuropathyinducedbydiseases
1．Postherpeticneuralgiamodel（PHN）
疱疹感染后神经痛，疱疹病毒感染引起的同侧的持续性痛觉超敏和痛觉过敏。
2．Diabeticneuropathicpainmodel
糖尿病模型，有胰岛素缺陷型BB大鼠、NOD小鼠、胰岛素抵抗ob/ob、db/db小鼠、沙鼠以及化学诱导模型。
常用的是链佐星诱导糖尿病神经病模型。
大鼠单次腹腔注射链佐星引起长时程的热、机械性痛觉过敏，冷、热痛觉超敏。
IV．Cancerpainmodel
1．Chemotherapy-inducedperipheralneuropahymodels
（1）Vincristine-inducedperipheralneuropathymodel（VIPN）
不同的给药途径引起的痛行为不一，连续注射长春新碱10天，引起大鼠痛觉过敏；有报道则引起机械性痛觉过敏、痛觉超敏，热痛觉低敏；静脉给药则引起剂量依赖性触诱发痛觉超敏而无热痛觉过敏。
（2）Taxol-inducedperipheralneuropathymodel（TIPN）
大小鼠模型，引起痛觉超敏、热痛觉过敏。
（3）Cisplantin-inducedperipheralneuropathymodel（CIPN）
反复腹腔注射顺铂引起机械性痛觉超敏和痛觉过敏。
2．Cancerinvasionpainmodel（CIP）
肿瘤浸润引起的疼痛模型，在BALB/c小鼠坐骨神经周围接种MethA肉瘤细胞，引起小鼠自发性痛行为、痛觉超敏、热痛觉过敏。
3．Cultaneouscancerpainmodel
C57BL6小鼠脚掌皮下接种黑色素瘤细胞B16-BL6引起同侧脚掌热痛觉过敏。
4．Bonecancerpainmodels
（1）Mousefemurbonecancerpainmodel（FBC）
小鼠股骨癌痛模型，C3H/HeJ小鼠股骨接种小鼠溶骨肉瘤细胞NCTC2472后引起小鼠自发性以及诱发性痛行为。
（2）Mousecalcaneusbonecancerpain（CBC）
小鼠跟骨接种溶骨肉瘤细胞NCTC2472引起小鼠自发痛（舔爪）和诱发痛（机械痛、冷痛超敏）。
正在尝试在大鼠身上复制该模型。
（3）Rattibiabonecancermodel（TBC）
SD（Wiatar）大鼠胫骨内接种大鼠乳腺癌细胞MRMT-1（Walker256）引起骨质破坏，表现机械痛超敏、痛过敏。
V．Visceralpainmodel
1．炎症性内脏痛模型
（1）扭体试验（writhingtest）
又称扭动试验，腹部收缩试验。
向大小鼠腹腔中注射化学刺激物（如醋酸、5-HT、ACH、缓激肽、硫酸镁等），引起典型的动物腹部肌肉收缩，同时伴有一侧后肢外伸。
（2）乙状结肠痛模型
Wistar大鼠，雌雄不拘，体重２４０～２７０ｇ。
乙状结肠壁（距肛门35mm处）注射5%甲醛0.1ｍl复制急性内脏炎症痛模型，引起舔下腹或下肢、伸展肢体、腹部收缩、肋腹肌收缩弓背。
（3）输尿管膀胱炎症痛模型
将炎性刺激物25%turpanton、2.5%芥子油、2%crotonoil或xylene0.3ml经导管注射到膀胱中，由于膀胱炎症充盈导致排尿感产生疼痛。
2．机械性扩张性内脏痛模型
（1）小肠扩张模型
将一长约7.5-11cm前端有可扩张球囊的导管通过手术放置在十二指肠内。
实验时，于30秒内向囊内充入生理盐水，维持1分钟，反复5次，4级评分：
0正常觅食，逃避反应和休息；1觅食停止，湿狗样抖动，磨牙和深呼吸；2伸展肢体，背部隆起，腹部后肢静止不动；3后肢伸展，弓背；4伸展后肢或后爪，身体频繁旋转。
（2）结肠直肠痛模型（CRD）
结肠直肠扩张模型：
以大鼠最常见，直接将套囊导管经肛门放入，在2.56-12.8kPa之间产生压力依赖性行为学改变，与十二指肠扩张模型相似。
该模型应用广泛。
炎症性CRD模型：
0.5%乙酸或50%ethrel注射到结肠壁，造成肠壁炎症反应后再进行扩张。
3．生殖器官痛模型
化学刺激或扩张刺激雌性动物的宫颈或阴道，雄性动物的睾丸鞘膜。
在同等强度刺激下，行为学改变较肠刺激少；该模型的最大特点是疼痛反应与生殖器官，体内激素水平密切相关。
4．输尿管结石痛模型
通过手术将一人造石头放在输尿管上1/3，并用0.02ml的牙科水泥固定，观察4天中大鼠的行为学变化，大鼠的行为反应类似扭体试验，表现为腹部收缩，肢体伸展等6大动作，大鼠的伤害性反应从0到60次不等，持续几分钟到45分钟左右。
一、炎症性内脏痛模型
1.扭体试验：
腹腔注射化学刺激物根据动物扭体行为改变进行评分分4级。
小鼠和大鼠最适合。
2.局灶性致痛模型：
向动物特定部位（喷门、膀胱、直肠、胆囊等）注射化学物质
3.心包炎症模型
二、机械扩张性内脏痛模型
1.小肠扩张模型
2.结肠直肠痛模型（CRD）
3.输尿管扩张模型
4.生殖器官痛模型
三、慢性内脏高敏性动物模型
目前这些内脏痛动物模型还是存在一些不足之处，这只是抛砖引玉，希望战友们提供更多更好的内脏痛动物模型。
前言
疼痛（pain）是人们一生中经常遇到的不愉快的感觉。
它提供躯体受到威胁的警报信号，是生命不可缺少的一种特殊保护功能。
另一方面，它又是各种疾病最常见的症状，也是当今困扰人类健康最严重的问题之一。
近年来，仅在美国就有三至四千万人患有慢性痛。
据估计，美国每年用于治疗慢性痛的费用约为400~600亿美元；澳大利亚每年用于治疗疼痛的费用占全部医疗费用的40%。
随着医学的进步和人类生活水平的提高，烈性传染病逐渐得到控制，疼痛在人的身心痛苦和医疗费用消耗上的相对地位将越来越重要。
由于难以在人体对疼痛进行深入的机制研究，有必要建立疼痛的动物模型。
但疼痛是是包括性质、强度和程度各不相同的多种感觉的复合，并往往与自主神经系统、运动反应、心理和情绪反应交织在一起，它既不是简单地与躯体某一部分的变化有关，也不是由神经系统某个单一的传导束、神经核和神经递质进行传递的，所以很难将某种客观指标与疼痛直接联系起来。
因而，我们只能根据模型动物对伤害性刺激的保护反应和保护性行为来推测它们的疼痛程度。
伤害性感受（nociception）和痛觉是两个有密切关系但又不相同的概念。
前者是指中枢神经系统对由于伤害性感受器的激活而引起的传入信息的加工和反应，以提供组织损伤的信息；痛觉则是指上升到感觉水平的疼痛感觉。
两者之间有时并没有严格的相关性。
生理痛模型与常用的痛阈测定法
概述
为了能够对痛觉现象及其机制作深入细致的观察，特别是在中枢神经系统的形态学、细胞生物学和分子生物学水平研究痛觉机制，必须建立动物的痛觉模型。
又由于痛觉是意识水平的感觉，我们无法确定动物是否具有痛觉，只能观察其对伤害性刺激的行为反应。
因而在下文的描述中有时用伤害性感受阈（nociceptivethreshold）取代痛阈（painthreshold）。
正常情况下，疼痛是机体对外界伤害性刺激的感受，它是一种报警系统，提示实存的或潜在的组织损伤的可能性。
如果这种伤害性刺激是可以回避的，那么痛觉就是一种具有完全的积极意义的感觉形式，称为生理痛。
这种意义上的疼痛模型实际上就是对伤害性感受阈的测量。
它是通过观察动物对伤害性温度和机械刺激的逃避反应实现的。
如果动物遇到无法逃避的伤害性刺激，就会引起它的情绪反应，发出嘶叫声。
这是需要高级神经中枢配合的反应，并且不受局部运动功能的影响。
因而，在伤害性刺激下引起的嘶叫反应也可以作为伤害性感受阈的测量指标。
热辐射-逃避法
这是最常见的伤害性感受阈测量方式。
最常用的有热辐射-甩尾法、热辐射-甩头法和热辐射-抬足法。
热辐射-甩尾法
以大鼠为例。
先将大鼠固定在特制的塑料筒中，令其尾部暴露在外并自然下垂，待动物安静20分钟后再予测定。
辐射热源可采用8.75毫米放映灯泡（电压为18.5伏，可调节），经透镜聚焦后发射出直径约4毫米的光束，照射相当于尾部中、下三分之一交界处的皮肤（光源与尾部皮肤必须紧密相贴）；采用与光源并联的电子计时器同步记录照射持续时间，即当照射开始同时启动秒表，当动物尾部出现明显逃避应时，关闭光源并同时停止计时。
所测得的时间间隔即为甩尾反应潜伏期（Tail-FlickLatency,TFL）。
一般在正式测量之前先调节电压，使TFL值保持在4~6秒左右，然后每5分钟测定一次，取三次测定的平均值作为基础伤害性感受阈。
若动物在镇痛作用下TFL延长至超过15秒，则停止照射并以15秒作为甩尾潜伏期的上限，以免照射过久灼伤皮肤。
用类似的方法也可以在小鼠测定其热辐射-甩尾反应潜伏期。
热辐射-甩头法
一般用家兔作为实验对象。
先将家兔用特制的布带悬空吊起，令其四肢自由伸展，并蒙蔽其眼睛。
实验前应用弯剪刀小心剪去口唇部胡须。
待动物安静后，用上述同样的光源照射家兔口唇，等待其明显的逃避反应（将头部移开）。
利用同样的电子计时器测定此反应的潜伏期。
计算方法如上所述。
注意其最长照射时间不要超过10秒。
热辐射-抬足法
仍以大鼠为例，将大鼠固定在特制塑料筒中，令其后肢暴露在外。
待动物安静后，用同样的辐射光源照射其后足掌底部；或令大鼠自由站立于玻璃板上，将辐射光源置于玻璃板下，隔玻璃照射足底。
测定其逃避反应（抬足）出现的潜伏期。
以15秒为其最长照射时间的上限。
冷水、热水刺激逃避法
实验动物可以是大鼠或小鼠。
刺激部位可以选择尾尖或后足。
将动物适当固定后，令尾尖或后足自然下垂。
待动物安静后，将被刺激部位浸于10°C的冷水或46°C的热水中，记录从开始浸入到被刺激部位逃离水面或出现明显挣扎行为的时间作为伤害性感受阈。
仍以15秒为最长刺激时间的上限。
机械刺激-逃避法
又称为Randall-Selitto反应。
一般选用大鼠作为实验动物。
动物置于特制塑料固定筒内，用Randall-Selitto反应测定仪给鼠后足跖部施加以恒定速率连续递增的压力。
当其后足缩回时，即停止加压并读出此时之压力数值（mmHg），以此压力-缩腿阈（Paw-WithdrawalThreshold,PWT）作为伤害性感受阈。
先测定三次PWT，每次测定间隔5min，取其平均值作为基础阈值；以后测定所得结果均与它比较，并以150%作为PWT升高的上限以免损伤局部组织。
另一种方法是，每次给动物足底施加恒定的压力，记录从开始加压至动物做出逃避反应的时间，以此时间作为伤害性感受阈。
机械刺激-嘶叫法
此方法一般以大鼠为实验对象。
采用的固定方法与前节相同，但给予动物不可逃避的刺激，记录动物发出嘶叫时的压力数值（当采用连续递增的压力时）或时间潜伏期（当采用恒定压力时）。
电刺激-嘶叫法
本法同样以大鼠为实验对象。
刺激部位可以是尾部或后足。
首先将动物适当固定，并将一对不锈钢针刺激电极插入待测部位（两极间距1cm），待动物安静后给刺激电极通以频率为50Hz的方波刺激，逐渐增大电流强度，记录动物开始发出嘶叫时的刺激强度，作为其伤害性感受阈。
急性病理性疼痛模型
概述
当疼痛并非由外部环境原因所致时，疼痛感觉将持续而无法逃避，此时的疼痛就属于病理性疼痛范围。
病理性疼痛按其病程可分为急性和慢性两大类。
前者多由确定的损伤或炎症反应所致，当损伤痊愈或炎症消失时，疼痛即可消除。
后者则多由难以消除的慢性炎症或神经病变所致，病程常迁延很久。
本节将介绍三种急性病理性疼痛模型：
模拟腹腔炎症的扭体模型、模拟躯体炎症的福尔马林致痛模型和白陶土-鹿角菜胶炎症模型。
扭体模型
本模型可采用小鼠或大鼠。
有多种刺激物都可诱发动物扭体（writhing）行为。
最常见的刺激物是醋酸（aceticacid）。
将1克阿拉伯胶（arabicgum）加入9ml浓度为1%的醋酸溶液中，再注入实验动物体内，观察注射后90分钟期间每15分钟内出现典型扭体症状的次数。
该模型可以模拟腹腔炎症引起的腹痛症状，常用于镇痛药物的筛选。
即观察药物处理组与安慰剂组扭体症状的差别，以确定该药物是否具有镇痛效应以及其剂量-效应曲线。
福尔马林致痛模型
本模型的目的是模拟急性组织损伤所致的持续性疼痛。
一般以大鼠为实验对象。
在动物一肢足背皮下注射稀释的福尔马林（formalin）溶液，导致动物的行为改变如安静时的屈腿、运动时的跛行以及舔足等。
这些行为的程度（如舔足时间）与福尔马林浓度成正比，一般认为它是疼痛的象征。
此外，其它行为如理毛、探索和运动活动等也受福尔马林注射的影响。
具体做法如下：
将实验动物随机分为若干组，其中福尔马林组在一肢足背皮下注射稀释的福尔马林溶液50ml，浓度在0.1%~10%之间。
对照组动物将注射针刺入同部位注射等体积的生理盐水。
注射后，将动物置于观察笼中，在动物不能察觉的前提下记录其在60分钟内对注射侧和对侧后足的舔足时间。
每隔5分钟计算一次舔足分数（即总舔足时间）。
另外一种评分方法是，按如下的四级评分：
0=注射足承担正常重量；1=运动时跛行、休息时足轻触地面；2=注射足抬高，最多用指甲触地；3=出现针对注射足的舔、咬和理毛行为。
必须注意的是，动物应事先训练10天使之适应实验室的环境及手捉等处理。
动物应饲养在恒定的昼夜节律（光照时间）环境中，且观察应当在“暗夜期”在暗红色光线下进行。
本模型的各种症状普遍分为两个时相：
前5分钟为第一相，20~60分钟为第二相。
两相均可用于实验，但以第二相为常用。
据认为，使用1.5%的福尔马林剂量加上综合的评分方法具有最强的分辨痛程度的能力。
Clavelou等人新近提出了一种用于面部的福尔马林致痛模型。
他们把不同浓度的福尔马林溶液（0.2~10%）皮下注射到大鼠的右上唇，对照动物则注射盐水。
注射后，立即把动物放在观察箱中观察45分钟。
记录注射后每3分钟时间内动物用同侧前肢或后肢摩擦注射部位的秒数作为痛分数。
注射后动物呈现出类似的两相痛敏。
结果表明浓度在0.5~2.5%之间的福尔马林溶液最有利于观察疼痛强度的变化情况。
白陶土-鹿角菜胶炎症模型
本模型的目的是模拟亚急性炎症所引起的疼痛。
白陶土（Kaolin）是一种细颗粒状物质，成分为氧化铝，在此起机械刺激作用；鹿角菜胶（carrageenan）是由水生植物鹿角菜中提取的胶体物质，具有过敏刺激作用。
鹿角菜胶单独实验即可诱发炎症，若与白陶土合并使用，则炎症更为强烈。
可采用家兔或大鼠作为实验对象。
今以大鼠为例。
关节炎的引发分为两步：
首先将动物麻醉（可用戊巴比妥钠或水合氯醛），由一侧后肢足底注入4%白陶土混悬液0.1ml，并按摩5分钟使之在组织中分散。
在第一次注射的1小时后，再注入2%鹿角菜胶溶液0.05ml并按摩5分钟。
以第一次注射的时间作为致炎开始时间。
炎症过程一般在第一次注射后2小时内开始。
动物后足明显红肿，皮温显著升高，PWT值显著降低，呈现类似痛敏的症状。
这些症状一般能持续至第一次注射后12小时以上，24小时后基本复原。
因而本模型属于亚急性炎症痛模型范围。
本模型亦可采用关节腔注射。
此模型适合进行急性药理实验以及比较炎症发作前后变化的电生理实验。
慢性病理性疼痛模型
概述
临床上持续超过6个月的疼痛即被视为慢性痛。
慢性病理性痛的特征是，疼痛持续时间长，一般均涉及机体的系统性病变（如免疫反应异常或神经系统的异常）。
其疼痛没有明显的外界刺激作为诱因或疼痛程度与局部的病变之严重性不成比例。
在这个意义上，癌症痛不属于慢性痛，因为它具有明确的局部持续刺激，应当属于急性痛的持续状态。
慢性病理性疼痛模型主要分为两大类型：
炎症性及神经源性。
炎症痛模型
炎症是疼痛最常见的原因。
很多原因不明的疼痛疾患实际上是由于软组织的无菌性炎症所致。
因而，在动物模型上研究炎症痛的特征、机制，可能为理解疼痛及寻找有效的镇痛方法提供帮助
我们介绍3种慢性炎症痛模型，均是以福氏佐剂作为致炎物质的。
它们是：
多发性佐剂关节炎，单发性佐剂关节周围炎和单发性佐剂关节腔炎模型。
多发性佐剂关节炎模型
本模型系采用每毫升含干重为1毫克结核杆菌的高浓度福氏佐剂，向大鼠尾根部或足底作皮内注射。
溶剂采用4份石蜡油、4份生理盐水和1份乳化剂（Falba或AracelA）混和而成。
注射后77~90%的大鼠会出现一定的持续时间不等的关节炎症。
动物的一侧或双侧后肢通常首先出现改变，出现多个关节的红肿；其次是前肢和尾部出现关节炎症。
根据动物受累及的关节数目及其行为表现，可以对此炎症的严重程度予以评价。
多数动物在第18~25天内病情最为严重。
福氏佐剂是一种免疫佐剂，可以加强机体对抗原产生免疫的能力。
本模型所诱导的是动物的免疫反应性炎症，其目的是模拟某些自身免疫性疾病如风湿性关节炎。
多发性佐剂关节炎是最早提出的关节炎模型之一。
利用此模型曾经做了大量工作。
这一模型适合于进行抗类风湿的药物研究和自身免疫性疾病的研究。
用于作为疼痛模型时，其缺点是病变范围过于广泛，除了多个关节均有炎症反应以外，往往伴随有机体多个器官系统（包括中枢神经系统）的免疫性病变。
这一情况限制了它在疼痛研究特别是疼痛的中枢神经机制研究中的广泛应用。
单发性佐剂关节周围炎模型
为了避免上述模型的缺点，同时又要利用佐剂造成慢性的炎症反应，人们采用了单发关节炎周围炎模型。
其制作方法是：
把0.15ml完全福氏佐剂（内含0.1%灭活结核杆菌）注射到动物后肢足底，造成关节周围局部组织的炎症反应。
该模型的技术要点是：
佐剂应注射至皮下而非皮内，注射后要按住针孔按摩数分钟以促进药物扩散。
注射1天后，局部即呈现明显的红肿、自我保护和运动障碍现象。
本模型病程约为7周。
局部在第1周内对辐射热呈现痛敏，第1~3周内对机械压力呈现痛敏。
其局部肿胀需要6~7周才能完全恢复。
除利用上述方法测量伤害性感受过敏情况以外，还可以评定其关节的运动情况。
包括下述三项内容：
（1）运动状态评分；
（2）站立姿态评分；（3）肢体僵硬状态评分。
具体评分标准如表50-1。
本模型避免了多发性关节炎的病变过广和发病率不高的缺点。
但它本身也存在一些不足：
首先，本模型痛敏持续时间较短，只有1~3周；其次，尽管模型动物表现出明显的自我保护行为（痛敏存在的标志），但其机械和热痛敏却不易引出。
单发性佐剂关节腔炎模型
表50-1动物后肢运动、站立及肌僵评分法
评价标准
分数
运动评分
动物只能躺着
0
动物只能爬行
1
动物可行走，但较困难
2
动物可行走或快跑，但较困难
3
动物可正常行走或快跑
4
站立评分
动物只能三足站立
0
动物关节炎足可触地，但足趾蜷曲
1
动物关节炎足可支持部分体重
2
动物四肢平等支持体重
3
肢体僵硬评分（每足最大分值为2分）
肢体伸展受限
1
肢体屈曲受限
1
为了解决前述模型存在的问题，本模型将高浓度的福氏佐剂（含有300mg结核菌素）直接注射到大鼠后肢踝关节腔中（注射体积为0.05ml），从而导致一个具有急性、慢性两相的高度局限的关节炎症。
具体制作方法如下：
将50毫克灭活结核菌素加入由6ml石蜡油、4ml生理盐水和1ml吐温80组成的混和物中，充分混和并在120°C下高压处理20分钟。
然后冷藏保存，至使用前加温并彻底混和。
注射时，在麻醉下将动物后肢踝关节伸展，在外踝后的凹陷处刺入注射针头，然后转向足趾方向，在胫骨、腓骨和距骨之间的缝隙处刺入踝关节囊。
刺入大约3mm时可体会到落空感，此时推注福氏佐剂。
若确实刺入关节囊，则在推注0.05ml之后将感到极强的阻力。
该模型在注射后第1周内出现急性炎症，以红肿、体重增长减慢、直立行为减少和运动减弱为特征；第3周开始出现慢性炎症。
痛行为表现为探索和直立行为显著减少，PWT显著降低而呈现痛敏状态，运动减弱现象也进一步
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