细胞培养知识.docx

细胞培养知识.docx

《细胞培养知识.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《细胞培养知识.docx（11页珍藏版）》请在冰豆网上搜索。

细胞培养知识

细胞培养知识

生物技术资料　　加入时间：

2007-10-419:

44:

32　　　　点击：

1051

1冷冻管应如何解冻？

取出冷冻管后， 须立即放入37 °C 水槽中快速解冻， 轻摇冷冻管使其在1 分钟内全部融化， 并注意水面不可超过冷冻管盖沿， 否则易发生污染情形。

另冷冻管由液氮桶中取出解冻时， 必须注意安全， 预防冷冻管之爆裂。

2 细胞冷冻管解冻培养时， 是否应马上去除DMSO？

除少数特别注明对DMSO 敏感之细胞外， 绝大部分细胞株（包括悬浮性细胞）， 在解冻之后， 应直接放入含有10-15ml新鲜培养基之培养角瓶中， 待隔天再置换新鲜培养基以去除DMSO 即可， 如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附之问题。

3 可否使用与原先培养条件不同之培养基？

不能。

每一细胞株均有其特定使用且已适应之细胞培养基， 若骤然使用和原先提供之培养条件不同之培养基， 细胞大都无法立即适应， 造成细胞无法存活。

4 可否使用与原先培养条件不同之血清种类？

不能。

血清是细胞培养上一个极为重要的营养来源， 所以血清的种类和品质对于细胞的生长会产生极大的影响。

来自不同物种的血清， 在一些物质或分子的量或内容物上都有所不同，血清使用错误常会造成细胞无法存活。

5 何谓FBS, FCS, CS, HS ?

FBS （fetal bovine serum） 和FCS （fetal calf serum） 是相同的意思， 两者都是指胎牛血清， FCS 乃错误的使用字眼， 请不要再使用。

CS （calf serum） 则是指小牛血清。

HS （horseserum） 则是指马血清。

6 培养细胞时应使用5 % 或10% CO2？

或根本没有影响？

一般培养基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作为pH 的缓冲系统， 而培养基中NaHCO3 的含量将决定细胞培养时应使用的CO2 浓度。

当培养基中NaHCO3 含量为每公升3.7 g 时，细胞培养时应使用10 % CO2；当培养基中NaHCO3 为每公升1.5 g 时， 则应使用5 % CO2 培养细胞。

7 何时须更换培养基？

视细胞生长密度而定， 或遵照细胞株基本数据上之更换时间，按时更换培养基即可。

8 培养基中是否须添加抗生素？

除于特殊筛选系统中外， 一般正常培养状态下， 培养基中不应添加任何抗生素。

9 附着性细胞继代时所使用之trypsin-EDTA 浓度？

应如何处理？

一般使用之trypsin-EDTA 浓度为0.05% trypsin-0.53mMEDTA.4 Na。

第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中， 保存于-20 °C，避免反复冷冻解冻造成trypsin 之活性降低， 并可减少污染之机会。

10 悬浮性细胞应如何继代处理？

一般仅需持续加入新鲜培养基于原培养角瓶中， 稀释细胞浓度即可， 若培养液太多时， 可将培养角瓶口端稍微抬高， 直到无法容纳为止。

分瓶时取出一部份含细胞之培养液至另一新的培养角瓶， 加入新鲜培养基稀释至适当浓度， 重复前述步骤即可。

11 欲将一般动物细胞离心下来，其离心速率应为多少转速？

欲回收动物细胞， 其离心速率一般为300xg （约1,000rpm），5 - 10 分钟， 过高之转速， 将造成细胞死亡。

12 细胞之接种密度为何？

依照细胞株基本数据上之接种密度或稀释分盘之比例接种即可。

细胞数太少或稀释的太多亦是造成细胞无法生长之一重要原因。

13 细胞冷冻培养基之成份为何？

动物细胞冷冻保存时最常使用的冷冻培养基是含5 - 10 %DMSO （dimethyl sulfoxide） 和90 - 95 % 原来细胞生长用之新鲜培养基均匀混合之。

注意：

由于DMSO 稀释时会放出大量热能， 故不可将DMSO 直接加入细胞液中， 必须使用前先行配制完成。

14 DMSO 之等级和无菌过滤之方式为何？

冷冻保存使用之DMSO 等级， 必须为Tissue culture grade之DMSO （如Sigma D2650）， 其本身即为无菌状况， 第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中， 保存于4°C， 避免反复冷冻解冻造成DMSO 之裂解而释出有害物质， 并可减少污染之机会。

若要过滤DMSO， 则须使用耐DMSO 之Nylon 材质滤膜。

15 冷冻保存细胞之方法？

冷冻保存方法一:

 冷冻管置于4 °C 30~60 分钟→ （-20 °C30 分钟*） → -80 °C 16~18 小时（或隔夜） → 液氮槽vaporphase 长期储存。

 冷冻保存方法二:

 冷冻管置于已设定程序之可程序降温机中每分钟降1-3 °C 至-80 °C 以下， 再放入液氮槽vapor phase长期储存。

*-20 °C 不可超过1 小时， 以防止冰晶过大，造成细胞大量死亡，亦可跳过此步骤直接放入-80°C 冰箱中，惟存活率稍微 降低一些。

16 细胞欲冷冻保存时， 细胞冷冻管内应有多少细胞浓度？

 冷冻管内细胞数目一般为1x106 cells/ml vial， 融合瘤细胞则以5x106 cells/ml vial 为宜。

17 应如何避免细胞污染？

细胞污染的种类可分成细菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉浆菌。

主要的污染原因为无菌操作技术不当、操作室环境不佳、污染之血清和污染之细胞等。

严格之无菌操作技术、清洁的环境、与品质良好之细胞来源和培养基配制是减低污染之最好方法。

18 如果细胞发生微生物污染时，应如何处理？

直接灭菌后丢弃之。

19 支原体（mycoplasma） 污染的细胞， 是否能以肉眼观察出异状？

不能。

除极有经验之专家外，大多数遭受支原体污染的细胞株， 无法以其外观分辨之。

20 支原体污染会对细胞培养有何影响？

支原体污染几乎可影响所有细胞之生长参数， 代谢及研究之任一数据。

故进行实验前，必须确认细胞为mycoplasma-free，实验结果之数据方有意义。

21 侦测出细胞株有支原体污染时， 该如何处理？

直接灭菌后丢弃，以避免污染其它细胞株。

22 CO2 培养箱之水盘如何保持清洁？

定期（至少每两周一次） 以无菌蒸馏水或无菌去离子水更换之。

23 为何培养基保存于4 °C 冰箱中， 颜色会偏暗红色， 且pH值会越来越偏碱性？

培养基保存于4 °C 冰箱中， 培养基内之CO2 会逐渐溢出，造成培养基越来越偏碱性。

而培养基中之酸碱指示剂（通常为phenol red） 的颜色也会随碱性增加而更偏暗红。

培养基偏碱之结果， 将造成细胞生长停滞或死亡。

若培养基偏碱时， 可以通入无菌过滤之CO2， 以调整pH 值。

24 各种细胞培养用的dish，flask是否均相同？

不同厂牌的dish 或flask， 其所coating 的polymer 不同， 制造程序亦不同， 虽对大部分细胞没有太大之影响， 惟少数细胞则可能因使用厂牌不同之dish 或flask 而有显著之生长差异。

25 购买之细胞冷冻管经解冻后，为何会发生细胞数目太少之情形？

研究人员在冷冻细胞之培养时出现细胞数目太少， 大都是因为离心过程操作上的失误， 造成细胞的物理性损伤， 以及细胞流失。

建议细胞解冻后不要立刻离心， 应待细胞生长隔夜后再更换培养基即可。

26 购买之细胞死亡或细胞存活率不佳可能原因？

研究人员在细胞培养时出现存活率不佳， 常见原因可归纳为：

培养基使用错误或培养基品质不佳。

血清使用错误或血清的品质不佳。

解冻过程错误。

冷冻细胞解冻后， 加以洗涤细胞和离心。

悬浮细胞误认为死细胞。

培养温度使用错误。

细胞置于-80 °C 太久。

27 收到之冷冻管瓶身破裂，瓶盖有裂纹，或瓶盖脱落之原因？

冷冻管瓶盖裂纹，或瓶身破裂，可能是因为操作者夹取冷冻管时用力不当，造成冷冻管裂损，建议使用止血钳小心夹取。

另冷冻管瓶盖松动或松脱，乃因热胀冷缩之物理现象，冷冻管有可能因此而造成细胞污染，故冷冻管于放入和取出液氮桶时，均应立刻将冷冻管再一次扭紧。

无菌操作基本技术 

1. 实验进行前，无菌室及无菌操作台（laminar flow） 以紫外灯照射30-60 分钟灭菌，以70% ethanol 擦拭无菌操作抬面，并开启无菌操作台风扇运转10 分钟后，才开始实验操作。

每次操作只处理一株细胞株，且即使培养基相同亦不共享培养基，以避免失误混淆或细胞间污染。

实验完毕后，将实验物品带出工作台，以70% ethanol 擦拭无菌操作抬面。

操作间隔应让无菌操作台运转10 分钟以上后，再进行下一个细胞株之操作。

2. 无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞，必要物品，例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置，其它实验用品用完即应移出，以利于气流之流通。

实验用品以70% ethanol 擦拭后才带入无菌操作台内。

实验操作应在抬面之中央无菌区域，勿在边缘之非无菌区域操作。

3. 小心取用无菌之实验物品，避免造成污染。

勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口，亦不要在打开之容器正上方操作实验。

容器打开后，以手夹住瓶盖并握住瓶身，倾斜约45°角取用，尽量勿将瓶盖盖口朝上放置桌面。

4. 工作人员应注意自身之安全，须穿戴实验衣及手套后才进行实验。

对于来自人类或是病毒感染之细胞株应特别小心操作，并选择适当等级之无菌操作台（至少Class II）。

操作过程中，应避免引起aerosol 之产生，小心毒性药品，例如DMSO 及TPA 等，并避免尖锐针头之伤害等。

5. 定期检测下列项目：

 5.1. CO2 钢瓶之CO2 压力 5.2. CO2 培养箱之CO2 浓度、温度、及水盘是否有污染（水盘的水用无菌水，每周更换）。

 5.3. 无菌操作台内之airflow 压力，定期更换紫外线灯管及HEPA 过滤膜，预滤网（300小时/预滤网，3000 小时/HEPA）。

6. 水槽可添加消毒剂（Zephrin 1:

750），定期更换水槽的水。

实验用品 

1. 种类?

  1.1. 细胞培养实验用品均为无菌，除了玻璃容器与pasteur pipet 外，其它均为塑料无菌制品。

  1.2. TC 级培养盘表面均有coating 高分子物质以让细胞吸附，培养容器种类有Tflask,plates, dishes, roller bottle 等，依实验需要使用。

  1.3. plastic sterile pipet:

 1ml, 2ml,5ml, 10ml, 25ml 

  1.4. 塑料离心管:

 15ml, 50ml，均有2 种不同材质，其中polypropylene （PP） 为不透明材质，polystyrene （PS） 为透明材质，可依实验需要而选择适合材质之离心管。

  1.5. glass pastuer pipet:

 9 inch，用以抽掉废弃培养液等。

  1.6. 玻璃血清瓶（Pyrex or Duran glassware）：

100ml, 250ml,500ml,1000ml 

2. 清洗?

  2.1. 新购玻璃血清瓶先以0.1~0.05 N HCl 浸泡数小时，洗净后才开始使用。

  2.2. 用过之玻璃血清瓶，以高压蒸汽灭菌，洗净后分别用一次与二次去离子水冲洗干净，勿加清洁剂清洗。

3. 灭菌?

  3.1. 实验用玻璃血清瓶以铝箔纸包覆瓶盖，高压蒸汽灭菌121℃, 15 lb, 20 分钟，置于oven 中烘干。

  3.2. 实验用玻璃pasteur pipet 以干热灭菌170℃, 4 小时。

  3.3. 液体或是固体废弃物可用10% hypochloride 溶液（次氯酸，即漂白水） 或是蒸汽高压灭菌121℃, 15 lb, 20 分钟处理。

培养基 

1. 液体培养基贮存于4℃冰箱，避免光照，实验进行前放在37℃水槽中温热。

2. 液体培养基（加血清） 存放期为六个月，期间glutamine 可能会分解，若细胞生长不佳，可以再添加适量glutamine。

3. 粉末培养基配制（以1 升为例）：

  3.1. 细胞培养基通常须添加10% 血清，因此粉末培养基之配制体积为900ml，pH 为7.2 - 7.4。

NaHCO3 为另外添加，若将NaHCO3 粉末直接加入液体培养基中会造成pH 之误差，或局部过碱。

因此粉末培养基及NaHCO3 粉末应分别溶解后才混合，然后用CO2 气体调整pH，而非用强酸（HCl）或强碱（NaOH），因为氯离子对细胞生长可能有影响，且贮存时培养基的pH 易发生改变。

  3.2. 材料：

   3.2.1. 纯水（milli-Q 水或二次至三次蒸馏水，水品质非常重要） 

   3.2.2. 粉末培养基 

   3.2.3. NaHCO3 （Sigma S-4019） 

   3.2.4. 电磁搅拌器 

   3.2.5. 无菌血清瓶 

   3.2.6. 0.1 或0.2 mm无菌过滤膜 

   3.2.7. pH meter 

   3.2.8. 真空帮浦 

   3.2.9. CO2 气体

  3.3. 步骤：

   3.3.1. 取粉末培养基溶于700ml milli-Q 水中，搅拌使其溶解。

   3.3.2. 称取适量之NaHCO3 粉末（数量依培养基种类而异，表一）溶于200ml milli-Q 水中，搅拌使其溶解，然后通入CO2 气体至饱和，约3-5 分钟。

   3.3.3. 将溶解且含饱和CO2 之NaHCO3 溶液加入溶解之液体培养基中混合。

混后溶液之pH应为7.2-7.4，除非pH 值偏差太大，否则不需用酸碱再调整之。

若为太碱，可再通入CO2 气体调整pH。

培养基以真空帮浦通过过滤膜时，pH 会升高0.1-0.2。

   3.3.4. 以0.1 或0.2 mm 无菌过滤膜过滤灭菌，同时分装至无菌容器中，标示培养基种类、日期、瓶号等，贮存于4℃。

（血清亦可加入培养基中一起过滤） 

   3.3.5. 配制之培养基配制须作生长试验与污染测试。

4. 配制培养基之生长测试 

   4.1. 材料：

   4.1.1. MDCK cell （ATCC CCL-34 或CCRC 60004） 4.1.2. 6-well TC plate （or 35 mm TC dish） 

   4.1.3. methanol 

   4.1.4. glacial acetic acid 

   4.1.5. 10% Giemsa solution （GibcoBRL 10092-013） 

   4.2. 步骤：

   4.2.1. 以待测试培养基培养MDCK cell，接种MDCK 细胞于6-well plate （或35mm TC dish） 中，每个well 接种1 × 102 活细胞，同时作对照组实验。

   4.2.2. 接种5～7 天后，在100 倍倒立显微镜作观察细胞群落之生长，待细胞群落大到可以肉眼观察，而群落间不互相接触时即可。

   4.2.3. 去除培养基，加入1ml Carnoy’s 固定液（甲醇：

冰醋酸?

 3:

1），室温下静置10 min。

   4.2.4. 去除固定液，水洗二次。

   4.2.5. 加入1ml 10% Giemsa solution，，室温下静置染色2-3 min。

   4.2.6. 去除染液，水洗二次。

   4.2.7. 以肉眼计数群落数，并比较之，若新配制或新批号的培养基对细胞生长不佳，则丢弃之如何选用特殊细胞系培养基？

  培养某一类型细胞没有固定的培养条件。

在MEM中培养的细胞，很可能在DMEM或M199中同样很容易生长。

总之，首选MEM做粘附细胞培养、RPMI-1640做悬浮细胞培养是一个好的开始，各种目的无血清培养最好首选AIM V（12005）培养基（SFM）。

L-谷氨酰胺在细胞培养中重要吗？

它在溶液中不稳定吗？

  L-谷氨酰胺在细胞培养时是重要的。

脱掉氨基后，L-谷氨酰胺可作为培养细胞的能量来源、参与蛋白质的合成和核酸代谢。

L-谷氨酰胺在溶液中经过一段时间后会降解，但是确切的降解率一直没有最终定论。

L-谷氨酰胺的降解导致氨的形成，而氨对于一些细胞具有毒性。

GlutaMAX-I是什么？

培养细胞如何利用GlutaMAX-I？

这个二肽有多稳定？

  GlutaMAX-I 二肽是一个L-谷氨酰胺的衍生物，其不稳定的alpha-氨基用L-丙氨酸来保护。

一种肽酶逐渐裂解二肽，释放L-谷氨酰胺供利用。

 GlutaMAX-I二肽非常稳定，即使在121磅灭菌20分钟，GlutaMAX-I 二肽溶液有最小的降解，如果在相同条件下，L-谷氨酰胺几乎完全降解。

什么培养基中可以省去加酚红？

  酚红在培养基中被用来作为PH值的指示剂：

中性时为红色，酸性时为黄色，碱性时为紫色。

研究表明，酚红可以模拟固醇类激素的作用，（特别是雌激素）。

为避免固醇类反应，培养细胞，尤其是哺乳类细胞时，用不加酚红的培养基。

由于酚红干扰检测，一些研究人员在做流式细胞检测时，不使用加有酚红的培养基。

 酚红在培养基中被用来作为PH值的指示剂：

中性时为红色，酸性时为黄色，碱性时为紫色。

研究表明，酚红可以模拟固醇类激素的作用，（特别是雌激素）。

为避免固醇类反应，培养细胞，尤其是哺乳类细胞时，用不加酚红的培养基。

由于酚红干扰检测，一些研究人员在做流式细胞检测时，不使用加有酚红的培养基。

 如何用台盼兰计数活细胞？

 用无血清培养基把细胞悬液稀释到200～2000个/毫升，在0.1毫升的细胞悬液中加入0.1毫升的0.4％的台盼兰溶液。

轻轻混匀，数分钟后，用血球计数板计数细胞。

活细胞排斥台盼兰，因而染成蓝色的细胞是死细胞。

如何消除组织培养的污染？

  当重要的培养污染时，研究者可能试图消除或控制污染。

首先，确定污染物是细菌、真菌、支原体或酵母，把污染细胞与其它细胞系隔离开，用实验室消毒剂消毒培养器皿和超净台，检查HEPA过滤器。

 高浓度的抗生素和抗霉菌素可能对一些细胞系有毒性，因而，做剂量反应实验确定抗生素和抗霉菌素产生毒性的剂量水平。

这点在使用抗生素如两性霉素B和抗霉菌素如泰乐菌素时尤其重要。

下面是推荐的确定毒性水平和消除培养污染的实验步骤。

 1. 在无抗生素的培养基中消化、计数和稀释细胞，稀释到常规细胞传代的浓度。

 2. 分散细胞悬液到多孔培养板中，或几个小培养瓶中。

在一个浓度梯度范围内，把选择抗生素加入到每一个孔中。

例如，两性霉素B推荐下列浓度，0.25，0.50，1.0，2.0，4.0,8.0 mg/ml。

 3. 每天观测细胞毒性指标，如脱落，出现空泡，汇合度下降和变圆。

4. 确定抗生素毒性水平后，使用低于毒性浓度2～3倍浓度的抗生素的培养液培养细胞2～3代。

 5. 在无抗生素的培养基中培养细胞一代。

 6. 重复步骤4。

 7. 在无抗生素的培养基中培养4～6代，确定污染是否以已被消除。

培养基中丙酮酸钠的作用是什么？

  丙酮酸钠可以作为细胞培养中的替代碳源，尽管细胞更倾向于以葡萄糖作为碳源，但是，如果没有葡萄糖的话，细胞也可以代谢丙酮酸钠。

1.如何选用培养基？

   培养某一类型细胞没有固定的培养条件。

在MEM中培养的细胞，很可能在DMEM或M199中同样很容易生长。

总之，首选MEM做粘附细胞培养、RPMI-1640做悬浮细胞培养，各种目的无血清培养的首选是AIM V培养基（SFM）。

2.为什么要热灭活血清？

   加热可以灭活补体系统。

激活的补体参与溶解细胞事件，刺激平滑肌收缩，细胞和血小板释放组胺，激活淋巴细胞和巨噬细胞。

在进行免疫学研究、培养ES细胞、昆虫细胞和平滑肌细胞时，推荐使用热灭活血清。

3.L-谷氨酰胺在细胞培养中重要吗？

   它在溶液中不稳定吗？

 L-谷氨酰胺在细胞培养时是重要的。

脱掉氨基后，L-谷氨酰胺可作为培养细胞的能量来源、参与蛋白质的合成和核酸代谢。

L-谷氨酰胺在溶液中经过一段时间后会降解，但是确切的降解率一直没有最终确定。

L-谷氨酰胺的降解导致氨的形成，而氨对于一些细胞具有毒性。

4.GlutaMAX-I是什么？

   培养细胞如何利用GlutaMAX-I？

这个二肽有多稳定？

 GlutaMAX-I二肽是L-谷氨酰胺的衍生物，将其不稳定的α-氨基用L-丙氨酸来保护。

一种肽酶逐渐裂解二肽，释放L-谷氨酰胺供利用。

GlutaMAX-I二肽非常稳定，即使在121磅灭菌20分钟，GlutaMAX-I二肽溶液有最小的降解，如果在相同条件下，L-谷氨酰胺几乎完全降解。

5.为什么培养基中可以省去加酚红？

   酚红在培养基中被用来作为PH值的指示剂：

中性时为红色，酸性时为黄色，碱性时为紫色。

研究表明，酚红可以模拟固醇类激素的作用（特别是雌激素）。

为避免固醇类反应，培养细胞，尤其是哺乳类细胞时，用不加酚红的培养基。

由于酚红干扰检测，一些研究人员在做流式细胞检测时，不使用加有酚红的培养基。

6.如何用台盼兰计数活细胞？

   用无血清培养基把细胞悬液稀释到200-2000个/毫升，在0.1毫升的细胞中加入0.1毫升的0.4％的台盼兰溶液。

轻轻混匀，数分钟后，用血球计数板计数细胞。

活细胞排斥台盼兰，因而染成蓝色的细胞是死细胞。

7.如何消除组织培养的污染？

   当重要的培养污染时，研究者可能试图消除或控制污染。

首先，确定污染物是细菌、真菌、支原体或酵母，把污染细胞与其它细胞系隔离开，用实验室消毒剂消毒培养器皿和超净台，检查HEPA过滤器。

高浓度的抗生素和抗霉菌素可能对一些细胞系有毒性，因而，做剂量反应实验确定抗生素和抗霉菌素产生毒性的剂量水平。

这点在使用抗生素如两性霉素B和抗霉菌素如泰乐菌素时尤其重要。

下面是推荐的确定毒性水平和消除培养污染的实验步骤。

  1）在无抗生素的培养基中消化、计数和稀释细胞，稀释到常规细胞传代的浓度。

  2）分散细胞悬液到多孔培养板中，或几个小培养瓶中。

在一个浓度梯度范围内，把选择抗生素加入到每一个孔中。

例如，两性霉素B推荐下列浓度，0.25，0.50，1.0，2.0，4.0,8.0 mg/ml。

  3）每天观测细胞毒性指标，如脱落，出现空泡，汇合度下降和变圆。

  4）确定抗生素毒性水平后，使用低于毒性浓度2-3倍浓度的抗生素的培养液培养细胞2-3代。

  5）在无抗生素的培养基中培养细胞一代。

  6）重复步骤4。

  7）在无抗生素的培养基中培养4-6代，确定污染是否以已被消除。

8.培养基中丙酮酸钠的作用是什么？

   丙酮酸钠可以作为细胞培养中的替代碳源。

尽管细胞更倾向于以葡萄糖作为碳源，但是，如果没有葡萄糖的话，细胞也可以代谢丙酮酸钠。

9.Hank’s 平衡盐溶液（HBS）要在空气中使用，不需要CO2培养箱。

原因是什么？

   Hank’s 平衡盐溶液（HBS）和Earle’s平衡盐溶液（EBS）有什么本质的功能差别？

 HBS和 EBS 的主要差别在于碳酸氢钠的水平，碳酸氢钠的含量在Eagles （2.2g/L）中比在Hanks （0.35g/L） 中高。

碳酸氢钠需用高水平的CO2平衡，以维持溶液的PH值。

Eagles液在空气水平的CO2 中，溶液会变碱，Hanks液在CO2培养箱中会变酸。

如果希望在CO2培养箱中保存组织，需要用Eagles液。

如果仅仅是清洗将要在细胞培养基中储存的组织，用Hanks液就可以了。

10.Qualified和 Certified 胎牛血清有什么差别?

   Certifi