实验动物模型的制备.docx

实验动物模型的制备.docx

《实验动物模型的制备.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《实验动物模型的制备.docx（13页珍藏版）》请在冰豆网上搜索。

实验动物模型的制备

病理生理学实习指导

一、缺氧模型的实验性复制

㈠目的与原理

同时对复

发展和转归的规

通过给动物低氧环境，影响Hb的带氧能力及使组织不能利用氧等方法，复制不同类型缺氧模型，经呼吸、机能状态、皮肤粘膜颜色等指标，显示了其不同症状与特征，制模型的方法及原理又有大概的了解，有利于深入和研究各缺氧症的发生、

律。

低张性缺氧一氧化碳中毒氰化钾中毒

1低氧性缺氧

⑴将小白鼠至于250ml广口瓶（内装钠石灰吸收二氧化碳）中观察上述指标。

⑵:

将瓶塞紧，同时记录时间，每5min重复观察上述指标一次（如有变化则随时记录）

直到动物死亡为止。

2•—氧化碳中毒性缺氧

⑴如图8-3-1装好一氧化碳发生装置。

⑵）将小白鼠一只放入瓶中，观察上述指标。

⑶取甲酸3ml放入试管内，加入浓硫酸2ml,塞紧。

如气泡产生较少，可用酒精灯加热，加速一氧化碳的产生（但不可过热以至液体连续沸腾，因一氧化碳产生过快，动物迅速死亡，血液颜色改变不明显）。

⑷在整个过程中，注意观察上述指标。

（注）：

一氧化碳产生原理：

H2SO4

HCOOHCOT+H2O

△

3•氰化钾中毒性缺氧

⑴称小白鼠体重，观察上述指标，预先准备1%亚硝酸钠及10%硫代硫酸钠各10mlKg-1,以备急救用。

图8-3-1一氧化碳发生装置

⑵腹腔注射0.125%氰化钾9mlKg-1，立即观察上述指标。

⑶待小白鼠出现共济失调或竖尾时，将准备好的急救药注入腹腔。

⑷重复步骤⑵，不予抢救。

⑸⑸将三种缺氧实验动物尸体打开腹腔，比较血液或肝脏颜色。

附：

硫代硫酸钠（Na2S2O3）及亚硝酸钠（NaNO2）急救机制

Na2S2O3是一种氧化剂，能使血红蛋白氧化成高铁血红蛋白，后者与氰酸根结合成氰化高铁血红蛋白，使细胞色素氧化酶解脱出来，从而恢复细胞的生物氧化功能。

Na2S2O3在体内S与HCN结合变成无毒性的HCNS由肾脏排出。

Na2S2O3+CO2+H2OCO3+NaHSO3+S

HCN+S硫氰酸酶（肝）HCNS

㈤注意事项

CO

吸取硫酸与甲酸时，注意不要溅到衣服或皮肤上。

CO中毒实验完毕后，及时处理

发生器内的残余物。

㈥思考题

注射亚硝酸盐，所观察指标有改变，为什么？

二、呼吸功能衰竭

㈠目的与原理

本实验通过复制呼吸功能衰竭的病理模型，观察血气和呼吸的变化，并分析其机制。

呼吸功能包括外呼吸、内呼吸和气体运输功能。

呼吸衰竭指的是由于外呼吸功能严重障碍，以致动脉血氧分压低于正常范围的病理过程。

肺通气障碍或/和肺换气功能障碍都可

导致呼吸功能衰竭。

㈡实验对象健康成年兔。

㈢器材与药品

兔手术台，哺乳动物手术器械一套，连接三通的动脉插管，二道生理记录仪，张力换能器，血气分析仪，输液装置。

20%氨基甲酸乙酯溶液，1%肝素生理盐水，生理盐水，10-3肾上腺素。

㈣步骤与观察

1•麻醉与固定取兔一只，称重，从耳缘静脉按5mlkg-1注射20%氨基甲酸乙酯溶液。

麻醉后将兔仰卧位固定于兔台上。

2•颈部手术剪去颈部被毛，切开皮肤，分离皮下组织，作气管插管，再分离左侧颈总动脉，作动脉插管（插管内充满肝素生理盐水）。

分离右侧颈外静脉，作静脉插管，并与

输液装置相连，缓慢输入生理盐水。

3•血气分析用2ml注射器先抽取少许肝素，润湿注射器壁后推出，使注射器死腔和

针头内充满肝素溶液，然后略松支动脉夹放血注许，冲去动脉插管内的肝素生理盐水，再用

肝素处理过的注射器与动脉插管相连，让血液自动流入注射器内（切勿进入气泡），取血1

ml，采血后迅速套上带软木塞的针头，作血气分析。

4•呼吸运动的描记将张力换能器上的挂钩钩在兔剑突部位的皮肤上，调节挂钩与换能

器敏感梁之间的牵引线，使张力适中，且牵引线须垂直。

将换能器与二道生理记录仪连接好。

二道生理记录仪的—寸间常数I置于DC,―滤波置于10Hz,灵敏度5mV/cm，走纸速度1mm/s。

描记一段正常呼吸曲线。

5•复制窒息用弹簧夹将气管插管上所套橡皮管完全夹住，使动物处于完全窒息状态

30s，取动脉血作血气分析并观察呼吸变化。

立即放开弹簧夹，等10min，待动物恢复正常。

6.复制气胸于兔右胸第4~5肋间插入一16号针头造成右侧气胸，5min~10min时取动

脉血作血气分析，同时观察呼吸变化。

用50ml注射器将胸腔内空气抽尽，拔出针头，等10min~20min,待动物呼吸恢复正常。

7•复制肺水肿从颈外静脉快速（180滴~200滴/min）输入生理盐水（100mlkg-1）,滴注接近完毕时，立即向输液瓶内加入0.1%肾上腺素0.9mlkg-1，输完全部液体，观察呼吸的变化，并作血气分析。

动物出现明显的血气变化及呼吸变化后，用止血钳夹住气管，处死动物，打开胸腔，在气管分叉处结扎气管以防止水肿液流出，在结扎处以上切断气管，小心将心脏及其血管分

离，取出肺脏后用滤纸吸净肺表面，称重，计算肺系数。

正常肺系数为4~5。

肺系数=

肺重!

量（kg））

观察肺脏体积、颜色的改变，并切开肺脏，观察有无泡沫样的

液体流出。

㈤注意事项

1•取动脉血切忌与空气接触，如针管内有小气泡要立即排除。

2•复制气胸后一定将胸腔内空气完全抽出。

3•取肺脏时应避免损伤肺组织，并尽量减少对肺组织的挤压。

㈥思考题

•实验中复制肺水肿的机制是什么？

•实验中由气管插管中流出大量液体，而肺系数值增大并不明显应考虑哪些因素？

附1：

实验性肺水肿的其它复制方法

•抬高兔台头端，用2ml注射器吸取10%葡萄糖溶液1ml~2ml，将针头插入缺管插管分叉处，缓慢注入气管，造成渗透性肺水肿，5min~10min后放平兔台，取动脉血作血气分析，并观察呼吸的变化。

2•从耳缘静脉缓慢注入液体石蜡1ml或油酸0.06ml~0.08ml（用前经水浴加热至37C左

右），观察呼吸的变化，于注射后20min和40min时分别取血作血气分析。

三、急性右心衰竭病理模型制备

㈠目的与原理本实验要求掌握急性右心衰竭模型的制备方法。

观察复制过程中机体出现的表现，理解其发生机制。

由耳缘静脉缓慢注入栓塞剂，经静脉回流至肺脏，并栓塞在肺循环，引起肺动脉高压，即右心室后负荷增加。

如再输入大量生理盐水，使回心血量大大增加，则在后负荷增加的基础上，又增加了前负荷，右心功能则急剧衰竭，症状加重，甚至有腹水，直至动物死亡。

㈡实验对象健康成年兔，2.5kg以上。

㈢器材与药品兔手术台，哺乳动物手术器械，中心静脉压测定装置，呼吸描记装置，心室插管，听诊

器，注射器（20ml,5ml,1ml）,二道生理记录仪与电刺激器（或MS302-PC型生物信号处理系统）。

20%氨基甲酸乙酯溶液,生理盐水,液体石蜡,2.5%尼可刹米,肝素溶液。

㈣步骤与观察

二道生理记录仪

1.兔称重、麻醉固定，二道生理记录仪参数见附1。

2•颈部剪毛，作正中切口，钝性分离颈部组织，作左侧颈总动脉插管（连接动脉压换能器）与气管插管（连接玛俐氏气鼓,并调节好玛俐氏气鼓与张力换能器的距离）。

3.右侧颈外静脉插入导管至右心房或右心房口（5cm左右）。

通过输液管连上输液瓶和中心静脉压检压计,先使导管与输液瓶相通,保持静脉插管通畅。

或有多导仪实验组用经右侧颈外静脉插入心室插管至右心室（7cm左右）,插管的同时开动多导仪描记压力曲线以观察是否插入了右心室,。

此组输液从耳缘静脉处。

4•观察记录各项生理指标、心率、心音强度、肺部听诊（有无异常呼吸音）、动脉血压、

中心静脉压（见附2）或右心室内压（包括收缩与舒张期压力）、循环时间（由耳缘静脉注射尼可刹米0.2mlKg-1，作标记，然后测量从标记到呼吸加深加快这段距离，根据走纸速度计算时间,即循环时间。

5•用2ml注射器吸取液体石蜡，按0.5mlKg-1由耳缘静脉缓慢注射，同时密切观察中心静脉压（或右心室内压）、血压的变化。

如前者升高或后者下降则终止注射。

6•复测记录4各项指标。

7.待血压、呼吸稳定后，以60滴/min的速度输入生理盐水，直至血压降到8kPa以下。

8•复测记录4各项指标。

9•动物死亡后，剖开胸、腹腔（注意不要损伤脏器与大血管），观察有无胸、腹水、肠

系膜血管充盈与脏器水肿。

㈤注意事项

1．液体石蜡注入速度要慢,否则易引起急性肺栓塞,很快死亡。

2．外加因素或试剂时均要做标记。

3．输入生理盐水过程中可适当加注些液体石蜡。

4．测量动脉血压、中心静脉压每次要观察与记录实验因素前与实验因素之后的数值。

㈥思考题本右心衰竭模型机体可出现哪几型缺氧表现？

其机制是什么？

四、失血性休克

㈠实验目的

1.复制兔失血性休克模型。

2.观察兔在失血性休克时的表现及微循环变化。

3.抢救失血性休克。

4.探讨失血性休克的发生机制。

㈡实验对象

健康成年兔，体重2.5〜3.0kg。

㈢器材与药品

手术器械（手术刀，止血钳，眼科剪，眼科镊，手术镊等），输血输液装置，中心静脉压测试装置，微循环观察装置，气管插管，动脉套管，静脉导管，输尿管导管，记滴器，温度计，注射器（1ml，10ml，50ml）。

20％氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，微循环灌流液，0.3%肝素溶液。

㈣步骤与观察

1•取兔一只，称重后耳缘静脉麻醉。

2•将麻醉的兔仰卧位固定在兔台上，行气管插管术、左侧颈总动脉和右侧颈外静脉插管术。

3•经耳缘静脉注入0.3%肝素溶液（2mlkg-1）

4•将气管插管与呼吸描记装置连接。

5•将动脉插管接上三通管，一侧与血压描记装置连接描记血压，另一侧连上放有肝素（约

0.1g）的50ml注射器，并暂时夹闭导管，以备放血用。

6.将颈外静脉插管连接水减压计的细塑料导管（导管内充满含肝素生理盐水）。

导管的

外端用三通管连上输液瓶和水减压计，用以测中心静脉压和输液。

在测压前，阻断减压计侧管，使导管与输液瓶相通，缓慢输入生理盐水（5滴~10滴/min），保持静脉通畅。

7.行输尿管插管术。

用记滴器记录每分钟排尿的滴数。

8.在右侧腹直肌外缘作长6cm纵行的中腹部切口，钝性分离肌肉，打开腹腔后，推开大网膜，找出一段游离度较大的小肠肠袢，轻轻从腹腔拉出，放置在微循环恒温灌流盒内，用显微镜观察肠系膜的微循环。

9.放血前观察动物的各项生理指标，包括一般情况、皮肤粘膜颜色、肛温、血压、呼吸、

心率（快放记录纸）、中心静脉压、尿量、肠系膜微循环等，并作记录。

附：

中心静脉压的测量方法

⑴从颈外静脉插入静脉导管，应插到上腔静脉入右心房入口处（相当于锁骨下1cm~2cm）,插入导管长度为5cm~8cm，并经三通管与输瓶和水检计相连。

⑵）测压前使输液瓶内生理盐水灌满水检压计，检压计"0"点刻度与心脏水平一致。

⑶测压时应阻断与输液瓶相通的侧管，使水检压计与静脉导管相通，观察水检压计内液面逐渐下降到某一刻度时不再下降，此时液面随呼吸上下波动，读取此时的液面刻度，即中心静脉压。

⑷测完压力后，再使检压计内充满生理盐水，然后阻断与检压计相通的侧管，使输液瓶与静脉道管相通，维持慢速输液（5滴~10滴/min），维持道管通畅。

附：

肠系膜微循环的观察

⑴向恒温水浴灌流盒内注入38C的灌流液（台氏液加入1%明胶配成）。

⑵选择一段游离度大的小肠袢，从腹腔内拉出后放入恒温灌流盒的水浴槽内，使肠系膜均匀地平铺在有机玻璃凸形观察环上，压上固定板，调整灌流盒的液面，使液面刚覆盖过肠系膜，用透射光源或侧射光源在生物显微镜下观察。

⑶在镜下选好视野，分清肠系膜各种血管，包括动脉、静脉和毛细血管（仅能通过一个红细胞的血管）。

观察血流速度，血管口径（可用测微器测定）及视野下某一固定区域内毛细血管管袢数目，找出标记血管，以便固定视野作动态的前后比较，也可用显微镜电视进行动态观察。

10.打开颈总动脉插管与注射器相连的侧管，使血液从颈总动脉流入注射器内，一直放血至血压降到5.3kPa（40mmHg）时，调节注射期内放出的血量，使血压稳定在低水平上。

11.使血压维持在5.3kPa15~25min，观察注射器中血量的增减，失血期间动物各项生理指标（同步骤9）改变，以及肠系膜微循环改变。

12.停止放血，将注射器内的血液注入输液瓶内，快速从静脉输回原血和失血量等量的生理盐水（50滴/min）进行抢救，输血、输液再复查动物的一般情况及各项生理指标和微循环是否恢复正常。

可根据休克的病理生理改变，自行设计抢救方案，再观察抢救效果。

㈤注意事项

1.麻醉要深浅适度，以免因疼痛刺激导致神经源性休克。

2.尽量减少手术出血。

3.牵拉肠袢要轻，以免引起创伤性休克。

4.动脉套管和注射器中，操作前应加一定量的肝素。

静脉导管一经插入，应立即缓慢滴注生理盐水。

5.本实验因手术较多，宜几个人分工协作，以保证实验成功率。

㈥思考题

1.兔失血性休克模型怎样制备？

2.失血性休克时兔有哪些表现？

微循环有什么变化？

3.失血性休克发生主要机制是什么？

五、肝性脑病

【实验目的】

1、掌握氨中毒复制肝性脑病动物模型的方法。

2、探讨氨在肝性脑病发生机制中的作用。

【实验原理】肝性脑病是继发于严重肝病的神经精神综合征。

有关肝性脑病的发病机制有很多学说，其中之一是氨中毒学说。

该学说认为由于肝细胞严重受损，使血氨生成增多而清除不足时，可使血氨增高。

增多的血氨通过血脑屏障进入脑组织，通过干扰脑的能量代谢，使脑内神经递质发生改变以及抑制神经细胞膜等作用，引起脑的功能障碍，病人从而出现相应的症状和体征。

本实验通过肝大部分结扎的方法，人为地阻断肝脏的血流，造成肝细胞功能急性损伤，在此基础上再经消化道输注复方氯化铵溶液，使血氨水平明显升高，从而出现抽搐、昏迷等类似肝性脑病的临床症状。

【实验对象】家兔

【器械与药品】

常规手术器械，兔固定台，50ml注射器，细导尿管，棉线

1%普鲁卡因，复方氯化铵溶液（含2.5%氯化铵，1.5%碳酸氢钠，5%葡萄糖），生理盐水

【步骤与方法】

1、取家兔一只，称重后仰卧位固定在兔台上，剪去腹部正中的被毛，沿上腹部中线用1%普鲁卡因做局部浸润麻醉。

2、自胸骨剑突下，沿腹正中线作一长约6~8cm左右的切口，分层局麻，钝性分离皮下组织，沿腹白线剪开腹壁，打开腹腔，暴露肝脏。

用左手指腹向下轻压肝脏膈面，可见在肝与膈肌之间有一薄而透明、呈三角形的镰状韧带，小心将其剪断，以增加肝脏的游离度。

观察正常的肝脏颜色，探查家兔肝脏的叶数。

3、急性肝功能不全动物模型的制备——肝大部结扎：

棉线用生理盐水浸湿后，沿肝左外叶、左中叶、右中叶和方形叶之根部围绕一周并结扎，以阻断大部分肝血流，造成家兔急性肝功能不全。

由于右外叶和尾状叶之间门脉血管为独立分支，不会同时被结扎，因而得以保留。

待上述肝叶变成暗褐色后用眼科剪在已结扎的肝叶上剪一小口，如无明显渗血，说明肝大部结扎成功，否则就要重新结扎。

4、十二指肠插管：

沿胃幽门向下找出一段十二指肠，在肠管下方血管稀疏处，用止血钳穿透肠系膜并穿两根线备用。

用眼科剪在肠壁上剪一小口，将细导尿管顺远胃端方向插入肠腔约6cm，直接连肠管一起结扎固定，防止插管脱落。

近胃

端也应用线结扎，以防胃内容物流出。

然后将肠送回腹腔内，细导尿管另一端置于腹腔之外，用止血钳夹住腹壁，关闭腹腔。

5、观察、记录家兔的一般情况、呼吸、角膜反射、四肢肌张力及对刺激（敲打兔台或用针刺）的反应。

6、制备肝性脑病动物模型：

用注射器每间隔5分钟向十二指肠插管注入复方氯化铵溶液

5ml，仔细观察家兔呼吸、肌张力等指标的变化，当出现全身性抽搐时停止注射。

停止注射。

记录出现痉挛的时间和所灌注复方氯化铵溶液总量，并计算每公斤体重的用量（kg/ml）。

7、对照组：

另取家兔一只，称重后固定于兔台上，腹部正中切口，打开腹腔，行肝大部结扎及十二指肠插管，术后每隔5分钟向十二指肠内注入5ml生理盐水，观察动物有无异常，并与注入复方氯化铵溶液的实验家兔进行比较分析。

【注意事项】

1、游离肝脏和剪破镰状韧带的动作应准确、轻柔，以免肝叶破裂出血和损伤膈肌造成气胸；

结扎肝叶应尽量靠近根部肝门处，以防拦腰结扎肝叶造成出血；结扎线松紧要适度，过紧可能造成肝叶撕裂而出血，过松达不到阻断血流的目的。

2、十二指肠插管要插入一定深度，必须牢固固定，因家兔并为全身麻醉，以防实验中家兔挣扎或剧烈抽搐时插管滑脱，复方氯化铵溶液漏入腹腔。

3、关闭腹腔前，检查液体注入管道是否通畅，有无渗漏。

（先推注5ml后再关闭腹腔）

4、动物经输入一定量氯化铵后，一般会出现抽搐，但由于动物未做全身麻醉，实验期间可能出现挣扎，误判为抽搐。

故实验中要注意与氨中毒抽搐的鉴别。

【思考题】

1、从肠道注入复方氯化铵溶液为什么可使家兔的血氨升高？

2、灌注复方氯化铵溶液后，家兔的呼吸如何变化？

如何解释这些变化？

3、家兔氨中毒后，发生昏迷的机理是什么？

4、给家兔体内注入复方氯化铵溶液后,家兔出现痉挛的机制是什么？

5、肠道灌注生理盐水的家兔是否出现异常表现？

其实验结果有何意义？

6、为什么本实验注入的是复方氯化铵制剂？

7、你对本实验的实验设计思路、方法与步骤安排及救治原理设计等，有什么更好的想法与建议？

六、高钾血症

【实验目的】

1、掌握家兔高钾血症模型的复制方法；

2、观察高钾血症家兔心电图变化的特征；

3、了解血钾升高后，对心肌细胞的毒性作用；

4、通过实验进一步了解高钾血症产生的原因、机理和抢救措施，并比较各抢救治疗方案的效果。

【实验原理】

血钾浓度升高可对心肌细胞产生毒性作用，干扰正常心肌细胞的电生理活动，引发多种心律失常，尤其是心室纤颤和心跳骤停。

本实验旨在通过静脉给钾，复制高血钾症，通过观测心电图变化，了解高血钾症对心脏的影响。

【实验对象】家兔（雌雄不限）

【器材与药品】20％乌拉坦，生理盐水，5％及10％氯化钾生理盐水溶液，4％碳酸氢

钠溶液，5％氯化钙溶液，30％葡萄糖溶液

婴儿秤，兔手术台，BL—410生物实验系统多媒体，心电针形电极，输液装置一套，手术器械一套，气管插管,5ml、10ml、20ml注射器。

【步骤与方法】

1、称重、麻醉和固定动物家兔称重后，经耳缘静脉缓慢推注20%乌拉坦（5ml/kg））行全

身麻醉，仰卧位固定于兔台上。

2、心电描记：

标II导联导线连接的方法：

在动物四肢远端显露部位分别用金属注射针头刺

入皮下（不能刺入肌肉，以防止肌颤的干扰），进针约2cm。

按右前肢（白），右后肢（黑），左后肢（红）的顺序联接，电极另一端连接计算机的任一通道。

打开BL.410系统，在—输入信号I菜单中相应通道选中―、电II启动实验，描记实验前正常心电图，观察心电波形：

区分P、QRS主波波群以及T波。

观察记录输入氯化钾前的

心电。

观察过程中，做好标记，如：

—正常I—注射5%KCI第一次等，以便于比较分析。

3、颈部手术：

⑴气管切开术；⑵颈外静脉插管术：

缓慢输入生理盐水，（5〜10滴/min）,以保持管道通畅

4、高钾血症的复制（耳缘静脉推注法）以lml/min速度经耳缘静脉缓慢推注5%氯化钾溶液

lml/kg,间隔5分钟再推注同等剂量氯化钾共3次。

然后每间隔5min推注10%氯化钾溶

液1ml/kg共3次。

注射氯化钾的过程中，注意观察心电图波形的变化规律。

观察到高血钾的心电图异常改变（高尖T波，P波低平、增宽，QRS波群低压变宽，出现心室扑动或颤动）

后,立即停止注射,并开始实施抢救措施。

5、高钾血症的抢救在滴注氯化钾生理盐水溶液之前,必须选择和准备好抢救药物,包括：

（1）单独用30%葡萄糖溶液静脉缓慢滴注；

（2）4%碳酸氢钠5ml/kg快速静脉滴注,严重者

可缓慢静脉注射；（3）5%氯化钙2ml/kg缓慢静脉推注。

事先选择好耳缘静脉输注通道,在心电图出现典型高血钾改变后立即实施抢救,通过耳缘静脉快速注入抢救药物。

如果10秒内无法输入抢救药物,救治效果欠佳。

实施各项抢救项目,同时观察心电图恢复状态。

6、致死作用观察当心电图基本恢复正常后,迅速打开胸腔,暴露心脏,肉眼直接观察心

脏活动情况。

静脉推注致死剂量的10%氯化钾（3ml/kg），边注射边观察心电波形的改变，

出现室颤或成一直线时停止注射,观察心室纤颤及心脏停搏时的状态。

【实验结果记录】

心电图变化特点

注射前

注入KCI

严重心律失常

抢救

4%NaHC03溶

液

5%CaCl2溶液

30%葡萄糖溶液

10%KCI致死作用观察

【注意事项】

1、动物麻醉深浅要适度，麻醉过深易抑制呼吸，过浅时动物疼痛则易引起肌肉颤动，对心电图记录造成干扰。

2、保持静脉导管的通畅，确保各种液体能及时，准确地输入。

3、针型电极剌入部位要对称，位于皮下，导线避免纵横交错，实验台上的液体要及时擦拭

干净。

由于动物的个体差异，有时T波会融合在ST段中而不呈现正向波，很难观察到典型

的高尖T波，需要更换动物。

若记录心电图时出现干扰信号，应及时找出原因并排出干扰。

4、严格控制推注KCI溶液的浓度、速度，必须缓慢、匀速推注，要随时观察各项指标的变化。

当各项指标急剧变化时，应减慢速度。

如发现动物突然挣扎或呼吸急促，要立即停止注

射。

防止滴入速度太快导致动物突然发生心室纤颤而死亡，动物对注入氯化钾溶液耐受性有

个体差异，有的动物需注入较多的氯化钾才出现异常心电图改变，遇到这种情况时，应适当

调整注入氯化钾的浓度和间隔时间。

5、电极用毕用75%酒精擦净，以保持良好的导电状态。

【讨论思考题】

1、血钾升高会出现哪些心电图变化？

发生机制是什么？

用相关理论加以说明。

2、分析你所选择的药物抢救高钾血症的机制。

它们是否都能降低血钾的浓度？

3、严重高钾血症使心脏停搏在何种状态？

为什么？