卫生管理制度卫生检验操作规程精编.docx

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卫生管理制度卫生检验操作规程精编

{卫生管理制度}卫生检验操作规程

实签收后方可离开。

4.7.3化验员负责按此操作规程进行取样、检测、记录及结果判定。

5.0工作流程:

6.0内容及要求:

6.1仪器及试剂

6.1.1仪器:

蒸汽灭菌锅、90cm培养皿、广口取样瓶(50~100mL)、小锥形瓶(25~50mL)、硅胶塞、锥形瓶(500ml)、小棉绳、牛皮纸、医用脱脂棉、酒精灯、镊子

6.1.2试剂:

平板计数琼脂、生理盐水

6.2生产用水的取样(配料用无菌水、洗瓶用无菌水、冲洗瓶品的无菌水、糖浆)

6.2.1从检验室领取已经消毒灭菌的250mL广口取瓶或25~50mL的小锥形瓶,此瓶应无裂痕或任何污渍。

6.2.2打开需取样处的排水阀,让水样迅速排放约2~3分钟。

6.2.3关闭排水阀,用镊子夹到酒精棉球,点燃后灼烧取样口约30~40秒。

6.2.4打开取样口的排水阀,使水样自然地流出,其流速应比②的流速小。

6.2.5将绑结在瓶口的小棉绳拆开,然后将瓶盖轻微松开,待将取样瓶靠近取样口时才将瓶盖或硅胶塞拿离瓶口。

6.2.6迅速取接取水样后,立即将瓶盖或硅胶塞封严瓶口,用原来封瓶盖的牛皮纸及小棉绳将样品封好,并在牛皮纸上标明样品的标记,标记如下:

6.2.7在取样后30分钟内将所有取得的样品送到检验室,交给检验员进行登记、保存或接种培养。

6.2.8无菌操作吸1ml样品于灭菌的培养皿中,另入经煮沸后冷却至45℃±1℃的培养基15-20ml,转动培养皿,使培养基与样品混合均匀,待培养基完全凝固后,翻转培养皿,置电热培养箱内在36±1℃培养,48±2小时,计算菌落总数;

6.2.9大肠菌群检验:

按《大肠菌群检验作业指导书》。

6.3生产场所空气质量的检验方法:

6.3.1从检验室领取合格的琼脂培养皿备用(观察琼脂上是否有菌落的生长,有的则作废弃处理。

但观察时不能将培养皿的盖打开)

6.3.2用油性笔在培养皿的表面标示清楚取样日期、时间、地点、线别,其标示如下图:

6.3.3将已标示好的琼脂培养皿放在相应的检测地点,然后打开琼脂培养皿的盖子,让营养琼脂暴露在空气中,计时。

6.3.430分钟后将琼脂培养皿的盖子合上,然后倒转保存(用已消毒灭菌的纸将其包好)。

6.3.5在取样后30分钟内将所有取得的样品送到检验室,交给检验员进行登记培养。

6.3.6操作时注意手部的卫生及周围环境,手不能接触到培养基,且周围环境中无冷凝水滴入培养基上,以保证取样的准确性。

6.3.7在取样后30~60分钟内将所有取得的样品送到检验室,交给检验员进行登记、保存或接种培养。

6.3.8每班应对生产场所的空气质量进行取样检测。

6.4生产设备清洗效果的取样

6.4.1从检验室领取已经消毒灭菌的250mL广口取瓶或25~50mL的小锥形瓶,此瓶应无裂痕或任何污渍。

6.4.2用镊子夹到酒精棉球,点燃后灼烧取样口约30~40秒。

6.4.3将绑结在瓶口的小棉绳拆开,然后将瓶盖轻微松开,待将取样瓶靠近取样口时才将瓶盖或硅胶塞拿离瓶口。

6.4.4打开取样口的排水阀,使水样自然地流出,迅速用取样瓶接取水样,立即用瓶盖或硅胶塞封严瓶口,用原来封瓶盖的牛皮纸及小棉绳将样品封好,并在牛皮纸上标明样品的标记,标记如下:

6.4.5在取样后30~60分钟内将所有取得的样品送到检验室,交给检验员进行登记、保存或接种培养。

6.5操作工手部卫生监测取样

6.5.1从检验室中领取已灭菌的专用的取样瓶。

(此瓶内有10~15mL生理盐水及小棉球,并与取样瓶一同经蒸汽灭菌消毒处理。

6.5.2在操作台上点燃酒精灯,随机传唤一操作工配合,让其随意将一个手伸到酒精灯的附近。

6.5.3将绑结在瓶口的小棉绳拆开,然后将瓶口上的硅胶塞取下,隔着牛皮纸将其反放。

6.5.4将镊子在酒精灯上灼烧30~40秒,然后用镊子夹取瓶内的小棉球,在酒精灯附近用小棉球对操作工的手部来回擦拭取样。

(擦拭时从大拇指开始一直到小指,沿手指到手掌来回擦拭一次。

6.5.5在酒精灯附近迅速将取样后的小棉球放入取样瓶中,将硅胶塞用火灼烧后随即封严瓶口,用原来封瓶盖的牛皮纸及小棉绳将样品封好,并在牛皮纸上标明样品的标记,标记如下:

6.5.6在取样后30分钟内将所有取得的样品送到检验室,交给检验员进行登记、保存或接种培养。

注:

若标明操作工姓名时则不用再标示其编号;但也可以标明编号而不在上面标明操作工姓名,但必须将操作工的姓名及编号附带给检验室;各岗位操作工的手部卫生检测每周进行一次。

6.6雪粒的取样

6.6.1从检验室领取已经消毒灭菌的250mL广口取瓶,此瓶应无裂痕或任何污渍。

6.62将绑结在瓶口的小棉绳拆开,然后将瓶盖轻微松开。

6.6.3一手将浸泡于75%酒精中的小勺子拿出并用火灼烧,待火焰息灭后停留片刻,将小勺子插入雪粒中,再提起小勺子,从另一处装取一勺雪粒迅速倒进取样瓶中。

(一勺约35克雪粒)

6.6.4迅速盖上盖子后,用原来封瓶盖的牛皮纸及小棉绳将样品封好,并在牛皮纸上标明样品的标记,其标示如下:

6.6.5样品取样后必须在30分钟内将样品送到检验室。

6.7包装物的取样

6.7.1空瓶的取样

6.7.1.1在100ml的烧杯中加入约70mL浓度为75%的食用酒精。

6.7.1.2将相应的型号的盖子浸入酒精溶液中,经浸泡15分钟后用镊子将盖子取出,抛甩多余的酒精。

6.7.1.3取出一个空瓶用已消毒的盖子迅速封存,并在盖子上或瓶身上标示空瓶取样时的状态、取样日期、取样时间、线别,其标示如下图:

6.7.1.4取弹珠瓶时,应使用相应型号并经蒸汽灭菌的硅胶塞将瓶口封存。

6.7.1.5在取样后30~60分钟内将所有取得的样品送到检验室,交给检验员进行登记、保存或接种培养。

6.7.2盖子、胶圈、弹珠的取样

6.7.2.1从检验室领取已经消毒灭菌的250mL广口取瓶,此瓶应无裂痕或任何污渍。

6.7.2.2将绑结瓶口的小棉绳拆开,然后将瓶盖轻微松开。

6.7.2.3一手用浸于75%酒精中的镊子(弹珠取样夹)夹取应抽样的盖、胶圈、弹珠,另一手将瓶盖打开。

6.7.2.4将所取的样盖、胶圈、弹珠放进取样瓶中,如此重复取样盖3~5个。

取样时瓶盖不能完全打开,取样后迅速将瓶盖盖好。

6.7.2.5取样后再用原来封瓶盖的牛皮纸将样品封好,并在牛皮纸上标明样品的标记,其标示如下:

6.7.2.6在取样后30~60分钟内将所有取得的样品送到检验室,交给检验员进行登记、保存或接种培养。

6.8工作台的取样:

将经灭菌的内径为5cm×5cm的灭菌规格板放在被检物体表面,用一浸有灭菌生理盐水的棉签在其内涂抹10次,然后剪去手接触部分棉棒,将棉签放入含10mL灭菌生理盐水的锥形瓶内送检。

6.9卫生处理效果的验证:

6.9.1清洁/消毒之后应定期在相应的控制点进行擦拭取样(测试面积:

100cm2)

注:

下面所列的微生物学要求只适用于湿法清洁/卫生处理。

6.9.2生产过程卫生质量要求:

检测点

指标

检测频率

菌落总数(cfu/ml(g))

各生产设备出口水

≤100个/ml

每日至少一次

配料后配料糖浆

≤30个/ml

每日至少一次

配料间各种贮缸(清洗后)

≤50个/ml

每日至少一次

在线空罐(清洗后)

≤20个/罐

每日至少一次

空瓶(清洗后)

≤20个/瓶*

每日至少一次

弹珠、胶圈、盖子

≤10个/瓶*

每日至少一次

盖子

≤10个/ml

每日至少一次

无菌水

≤10个/ml

每日至少一次

灌注房

≤10个/平皿(φ9cm)/30分钟

每日至少一次、

灌注、配料人员手部、工作服卫生

≤5个/ml

每周至少一次

大肠菌群,未检出

自来水、工艺水

≤100个/ml

每周至少二次

大肠菌群,未检出

6.9.3食品接触面、生产用水微生物内控指标

产品类型

细菌总数

1

空瓶(清洗后)

≤20个/mL(用容量的5%的生理盐水无菌清洗后接种)

2

盖子

≤10个/mL(每个盖用10mL生理盐无菌水清洗后接种)

3

操作工手部、工作服

≤5个/mL(充分摇匀后接种)

4

生产用水和CIP清洗后水样

≤10个/mL(包括:

无菌水、洗瓶水、冲瓶口水、混和机清洗取样、管道清洗取样、过滤机、灌注机或灌注头清洗取样)

5

操作台

≤50个/mL(充分摇匀后接种)

6

空气质量

P1线(弹珠汽水):

菌落<10个/皿;

P2线(果汁热灌注):

菌落<15个/皿;

(培养皿Q90mm,

暴露30分钟)

P3线(低温灌注):

菌落<10个/皿;

SF线(PET灌汽水):

菌落<10个/皿;SF线(罐头):

菌落<50个/皿;

7

超净工作台100级

≤1个/皿

8

微检室10000级

≤3个/皿

6.9.4按照操作规程的要求,结果不合格时,可以选择使用下述纠正措施:

6.9.4.1检查取样位置;

6.9.4.2对受到影响的区域或生产线进行卫生处理/消毒;

6.9.4.3有必要的话,重新设计设备或重新规定卫生处理措施;

6.10余氯的测定方法一、----邻联甲苯胺比色法(OT法)

6.10.1应用范围:

本法适用于测定生活饮用水及其水源水的总余氯及游离余氯。

6.10.1.1水中含有悬浮性物质时干扰测定,可用离心法去除。

干扰物质的最高允许含量如下:

高铁,0.2mg/L;四价锰,0.01mg/L;亚硝酸盐:

0.2mg/L。

6.10.1.2本法最低检测浓度为0.01mg/L余氯。

6.10.2原理

在pH值小于1.8的酸性溶液中,余氯与邻联甲苯胺反应,生成黄色的醌式化合物,用目视法进行比色定量;还可用重铬酸钾-铬酸钾溶液配制的永久性余氯标准溶液进行目视比色。

6.10.3永久性余氯比色溶液的配制

6.10.3.1磷酸盐缓冲贮备溶液:

将无水磷酸氢二钠(Na2HPO4)和无水磷酸二氢钾(KH4PO4)置于105℃烘箱内2h,冷却后,分别称取22.86g和46.14g。

将此两种试剂共溶于纯水中,并稀释至1000ml。

至少静置4天,使其中胶状杂质凝聚沉淀,过滤。

6.10.3.2磷酸盐缓冲溶液(pH6.45):

吸取200.0ml磷酸盐缓冲贮备溶液(37.1.3.1),加纯水稀释至1000ml。

6.10.3.3重铬酸钾-铬酸钾溶液:

称取0.1550g干燥的重铬酸钾(K2Cr2O7)及0.4650g铬酸钾(K2CrO4),溶于磷酸盐缓冲溶液(37.1.3.2)中,并定容至1000ml。

此溶液所产生的颜色相当于1mg/L余氯与邻联甲苯胺所产生的颜色。

6.10.3.40.01~1.0mg/L永久性余氯标准比色管的配制方法:

按表21所列数量,吸取重铬酸钾-铬酸钾溶液(37.1.3.3),分别注入50ml刻度具塞比色管中,用磷酸盐缓冲溶液稀释至50ml刻度。

避免日光照射,可保存6个月。

6.10.3.5若水样余氯大于1mg/L,则需将重铬酸钾-铬酸钾溶液的量增加10倍,配成相当于10mg/L余氯的标准色,再适当稀释,即为所需的较浓余氯标准色列。

表:

永久性余氯标准比色溶液的配制

余氯mg/L

重铬酸钾-铬酸钾溶液ml

余氯mg/L

重铬酸钾-铬酸钾溶液ml

0.01

0.5

0.50

25.0

0.03

1.5

0.60

30.0

0.05

2.5

0.70

35.0

0.10

5.0

0.80

40.0

0.20

10.0

0.90

45.0

0.30

15.0

1.00

60.0

0.40

20.0

6.10.4试剂

6.10.4.1邻联甲苯胺溶液:

称取1.35g二盐酸邻联甲苯胺〔(C6H3CH3NH3)2·2HCl〕,溶于500ml纯水中,在不停搅拌下将此溶液加至150ml浓盐酸与350ml纯水的混合液中,盛于棕色瓶内,在室温下保存,可使用6个月。

当温度低于0℃时,邻联甲苯胺将析出,不易再溶解。

6.10.4.5步骤

6.10.4.5.1取配制永久性余氯标准比色管用的同型50ml比色管,先放入2.5ml邻联甲苯胺溶液(37.1.4.1),再加入澄清水样50.0ml,混合均匀。

水样的温度最好为15~20℃,如低于此温度,应先将水样管放入温水浴中,使温度提高到15~20℃。

6.10.4.5.2水样与邻联甲苯胺溶液接触后,如立即进行比色,所得结果为游离余氯;如放置10min使产生最高色度,再进行比色,则所得结果为水样的总余氯。

总余氯减去游离余氯等于化合余氯。

6.10.4.5.3如余氯浓度很高,会产生橘黄色。

若水样碱度过高而余氯浓度较低时,将产生淡绿色或淡蓝色,此时可多加1ml邻联甲苯胺溶液,即产生正常的淡黄色。

6.10.4.5.4如水样浑浊或色度较高,比色时应减除水样所造成的空白。

6.11余氯的测定方法方法二、----DPD余氯快速测定试剂盒

6.11.1操作

6.11.1.1在洁净的比色管内加入待测水样至刻度线。

6.11.1.2隔着铝箔包装将一粒DPD药片用硬物敲碎,再撕开将药粉倒入比色管中,摇动至完全溶解。

6.11.1.3将比色管提离至离比色卡约2厘米处,打开胶盖与标准色阶自上而下目视比色。

与管中溶液色调相同的色阶即是水中余氯的含量(mg/L)。

6.11.1.4注意事项:

6.11.1.4.1加入药片后应在5min内完成比色

6.11.1.4.2若水样温度低于15℃,应用手握管预热至15℃以上,再用上述方法进行。

6.11.1.4.4若铝箔包装破损或药片变黄黑色则不能使用。

7.0相关文件:

8.0质量记录表单

《PET监控辅助抽样及检测记录表》YX-BG-128

《工艺水检测记录表》YX-BG-144

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