检验科标本采集手册新版.docx

检验科标本采集手册新版.docx

《检验科标本采集手册新版.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《检验科标本采集手册新版.docx（67页珍藏版）》请在冰豆网上搜索。

检验科标本采集手册新版

标本采集手册

第一章概述

实践证明，为保证临床检验质量，必须做到全过程质量控制,即对实验室检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。

这里包括：

实验前（分析前）、实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制,其中实验前质量控制是全面质量控制的前提。

国内外均有报道,检验结果误差中70%左右来自实验前（分析前）,而且实验前（分析前）误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。

因此,必须注意做好实验前质量管理。

一实验前质量控制主要包括：

〔一〕患者的准备；

〔二〕标本的采集；

〔三〕标本的储存；

〔四〕标本的运送；

〔五〕标本送出及签收；

〔六〕标本的处理；

〔七〕已知的和需考虑的生物因素和干扰因素等。

〔一〕患者的准备

根据所采标本的类型和所分析的物质而定。

标本采集前患者的状态对检测结果有一定的影响，不同检测项目对标本采集前患者的状态有不同的要求。

许多非疾病因素，如是否空腹、精神状况、体力活动、使用药物等都可能影响检验结果。

因此，在标本采集前，要根据需要对患者做好相应的准备。

一般要求患者处于安静状态；晨起时的精神、体力、情绪等因素的影响较小，是大部分标本采集的最正确时间；如可能，患者最好停服干扰检测的药物；根据项目和标本类别选择相应的容器。

许多检测对饮食、饮水和药物有特殊要求，如：

静脉采血前至少要空腹8小时；血脂测定须禁食12-14h后采血；情绪紧张会使血糖升高；吗啡、可卡因可使淀粉酶（AMY）升高；微生物培养最好在使用抗生素之前；采血样之前按摩前列腺可引起酸性磷酸酶的升高；醛固酮检测要在起床活动前取卧位血，起床后活动2小时取立位血；尿液检查按不同项目分别留取晨尿、随机尿、计时尿；大便潜血检查前要素食，禁食含动物血的食物等。

具体要求后述。

〔二〕标本的采集

1.正确的采集标本是保证检验质量的基础。

要注意以下问题：

〔１〕防止干扰物污染，特别是定量分析标本；

〔２〕标本采集部位和方法要正确；

〔３〕标本标识一定要清晰无误；

〔４〕无人为的溶血和混浊因素：

如收集标本用力震荡或用玻璃棒及木棍搅拌会导致溶血；餐后采血会出现脂血而致血清、血浆混浊。

〔５〕合理使用抗凝剂及防腐剂；

〔６〕收集区温度最好不超过20℃；

〔７〕微生物检验标本采集严格无菌概念；

〔８〕标本采集后要尽快送至实验室。

2.标本采集时间：

〔１〕空腹标本：

一般指空腹8h后采集的标本。

清晨空腹血液标本常用于临床生化定量测定，受饮食、体力活动、生理活动等的影响较小，易于发现和观察病理情况，而且重复性较好。

〔２〕随时或急诊标本：

指无时间限制或无法规定时间而必须采集的标本，被检者一般无法进行准备。

随时或急诊标本主要用于体内代谢比较稳定以及受体内因素干扰少的物质的检查，或者急诊、抢救病人必须做的检查。

〔３〕指定时间标本：

即指定采集时间的标本，根据不同的检测要求有不同的指定时间，如24h尿蛋白定量、葡萄糖耐量试验、内分泌腺的兴奋或抑制试验、肾脏清除率试验等。

3.采集方法：

具体方法见第二部分内容。

〔三〕标本的储存

标本采集后应尽快送至实验室，假设不能及时送检，已采集的标本要按检验规定的贮存条件，如室温、冷藏、冰浴、温浴或防腐贮存，将标本直立置于稳定、干燥、避光、密闭的环境中，防止振摇，以免标本渗漏或溶血影响检测结果。

血液标本采集后应及时别离血清或血浆，否则可发生红细胞与血清之间成分的相互转移，或红细胞中的某些酶分解待测物等，从而影响检验结果。

中心已检标本的保存条件和保存时间明细表请见附录1。

〔四〕标本的运送

必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结果一致。

１标本运送要注意防止标本外溢、蒸发和污染，用有盖容器采集、运送标本；

２严格控制温度,如遗传系列检测标本需要置于18~25℃环境运输,不可冷藏和冰冻。

３运输过程中对于所有感染性物质〔包括血液〕的溢出物，可采用以下清除程序：

〔１〕戴好手套。

〔２〕用布或纸巾覆盖并吸收溢出物。

〔３〕向布或纸巾上倾倒消毒剂，包括其周围区〔通常可用含氯消毒剂〕。

〔４〕使用消毒剂时，从溢出区域的外围开始，朝向中心进行处理。

〔５〕经约30分钟后，清除这些物质。

如果现场有碎玻璃或其他锐器，则用畚箕或硬质纸板收集并将其存放于防刺穿容器内以待处理。

〔６〕对溢出区进行清洁和消毒〔如有必要，重复第2～5步〕。

〔７〕将受污染的材料置于防漏、防刺穿的废弃物处理容器内。

〔８〕经成功的消毒后，向主管机构通报溢出事件，并说明已经完成现场清除污染工作。

〔五〕标本送出及签收

临床工作人员从病人采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室人员接收临床标本，均应按标准化要求进行，并且一定要做到认真核对，包括标本来源、标本属性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等，标本送出人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档。

〔六〕标本的处理

１实验室接收标本后应及时正确地予以处理，否则会影响检测结果的准确性。

２如取血后未尽快转送或别离血清、血浆，血清与血细胞长时间接触可发生以下变化：

〔１〕由于血细胞的酵解作用，血糖以每小时5％～15％的速率降低，即使在真空采血管中在较低温度下每小时也会降低％，糖酵解产物乳酸和丙酮酸升高。

〔２〕由于红细胞膜通透性增加和溶血加重，红细胞内化学成分发生转移和释放，酶活性受影响，血清无机磷、钾、铁、乳酸脱氢酶、天门冬氨酸转移酶、肌酸激酶等升高。

〔３〕由于酯酶作用，胆固醇酯因分解而减少，游离脂肪酸增加。

〔４〕酸性磷酸酶测定血标本室温放置1～2h测定结果降低50%。

〔５〕电解质测定血标本未及时别离血清和血浆，可导致血钾测定结果偏高。

３实验室接收标本后的处理应注意以下事项：

〔１〕时间：

实验室接受标本后应尽快给予分类和离心。

①促凝标本采血后5～15min尽早处理；②抗凝标本可采血后立即离心；③非抗凝（无促凝）标本采血30～60min后离心；④抗凝全血标本（全血细胞分析、ESR、TnT等）不需要离心。

〔２〕温度：

一般标本为室温（最好是22~25℃）放置；冷藏标本（对温度依赖性分析物）应保持2～8℃直到温度控制离心。

〔３〕采血管放置：

应管口（盖管塞）向上，保持垂直立位放置。

〔４〕采血管必须封口：

管塞移去后会使血PH改变，影响结果，如可使PH、Ca2+增高，使ACP减低；封口可以减少污染、蒸发、喷溅和溢出等。

〔七〕已知的和需考虑的生物因素和干扰因素

分析前的可变因素：

１生物因素：

可引起所检测物质在体内的变化，此种变化与检测方法无关，分为可变的因素和固定的生物因素：

〔１〕可变的生物因素：

包括营养、禁食、饮酒、体重、肌肉重量、体力活动、姿势、气候、身高、作息规律、治疗药物；

〔２〕固定的生物因素：

包括性别、年龄、种族和遗传因素。

２干扰因素：

在收集和分析标本过程中，干扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符。

将内在干扰因素即机体内自身的因素和外在的干扰因素区别开来。

内在干扰因素主要包括：

〔１〕溶血、脂血、胆红素血；

〔２〕内源性物质如抗凝药物、治疗药物及其代谢产物、输注液等；

〔３〕外源性物质与标本混合在一起，如抗凝剂、残留的洗液、细菌、霉菌。

二标本采集的基本原则

１申请单填写要点

每个检验项目或组合检验项目送一份标本，每一份标本附一张申请单。

按照检验项目申请单的要求，采集特定的标本，并将标本送到指定的实验室。

因此，检验申请单是实验检查的第一步。

〔１〕病人身份识别信息：

申请者必需清楚填写病人的、性别、年龄、或其它有效识别身份的编号；

〔２〕病人的病历信息：

申请者必需清楚填写病人所在临床科室名称、病历号、床号、临床诊断、临床样本、样本的采集日期和时间（年、月、日、时、分）、申请者、申请检验日期；

〔３〕申请的检验项目：

申请者必需清楚填写检验项目名称，项目名称应标准、准确，特别是申请组套项目时，一定要与本中心《检验目录》的组套内容一致，否则需填写具体单项；

〔４〕追加检测项目时限：

在样本有效保存期间和检测结果不受影响的情况下，客户可申请追加检测项目，追加申请需填写检验申请单。

可和委托客服追加检测项目，但事后一周内需补填《标本接收单》；

〔５〕修改报告单病人全名：

因字迹不清要求修改的由客服直接修改，如果与原申请单上的名字出入很大的要求修改，需要提供医院证明！

〔６〕有艾迪康专用的申请单（如病理、遗传等检测），请使用专用申请单。

备注:

有关的临床和治疗信息，特别是用药信息是检验师评价结果的必要条件。

药物可能在体外影响分析方法或在体内引起病理变化，因此，要特别注意在申请单上提供此类信息。

２采集标本前，首先要核对申请单病人基本信是否属实；然后核对收集标本用容器、标识与申请单上信息是否相符合，查对合格后再采集或收集标本。

３收集足够的标本于适当的容器内封好口后及时送检。

采集静脉血时要正确使用真空采血管取血至刻度，在取下采血管的同时立即将该采血管轻轻颠倒混匀5～8次，使试管内预置的添加剂与血样充分混匀，但不可剧烈摇晃以免造成标本溶血。

４已采集的标本假设不能及时送检，要严格按检验规定的贮存条件暂存。

未按要求采集、储存、运送的标本将被视为不合格标本处理。

５在标本采集、送检的过程中遇到任何不明或失误之处，请及时与相应检验专业组联系，以防止或减少过失发生。

６禁止利用患者申请单送检其他人或动物标本。

７不详之处或新开展项目请预先联系!

三关于实验室标本拒收规定

实验室专业负责人同意并有项目检验人员签字，及时与临床沟通，有以下情况时可考虑标本拒收：

１标本属性不清、标记错误或无标记、标本标识与申请单标识不符；

２抗凝剂比例错误；

３标本收集管使用错误：

〔１〕ESR、血清D-二聚体应使用枸橼酸钠（黑帽）抗凝管；

〔２〕血醛固酮应使用肝素（绿帽）抗凝管；

〔３〕K+、Na+、Ca2+可用非抗凝血，绝对不能使用草酸钾、草酸钠抗凝管；

〔４〕血NH4+和含氮物质测定用草酸氨抗凝是错误的，应用血清管（红帽）；

〔５〕全血细胞分析、ABO血型测定必须用EDTA（紫帽）抗凝管。

４微生物室拒收标本：

〔１〕储存、运送不当（该冷藏而未冷藏的标本），被污染的微生物标本；

〔２〕痰、便标本已干；

〔３〕尿标本未用无菌瓶留取；

〔４〕厌氧培养标本未按要求取材及送检；

〔５〕其他无菌部位取材及送检时已被污染的标本。

５病理实验室拒收标本：

〔１〕送检标本上无条形码或条形码与病理检查申请单上的不符；

〔２〕仅有标本而无相应病理标本送检单、仅有送检单而无相应标本或标本瓶内无标本；

〔３〕送检标本上无病人名字，或送检单与标本病人名字不符合；

〔４〕标本容器内无固定液、固定不佳导致标本自溶、腐败、干涸；

〔５〕拒绝接收不完整手术标本（部分标本），以防止未有病变部位（如肿瘤部分缺失）引起误诊；

〔６〕送检单不标准者（如用处方、便条等填写），病理标本送检单重要项目（如病史、手术所见等）不填写、填写不全或字迹潦草难以识别者；

〔７〕标本种类或数量与送检单中所提供的不一致者，或标本其它特点（如体积、形态等）与送检单中的明显不符者；

〔８〕本中心暂未开展的特殊病理项目。

６其它各种未按标准留取、送检的标本。

四异常情况处理流程

１标本量及性状异常时的处理流程

〔１〕标本量少，无法按要求完成所有项目的检测，本中心将优先检测24小时报告的项目，敬请谅解。

〔２〕重度溶血的标本对K、GLU、TP、CK、CK-MB、LDH、HBDH、AST、r-GT、AFU、微量元素等项目的结果影响较大，中心建议重新送检。

２复查的处理流程

假设客户对结果有疑问，请在标本的保存期内提出〔详见本册后附录2的已检标本保存期〕，中心评估后，予以复查。

３标本补送的处理流程

〔１〕由于标本量少、标本污染、性状不符合等原因造成无法完成检测，本中心将通知客户补送标本；

〔２〕客户补送标本时，接收员提供新的条形码以区别于原标本，并在单据上填写“补送”字样；

〔３〕实验室根据相应信息，安排检测。

４项目加做的处理流程

〔１〕如果客户要求加做项目，请联系客服部，客服部通知实验室评估标本量等；

〔２〕评估合格后，客服部将通知标本接收员填写标本接收单，请客户签字，随当天接收的标本一起运送至中心；

〔３〕报告时间以项目册上承诺的时间为准。

５其他

如客户来电要求或申请单注明需要当晚立即报告结果的，请务必提供准确的联络方式，本中心核对信息后进行口头报告，书面报告单按正常程序发送。

第二章标本采集方法

一血液检验标本采集方法

血液检验标本分为全血、血浆、血清等。

全血标本主要用于临床血液学检查,例如血细胞计数和分类、形态学检查等；血浆标本适合内分泌激素、血栓和止血检测血清标本多适合于临床化学和免疫学的检测。

按照血标本采集部位的不同，分为静脉血、动脉血和毛细血管血三种。

绝大多数检查采用静脉血,少数检查如血气分析、乳酸和丙酮酸测定等需要采集动脉血，毛细血管血主要用于各种微量法检查或大规模普查。

静脉血是最常用的实验室检查标本，真空采血法是最好的静脉血采集技术。

基本原理是双向针的一端插入真空试管内，另一端在持针器的帮助下刺入静脉，血液在负压作用下自动流入试管内。

由于在完全封闭状态下采血，防止了血液外溢引起的污染，并有利于标本的转运和保存。

标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和检测用途，可根据需要选择相应的盛血试管。

〔一〕静脉血采集方法、注意事项和采集样品所用材料的安全处置：

1止血带或压脉器：

采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长,以不超过40秒为宜，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果,如乳酸升高、pH值降低、K+、Ca2+、肌酸激酶升高等。

2采血时间与部位：

大多数化验检查要求清晨、空腹、采集静脉血应尽可能防止在输液同时取血,输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生严重干扰，特别是血糖和电解质。

3防止溶血、杂质污染：

采血器具必须无菌、干燥、洁净．防止特别用力抽吸和推注、防止化学污染和细菌污染引起的溶血。

因为红细胞的某些成分与血清（浆）不同，样本溶血可使红细胞某些成分释放,影响实验室检查结果。

4血样的采集：

血样要求在每一天的同一时间采集，理想的时间是早晨7：

00到8：

00，尤其是监测为目的时，更要保证标本采集时间的统一。

最后一次食物和液体摄入应在前一天下午6：

00到7：

00（急诊检验例外）。

血样采集应在不服药期间，如在早晨服药前。

血样采集时，患者应仰卧位，采血点应在同一静脉区，通常为手臂静脉。

5标本采集后须立即送检，放置过久影响检验结果。

当取血不顺利时,切忌在同一处反复穿刺，易导致标本溶血或有小凝块，影响检测结果。

6采集血培养标本时应先注射厌氧瓶，尽量减少接触空气时间。

7微量元素测定采集标本的注射器和容器不能含游离金属。

8采集样品所用材料的安全处置：

使用后的采血针、注射器针头等锐器物应当直接放入不能刺穿的利器盒内或毁型器内进行安全处置,禁止对使用后的一次性针头复帽,禁止用手直接接触使用过的针头、刀片等锐器物注射器针筒、棉签等其他医疗废物放入黄色医疗废物袋中，医疗废物和生活垃圾分类收集存放。

消毒毁形后的医疗废物必须交给指定的医疗废物处理厂，不得擅自废弃。

〔二〕临床化学/免疫检验标本

临床化学/免疫检验多用非抗凝血标本,最好使用真空负压采血管。

标本采集主要注意事项有：

1化学项目大多数需要空腹采静脉血，多个单项化学检测项目组合检验时一般可采l管血；

2采血量视检查项目多少不同而异，通常为～5.0ml；

3多个组合检测项目同时采血时应按以下顺序采血：

血培养→无添加剂管→凝血管→有添加剂管

有添加剂管的顺序为：

橼酸盐管→肝素管→EDTA管→草酸盐／氟化钠管

4不管是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，血液标本收集后，须尽可能早地将血清或血浆从全血中别离出来，防止由此而影响检验结果的准确性。

从血液标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。

〔１〕血清（非抗凝血）：

采血后标本于22～25℃（室温）15～30min后可自行（自发）完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块冷藏标本凝集较慢，加促凝剂者凝集加快。

〔２〕血浆（抗凝血）：

应采用抗凝管采血,采血后立即颠倒混合5～10次，采血后数分钟内可离心别离血浆。

〔３〕冷藏标本：

用于稳定血液中温度依赖性成分（抑制细胞代谢）的检测项目，标本于2～8℃冷藏（标本采集后立即置于冰箱中，冷藏必须充分）；标本需冷藏的测定项目有：

儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH／血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。

全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得>2h。

全血标本切忌冷冻。

〔４〕代谢抑制剂和防腐剂的应用：

用于抑制细胞代谢。

血标本中加入氟化钠后，血细胞未别离情况下血标本中Glu，22～25℃稳定24h．2～8℃稳定48h；氟化钠不适用于新生儿及儿童的Glu测定（因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制）；氟化钠一麝香草酚混合剂不适合酶学检测（因氟化钠一麝香草酚混合剂抑制酶活性）〕；甲醛草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。

〔三〕红细胞沉降率〔血沉，ESR〕检测标本

静脉采集枸橼酸钠（109mmol／L，即／L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血），黑帽管。

采血注意事项：

1单独采1管血，准备采血至2ml刻度线〔抗凝剂：

全血=1：

4〕；

2采血后立即上下颠倒混合5~10次；

3采血后应尽快送检〔必须2h内检测〕。

〔四〕血常规〔全血细胞分析〕检验标本

一般用～／ml抗凝（EDTA抗凝采血管-紫帽管）。

采血注意事项：

１采血后立即上下颠倒混匀，5～10次．不可用力震荡；

２应按抗凝管刻度采血至2ml，可不用空腹；

３采血后应尽快送检（需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过2小时WBC形态会发生改变）；

４血型与血常规可采1管血。

〔五〕75克葡萄糖耐量试验〔OGTT〕/胰岛素释放试验/C-肽释放试验

１病人准备：

试验前3日，每日进食碳水化合物量不低于250-300克，且维持正常活动，影响试验的药物〔如：

咖啡因、口服避孕药、水杨酸盐等〕应在3日前停用，试验前病人应10～16小时不进食。

２标本采集：

临床上常用方法是清晨抽空腹血后，口服75克葡萄糖，再于给糖后、1、2、3小时各采血2ml/1次〔共5次〕。

３标本保存：

采血后1小时内别离血清并及时冷藏送检或采用血糖专用抗凝管采血，于2～8℃保存。

〔六〕高血压系列检验标本

1高血压三项〔肾素、血管紧张素I、II〕

〔１〕病人准备：

β-阻断剂、血管扩张剂、利尿剂及甾体激素、甘草等影响体内肾素水平，一般要在停药后2周测定肾素活性（PRA），利血平等代谢慢的药物应在停药3周测定。

不宜停药的病人改服胍乙啶等影响PRA较小的降压药。

钠摄入量影响机体PRA水平，故病人测定PRA前3天应适当减少食盐摄入量，最好同时测定取血前24小时尿钠含量，以供分析PRA结果时参考；

〔２〕标本采集：

静脉取血4～5ml，拔除针头后缓慢注入到专用抗凝管中,盖好管塞后上下颠倒5次,混匀后2500转/分,离心5～10分钟,别离血浆,将血浆装入专用血浆管后低温送检。

如不能立即送检,需尽快冰冻保存〔-15℃〕。

溶血标本不能检测；

〔３〕标本类型、标本量：

专用抗凝管采血，别离血浆，取2ml送检；

〔４〕标本保存：

低温冰箱保存〔-15℃以下〕，可保存2个月；

〔５〕注意事项：

申请单上应注明抽血时的体位（卧位：

病人在早上6-8时起床前，取静脉血；立位：

病人起床后活动3小时，取静脉血。

）和饮食情况（普食饮食、低钠饮食）；标本未及时别离血浆、反复冻融、溶血、保存不当、使用过期抗凝管等均可使结果受到影响。

2醛固酮

〔１〕病人准备：

留样前应停服利尿剂至少3周，停服抗高血压药物1周；

〔２〕标本采集：

血浆醛固酮测定应采用肝素抗凝，采集后立即别离血浆，置-20℃保存待测；尿液标本则留取24小时尿量，用10～15mL浓盐酸防腐；

〔３〕申请单上注明：

抽血时的体位〔卧位、立位〕和饮食情况〔普食饮食、低钠饮食〕；尿液标本要准确记录24小时尿量。

〔七〕皮质醇标本采集及注意事项

正常人皮质醇的分泌存在昼夜节律，一般为早上8点或下午4点采血，送检时请务必在申请单上注明采血时间。

〔八〕T细胞亚群标本采集及注意事项

１标本类型：

必须用肝素钠抗凝血。

２标本量：

2ml。

３该项目在不同年龄段的参考值不尽相同，所以送检时请务必在申请单上注明病人年龄。

〔九〕微量元素检测标本采集要求

１采血时不能戴乳胶手套〔对锌有污染〕，可使用“PE”〔塑料〕手套（或不戴手套把手洗干净）。

２橡皮塞对锌有污染，故普通采血管不可使用，建议使用本中心提供的专用管（专用管有三种，贴红标签管为铅、硒专用管，即全血管，内有肝素；贴蓝标签管为血浆别离管，内有肝素；贴黄标签管为锌铜铁钙镁专用管，即血浆管）。

３使用专用管前，请检查红、蓝色标签管中是否有肝素〔液体或白色晶体粉末〕,开盖前请轻磕管底，将盖子上吸附的肝素弹下。

４采集方法：

采静脉血～3mL，将0.5mL血液注入全血管（红标签管），粘上条形码，用于血铅和血硒的检测；将剩余～血液注入血浆别离管（蓝标签管），立即轻轻颠倒混匀，以2000r/min离心5分钟，再吸取血浆〔约1mL〕至血浆管（黄标签管），粘上条形码，用于检测锌铜铁钙镁；最后将全血管（红标签管）和血浆管（黄标签管）装入自封袋送检。

５如不能及时送检，应放置2-8℃冰箱保存。

６溶血对结果影响较大，应尽量防止。

假设血浆为溶血标本，视为不合格标本。

〔十〕遗传学检测标本采集要求

１标本采集：

外周血标本可使用中心配送的肝素抗凝管〔遗传专用〕和采血针进行采集，采集后立即将试管轻轻颠倒混匀，以免凝血；脐带血标本、骨髓标本可以在穿刺成功后，打开中心配送的肝素抗凝管盖，将脐带血或骨髓注入采集管中，立即将试管轻轻颠倒混匀，以免凝血，请注意无菌操作，不要污染管盖。

胸腹水标本可在采集后注入废弃生理盐水注射液瓶中，并用75U/ml的肝素抗凝。

请防止使用注射器采集标本后直接注入采集管的方式进行标本采集，以免引起溶血；请勿使用EDTA等抗凝管采集标本。

２标本量：

外周血、脐带血、骨髓各4ml；胸腹水100ml。

３标本送检：

合格标本须于采血后当天送至遗传实验室，故请于标本采集后及时通知艾迪康工作人员接收标本；标本有溶血、凝血现象，也视为不合格标本。

骨髓标本应尽快送至实验室。

４标本保存：

标本采集后置于18～25℃保存，不可冷冻，不可放置于高温环境中。

５申请单填写：

请完整填写申请单，尤其是标本采集时间、性别、病史、临床诊断等。

〔十一〕基因检测标本采集要求

１所有用于基因诊断的标本必须用无菌试管或容器留取,严禁使用肝素抗凝管，采集标本时注意无菌操作。

２为防止污染,送检基因诊断标本项目需单人单项目单管。

３采集方法：

〔１〕血液标本

抽取病人静脉血，置无菌试管中室温自然凝固或2000转/别离心，取别离出的血清置2～8℃保存，不超过24小时，等待艾迪康工作人员接收；血清标本不宜反复冻融；

〔２〕女性分泌物标本

①分泌物标本采样应在非月经期进行；采样前3天内不使用阴道内药物，不冲洗阴道；24小时内不应有性行为；

②采集时先用棉签将宫颈口或尿道口过多的分泌物轻轻擦去，更换棉拭子，将棉拭子伸入宫颈，通过上皮交界处，旋转3～5周，以保证取得较多的柱状上皮标本，对于疑心HPV感染的患者，尽量采集病变部位标本，可提高HPV的检出率。

将取样后的棉拭子放