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WesternBlot操作

Content

1.Objective

2.Scope

3.Materials

ØReagents

ØInstrument

ØConsumable

4.Procedure

5.Changinghistory

 

1.Objective

-鉴定蛋白表达情况-

2.Scope

--本SOP适用于Western-Blot试验操作

3.Procedure

 

仪器:

高压锅、玻璃匀浆器、高速离心机、分光光度仪、—20℃低温冰箱、垂直板电泳转移装置、恒温水浴摇床、多用脱色摇床。

试剂:

单去污剂裂解液、0.01mol/LPBS(pH7.3)、12%分离胶、5%浓缩校、2XSDS上样缓冲液、电泳缓冲液、转移缓冲液、封闭液、TBST、TBS、洗脱抗体缓冲液、显影液、定影液、一抗(由委托人提供)、HRP-羊抗鼠二抗、HRP-羊抗兔二抗、ECL化学发光试剂、显影液、定影液。

杂品与耗材:

各种规格的吸头、离心管和加样器;各种规格的烧杯、量筒和平皿等玻璃器材;PVDF膜,乳胶手套,保鲜膜,搪瓷盘(>20×20cm),X-光片夹,X-光片,玻棒长短各一根,计时器,吸水纸,

试剂配制:

1.0mol/LTris·HCl

Tris(MW121.14)30.29g

蒸馏水200ml

溶解后,用浓盐酸调pH至所需点(见下所示),最后用蒸馏水定容至250ml,高温灭菌后室温下保存。

PHHCl

7.4约17ml

7.5约16m

7.6约15ml

8.0约10ml

10%SDS

SDS10g

蒸馏水至100ml

50℃水浴下溶解,室温保存。

如在长期保存中出现沉淀,水浴溶化后,仍可使用。

10%过硫酸胺(APS)

过硫酸胺0.1g

超纯水1.0ml

溶解后,4℃保存,保存时间为1周。

1.5mol/LTris·HCl(pH8.8)

Tris(MW121.14)45.43g

超纯水200ml

溶解后,用浓盐酸调pH至8.8,最后用超纯水定容至250ml,高温灭菌后室温下保存。

0.5mol/LTris·HCl(pH6.8)

Tris(MW121.14)15.14g

超纯水200ml

溶解后,用浓盐酸调pH至6.8,最后用超纯水定容至250ml,高温灭菌后室温下保存。

30%Acr

丙稀酰胺(Acr)29g

甲叉双丙稀酰胺(Bic)1g

超纯水至100ml

溶解后,0.45μm滤膜过滤后4℃保存。

使用时恢复至室温且无沉淀。

0.01mol/LPBS(pH7.2-7.4)

Na2HPO42.9g

KH2PO40.2g

NaCl8g

KCl0.2g

蒸馏水至1000ml

12%分离胶和5%浓缩校

10mL12%分离4mL5%浓缩胶

超纯水3.3ml2.7ml

30%Acr4.0ml0.67ml

1.5mol/LTris·HCl(pH8.8)2.5ml-

1.0mol/LTris·HCl(pH6.8)-0.5ml

10%SDS100l40l

10%AP(过硫酸胺)100l40l

TEMED4l4l

加TEMED后,立即混匀即可灌胶。

还原型2XSDS上样缓冲液

1.0mol/LTris·HCl(pH6.8)0.5ml

SDS0.2g

溴酚蓝10mg

甘油1.0mL

DTT,MW154.5)0.39g

临用前取1.0mol/L贮存液DTT1.0mL加入4.0mL2XSDSloadingbuffer,混匀后,分装于1.5ml离心管中,4℃保存,一周内用完。

DTT

DTT5.0g

DDW32.4Ml

分成小份,-20度保存。

5*Tris-GlycineBuffer电泳液缓冲液

Tris(MW121.14)15.1g

甘氨酸(MW75.07)94g

SDS5.0g

蒸馏水至1000ml

溶解后室温保存,次溶液可重复使用3~5次。

10*转移缓冲液

甘氨酸(MW75.07)14.5g

Tris(MW121.14)29g

SDS0.5g

蒸馏水至500ml

溶解后室温保存,临用前取200mL甲醇加入800mL转膜缓冲液中共1000mL。

次溶液可重复使用3~5次。

TBS缓冲液

1mol/LTris·HCl(pH7.5)10ml

NaCl8.8g

蒸馏水至1000ml

TBST缓冲液(含Tween20的TBS缓冲液)

0.05%Tween200.25ml

TBS500ml

混匀后即可使用,最好现用现配。

1*TBST1L

Trisbase2.422g(MW121.4)

Nacl8.775g

Tween200.5ml

封闭液(含5%脱脂奶粉的TBST缓冲液)

脱脂奶粉(国产,安怡牌)5g

TBST100mL

溶解后4℃保存。

使用时,恢复室温,用量以盖过膜面即可,一次性使用。

显影液

一小袋溶于250mLDDW中,棕色瓶保存。

定影液

一盒溶于1000mLDDW,室温棕色瓶保存。

抗体

用封闭液稀释至一定浓度使用,每张膜需0.5ml。

ECL化学发光试剂

购自碧云天,分A和B两种试剂。

操作步骤:

(一)SDS-PAGE电泳

(1)清洗玻璃板:

一只手扣紧玻璃板,另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。

两面都擦洗过后用自来水冲,再用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干。

(2)灌胶与上样

1玻璃板对齐后放入夹中卡紧。

然后垂直卡在架子上准备灌胶。

(操作时要使两玻璃对齐,以免漏胶。

2按前面方法配12%分离胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。

灌胶时,可用10ml枪吸取5ml胶沿玻璃放出,待胶面升到绿带中间线高度时即可。

然后胶上加一层水,液封后的胶凝的更快。

(灌胶时开始可快一些,胶面快到所需高度时要放慢速度。

操作时胶一定要沿玻璃板流下,这样胶中才不会有气泡。

加水液封时要很慢,否则胶会被冲变型。

3当水和胶之间有一条折射线时,说明胶已凝了。

再等3min使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。

4按前面方法配5%的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。

将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。

灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。

插梳子时要使梳子保持水平。

由于胶凝固时体积会收缩减小,从而使加样孔的上样体积减小,所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。

待到浓缩胶凝固后,两手分别捏住梳子的两边竖直向上轻轻将其拔出。

5用水冲洗一下浓缩胶,将其放入电泳槽中。

(小玻璃板面向内,大玻璃板面向外。

若只跑一块胶,那槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向外。

6测完蛋白含量后,计算含50g蛋白的溶液体积即为上样量。

取出上样样品至0.5ml离心管中,加入5×SDS上样缓冲液至终浓度为1×。

(上样总体积一般不超过15l,加样孔的最大限度可加20l样品。

)上样前要将样品于沸水中煮5min使蛋白变性。

7加足够的电泳液后开始准备上样。

(电泳液至少要漫过内测的小玻璃板。

)用微量进样器贴壁吸取样品,将样品吸出不要吸进气泡。

将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样品。

(加样太快可使样品冲出加样孔,若有气泡也可能使样品溢出。

加入下一个样品时,进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤3次,以免交叉污染。

(3)电泳

电泳时间一般4~5h,电压为40V较好,也可用60V。

电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳,进行转膜。

(二)转膜

(1)转一张膜需准备2张7.0~8.3cm的滤纸和1张7.3~8.6cm的硝酸纤维素膜。

切滤纸和膜时一定要戴手套,因为手上的蛋白会污染膜。

将切好的硝酸纤维素膜置于转膜缓冲液中浸15min才可使用。

(用镊子捏住膜的一边轻轻置于有超纯水的平皿里,要使膜浮于水上,只有下层才与水接触。

这样由于毛细管作用可使整个膜浸湿。

若膜沉入水里,膜与水之间形成一层空气膜,这样会阻止膜吸水。

(2)在加有转移液的搪瓷盘里放入转膜用的夹子、两块海绵垫、一支玻棒、滤纸和浸过的膜。

(3)将夹子打开使黑的一面保持水平。

在上面垫一张海绵垫,用玻棒来回擀几遍以擀走里面的气泡。

(一手擀另一手要压住垫子使其不能随便移动。

)在垫子上垫一层滤纸,一手固定滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。

(4)要先将玻璃板撬掉才可剥胶,撬的时候动作要轻,要在两个边上轻轻的反复撬。

撬一会儿玻璃板便开始松动,直到撬去玻板。

(撬时一定要小心,玻板很易裂。

)除去小玻璃板后,将浓缩胶轻轻刮去(浓缩胶影响操作),要避免把分离胶刮破。

小心剥下分离胶盖于滤纸上,用手调整使其与滤纸对齐,轻轻用玻棒擀去气泡。

将膜盖于胶上,要盖满整个胶(膜盖下后不可再移动)并除气泡。

在膜上盖3张滤纸并除去气泡。

最后盖上另一个海绵垫,擀几下就可合起夹子。

整个操作在转移液中进行,要不断的擀去气泡。

膜两边的滤纸不能相互接触,接触后会发生短路。

(转移液含甲醇,操作时要戴手套,实验室要开门以使空气流通。

(5)将夹子放入转移槽槽中,要使夹的黑面对槽的黑面,夹的白面对槽的红面。

电转移时会产热,在槽的一边放一块冰来降温。

一般用60V转移2h或40V转移3h。

(6)转完后将膜取出,可以看到预染Marker已经转印到膜上了,这个过程要保证膜的湿润,不能干燥,否则会产生较强的非特异性。

膜一:

A1B1C1D1A2B2C2D2A3B3C3D3

2

1

5

3

 

膜二:

 

 

1Occluding65kD

2ZO-1220kD

3Claudin-122kD

4Claudin-422kD

5JAM-A36-41kD

6PKC80kD

7UGT64kD

内参βactin42kD

分别将目的蛋白周围的膜切开,以DDW冲洗。

分别加入相应一抗。

(三)免疫反应

(1)将膜用TBS从下向上浸湿后,移至含有封闭液的平皿中,室温下脱色摇床上摇动封闭1h。

(2)将一抗用TBST稀释至适当浓度(在1.5ml离心管中);撕下适当大小的一块儿保鲜膜铺于实验台面上,四角用水浸湿以使保鲜膜保持平整;将抗体溶液加到保鲜膜上;从封闭液中取出膜,用滤纸吸去残留液后,将膜蛋白面朝下放于抗体液面上,掀动膜四角以赶出残留气泡;室温下孵育1~2h后,用TBST在室温下脱色摇床上洗两次,每次10min;再用TBS洗一次,10min。

(3)同上方法准备二抗稀释液并与膜接触,室温下孵育1~2h后,用TBST在室温下脱色摇床上洗两次,每次10min;再用TBS洗一次,10min,进行化学发光反应。

(四)化学发光,显影,定影

(1)将A和B两种试剂在保鲜膜上等体积混合;1min后,将膜蛋白面朝下与此混合液充分接触;1min后,将膜移至另一保鲜膜上,去尽残液,包好,放入X-光片夹中。

(2)在暗室中,将1×显影液和定影液分别到入塑料盘中;在红灯下取出X-光片,用切纸刀剪裁适当大小(比膜的长和宽均需大1cm);打开X-光片夹,把X-光片放在膜上,一旦放上,便不能移动,关上X-光片夹,开始计时;根据信号的强弱适当调整曝光时间,一般为1min或5min,也可选择不同时间多次压片,以达最佳效果;曝光完成后,打开X-光片夹,取出X-光片,迅速浸入显影液中显影,待出现明显条带后,即刻终止显影。

显影时间一般为1~2min(20~25℃),温度过低时(低于16℃)需适当延长显影时间;显影结束后,马上把X-光片浸入定影液中,定影

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