35二硝基水杨酸DNS法测定还原糖Word文档下载推荐.docx

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3,50mL×

3;

5)刻度吸管:

1mL×

2mL×

10mL×

6)沸水浴;

7)冰浴;

8)扭力天平;

9)UV—2802SH型紫外可见分光光度计尤尼柯(上海)仪器有限公司;

2.3实验试剂

1)1mg/mL葡萄糖标准液

准确称取80℃烘至恒重的分析纯葡萄糖100mg,置于小烧杯中,加少量蒸馏水溶解后,转移到100mL容量瓶中,用蒸馏水定容至100mL,混匀,4℃冰箱中保存备用。

2)3,5-二硝基水杨酸(DNS)试剂

将6.3gDNS和262mL2MNaOH溶液,加到500mL含有185g酒石酸钾钠的热水溶液中,再加5g结晶酚和5g亚硫酸钠,搅拌溶解,冷却后加蒸馏水定容至1000mL,贮于棕色瓶中备用。

3.实验步骤制作葡萄糖标准曲线

取7支25mL具塞刻度试管编号,按表1分别加入浓度为1mg/mL的葡萄糖标准液、蒸馏水和3,5-二硝基水杨酸(DNS)试剂,配成不同葡萄糖含量的反应液。

表1葡萄糖标准曲线制作

管号

1mg/mL葡萄糖标准液

(mL)

蒸馏水

DNS

葡萄糖含量

(mg)

光密度值

(OD540nm)

2

1.5

1

0.2

1.8

 

0.4

1.6

3

0.6

1.4

4

0.8

1.2

5

1.0

6

将各管摇匀,在沸水浴中准确加热5min,取出,冰浴冷却至室温,用蒸馏水定容至25mL,加塞后颠倒混匀,在分光光度计上进行比色。

调波长540nm,用0号管调零点,测出1~6号管的光密度值。

以光密度值为纵坐标,葡萄糖含量(mg)为横坐标,做出标准曲线。

蒽酮比色法测糖

一 目的 掌握蒽酮比色法测糖的原理和方法

二 原理 蒽酮比色法是一个快速而简便的定糖方法。

蒽酮可以与游离的已糖或多糖中的已糖基、戊糖

基及已糖醛酸起反应,反应后溶液呈蓝绿色,在620nm处有最大吸收。

本法多用于测定糖原的含量,也可用于测定葡萄糖的含量。

 

三 实验器材及试剂

马铃薯干粉

可调试移液器或移液管

可见分光光度计(723型)

电子分析天平

水浴锅

电炉子

蒽酮试剂:

取2g蒽酮溶解到80%H2SO4中,以80%H2SO4定容到1000ml,当日配制使用。

标准葡萄糖溶液(0.1mg/ml):

100mg葡萄糖溶解到蒸馏水中,定容到1000ml备用。

四、操作

1.制作标准曲线

取7支干燥洁净的试管,按表1顺序加入试剂,进行测定。

以吸光度值为纵坐标,各标准溶液浓度(mg/ml

)为横坐标作图得标准曲线。

表1 

蒽酮比色法定糖——标准曲线的制作

沸水浴中准确煮沸10min,取出用流水冷却,室温放10min,于620nm处比色

葡萄糖浓度(mg/ml)

2.样品含量的测定   

样品液的制作:

精确称取马铃薯干粉0.1g置于锥形瓶中—→加入30ml沸水—→沸水浴30min(不时摇动)—→取出,

3000rpm离心10min(或过滤)—→反复洗涤残渣2次—→合并滤液—→冷却至室温—→定容到50ml的锥形

瓶中—→再从中取出1ml,再定容到10ml的容量瓶中

样品液的测定:

(1)取4支试管,按照表2加样(加蒽酮时需要冰水浴5min冷却)

表2 

蒽酮比色法定糖——样品的测定

(2)加样冷却完成后置沸水中煮沸10min,取出流水冷却放置10min,620nm处比色测量各管OD值。

(3)以1号试管作为调零管,2、3、4号管的OD值取平均后从标准曲线上查出样品液相应的含糖量。

3.结果计算:

V

————×

100%

m,

式中w:

糖的质量分数(%)

C:

从标准曲线中查出的糖质量分数(mg/ml)

V:

样品稀释后的体积(ml)

m:

样品的质量(ml)

  一 目的 掌握蒽酮比色法测糖的原理和方法

  二 原理 蒽酮比色法是一个快速而简便的定糖方法。

蒽酮可以与游离的已糖或多糖中的已糖基、戊糖基及已糖醛酸起反应,反应后溶液呈蓝绿色,在620nm处有最大吸收。

  本法多用于测定糖原的含量,也可用于测定葡萄糖的含量。

  三 实验器材及试剂

  马铃薯干粉

  可调试移液器或移液管

  可见分光光度计(723型)

  电子分析天平

  水浴锅

  电炉子

  蒽酮试剂:

  标准葡萄糖溶液(0.1mg/ml):

  四、操作

  1.制作标准曲线

  取7支干燥洁净的试管,按表1顺序加入试剂,进行测定。

  以吸光度值为纵坐标,各标准溶液浓度(mg/ml)为横坐标作图得标准曲线。

  表1蒽酮比色法定糖——标准曲线的制作

  沸水浴中准确煮沸10min,取出用流水冷却,室温放10min,于620nm处比色

  葡萄糖浓度(mg/ml)

  2.样品含量的测定 

  样品液的制作:

  精确称取马铃薯干粉0.1g置于锥形瓶中—→加入30ml沸水—→沸水浴30min(不时摇动)—→取出,

  3000rpm离心10min(或过滤)—→反复洗涤残渣2次—→合并滤液—→冷却至室温—→定容到50ml的锥形瓶中—→再从中取出1ml,再定容到10ml的容量瓶中

  样品液的测定:

  

(1)取4支试管,按照表2加样(加蒽酮时需要冰水浴5min冷却)

  表2蒽酮比色法定糖——样品的测定

  

(2)加样冷却完成后置沸水中煮沸10min,取出流水冷却放置10min,620nm处比色测量各管OD值。

  (3)以1号试管作为调零管,2、3、4号管的OD值取平均后从标准曲线上查出样品液相应的含糖量。

  3.结果计算:

  C×

  w=————×

  m,

  式中w:

  C:

  V:

  m:

样品的质量(ml)

  原理

  植物在个体发育的各个时期,代谢活动也发生相应的变化,碳水化合物的代谢也不例外,其含量也随之发生变化。

了解可溶性糖含量的变化,在生理上和实践上都有重要的意义。

这里介绍的是蒽酮比色法,糖在硫酸的作用下生成糖醛,糖醛再与蒽酮作用,形成一种绿色的络合物,颜色的深浅与糖含量有关。

方法简便,但没有志一性,对于绝大部分的碳水化合物都能与蒽酮反应,产生颜色。

  仪器药品

  721型分光光度计分析天平

  研钵恒温水浴锅

  烧杯容量瓶

  三角烧瓶大试管

  移液管漏斗

  乙醚草酸钠

  饱和醋酸铅

  葡萄糖标准溶液:

称取已在80℃烘箱中烘至恒重的葡萄糖100mg,配制成500ml溶液,即得每ml含糖为200μg的标准溶液。

称取1g经过纯化的蒽酮,溶解于1000ml稀硫酸中即得。

硫酸溶液由760ml浓硫酸(比重1.84)稀释成1000ml而成。

  操作步骤

  1.可溶性糖的提取

  称取重约5g的新鲜植物叶子,于研钵中乙醚少许,仔细研磨成均匀的浆状物,倒入烧杯中,用70℃热水洗涤研钵,洗液并入烧杯中,再加蒸镏水30─40ml。

将烧杯放在水浴锅中加热,保持温度70─80℃约半小时,冷却后1滴1滴地加入饱和中性醋酸铅,以除去蛋白质,直至加入醋酸铅时不再形成白色沉淀为止。

然后将此混合物连同残渣一并洗入100ml容量瓶中,加水至刻度,充分振荡。

以干燥漏斗将滤液过滤于一干燥的三角烧瓶中,瓶中事先放有少量(约0.2─0.4g)草酸钠粉末,以除去滤液中过量的醋酸铅,使生成草酸铅沉淀,再行过滤,所得的透明滤液即为可溶性糖提取液。

  2.显色及比色

  吸取上述糖提取液1ml,放入一干洁的试管中,加蒽酮试剂5ml混合之,于沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却,然后于分光光度计上进行测定,波长为625nm,测得吸光度。

从标准曲线上查得滤液中的糖含量(或经直线回归公式计算),然后再行计算样品中含糖百分数。

  3.绘制标准曲线

  取标准葡萄糖溶液将其释成一系列不同浓度的溶液,浓度分别为每ml含糖0、5、10、20、30、40、50、60、70、80、90、100μg。

按上述方法分别测得其吸光度,然后绘制A026-糖浓度曲线,或进行直线回归求得直线方程。

  4.计算样品中含糖%

  设V为植物样品稀释后的体积(ml)

  C为提取液的含糖量(μg/ml)

  W为植物组织鲜重(g)

  则得计算式如下:

%=C×

V/(W×

1000000)×

100%

[编辑本段]

蒽酮比色法测定多糖含量

  [a]多糖含有几百个或更多残基,但只有一个还原基团,因此它的还原能力极弱,对于他们的测定,应先将它们用酸水解成单糖组分。

  蒽酮比色法是一种快速而简便的定糖方法,糖类遇浓硫酸脱水生成糠醛及其衍生物,该衍生物与蒽酮发生反应,反应后溶液呈蓝绿色,于620nm处有最大吸收。

因此可用此方法测定多糖含量。

  [b]试剂

  2g/L蒽酮试剂:

溶解2g蒽酮于1L浓硫酸(98%的浓硫酸)中,当日配制使用。

  0.01g/L葡萄糖溶液(可加几滴甲苯作防腐剂)

  0.1g/L糖元溶液

  [c]实验器材

  试管及试管架吸量管(1ml,5ml)恒温水浴箱(100℃)制冰机紫外分光光度计滴管白瓷板

  制作标准曲线

  准确称取0.1g葡萄糖(分析纯),溶解并用蒸馏水定容至100ml后,分别取出1ml,2ml,3ml,4ml,5ml分别加入到50的容量瓶中,并用蒸馏水定容到50ml,配成浓度分别为20ug/ml,40ug/ml,60ug/ml,80ug/ml,100ug/ml,各取1ml于试管中,再加入3ml的蒽酮试剂,迅速浸入冰水中冷却,待几支试管均匀加完后,一起浸入100℃恒温水浴箱中,为防止水分蒸发,应在试管口上加盖一个玻璃球或者加一个塞子,自温度重新升至100℃起计时,准确保温10min后取出,用流动水冷却,然后,于室温中平衡片刻(约10min左右),在分光光度计上,波长620nm处,用0.5cm厚度的比色杯,以空白管做对照空白(此处的空白是指不加葡萄糖的蒽酮试剂,其他反应条件都一致),进行比色。

  既得标准曲线。

  如下表格

  

编号

体积ml

浓度ug/ml

20

40

60

80

100

  [d]样品测定

  如上述条件一致,但要记得用除去蛋白质的样品溶液进行测定,否则会影响测定结果。

  样品含糖量计算:

V2×

D

  样品含糖量(%)=----------------------×

  W×

V1×

10

  其中C----在标准曲线上查出的糖含量(ug),

  V2---提取液总体积(ml)

  V1---测定时取用体积(ml)

  D-----稀释倍数

  W-----样品重量(g)

  10-----样品重量单位g换算成ug的倍数

  注意事项:

  1.一定要注意温度要控制在100℃

  2.从100℃开始准确计时10min,然后迅速冷却,于室温中平衡10min.

  3.蒽酮要注意避光保存。

配置好的蒽酮试剂也应注意避光,当天配制好的当天使用。

  4.试管要保证干燥清洁,无残留水滴。

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