细菌对四环素类抗生素的耐药机制研究Word下载.docx
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最新研制出的甘氨酰环素已完成Ⅰ期临床试验,目前正在进行Ⅱ期临床试验。
而一些早期的药物,如氯莫环素(clomocycline)、罗利环素、赖甲环素和金霉素在各国都已不再使用。
2.四环素类抗生素的作用机理
四环素类药物具有抗菌活性的最重要特征是每种药物的分子中都包括一个线性熔合的四环素核。
结构最简单的具有抗菌活性的四环素分子是6-脱氧-6-去甲基四环素,此结构被认为是最小的药效基团。
四环素类抗生素通过阻止氨酰tRNA与细菌核糖体结合来抑制细菌蛋白质合成,四环素分子必须通过一个或多个膜系统(革兰氏阳性菌和阴性菌各自具有不同的膜系统)才能与它们的靶位结合,从而达到有效的杀菌作用。
因此,在探讨四环素作用方式时需考虑到跨膜吸收和核糖体结合这两种机制。
四环素穿越革兰氏阴性肠道菌外膜是以被动转运阳离子(可能是Mg2+)-四环素复合物的形式经OmpF、OmpC孔蛋白通道,并在道南(Donnan)电位作用下穿过外膜进入细胞在胞外质中积累。
在胞外质中四环素分子被分解释放,并通过扩散作用穿过内膜(细胞质膜)的脂质双层最终进入细胞内。
四环素类药物穿越革兰氏阳性菌细胞质膜的方式则是形成电中性亲脂分子,是能量依赖性的,并由细胞内外的H+浓度差所驱动。
在细胞质中H+和二价阳离子浓度都高于细胞外,所以细胞质内的四环素分子可能被螯合,形成Mg2+-四环素复合物与核糖体结合。
3.四环素类抗生素耐药的分子机制
1980年Mender等第1次研究肠杆菌科和假单胞菌质粒的四环素耐药决定子的基因机制,到现在已经明确了29个不同的tet基因和3个otr基因,其中18种tet基因和1种otr基因编码外输泵,7种tet基因和1种otr基因即otr(A)编码核糖体保护蛋白,1种tet基因即tet(X)编码一种修饰或钝化四环素的酶,但tet(X)基因的功能在天然宿主中并不能起作用。
3.1外输泵蛋白(Effluxprotein)
在革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌中都有外输泵基因,而且大部分外输泵基因都具有四环素抗性。
四环素外输泵蛋白属于主要异化超家族(MFS),是目前Tet蛋白中研究最清楚的。
所有tet外输泵基因都编码膜相关蛋白可将四环素泵出胞外,降低了细胞内药物浓度保护了胞内的核糖体,从而产生耐药性。
每个tet外输泵基因都编码约46ku膜结合外输泵蛋白,这些蛋白依据氨基酸的同源性可分为6个群:
第1群蛋白包括Tet(A)、Tet(B)、Tet(C)、Tet(D)、Tet(E)、Tet(G)、Tet(H)、Tet(Z),还可能有Tet(I)、Tet(J)和Tet(30)[3]。
该群蛋白具有12个跨膜α-螺旋,其四环素抗性蛋白具有41%~78%的氨基酸同源性,而它们的四环素阻抑蛋白具有37%~88%的氨基酸同源性。
该群蛋白的基因大部分只存在于革兰氏阴性菌中,只有tet(Z)存在于革兰氏阳性菌中。
许多外输泵蛋白存在于双分子脂膜中,以亲水氨基酸环凸出到周质和细胞质空间,外输泵蛋白逆浓度梯度将四环素-阳离子复合物泵出胞外。
革兰氏阴性菌外输泵基因分布广泛,通常与大质粒相连,且大多为结合性质粒。
这些外输泵基因大都来源于不同的不相容质粒群[5],这些质粒通常也携带其他抗性基因(如抗金属基因)和病原因子基因(如毒素基因)。
因此,介导任何一种抗性因子就是传递携带多重抗性的质粒,这一交叉选择的现象可能是细菌多重耐药现象日趋严重的重要原因之一。
第2群蛋白包括Tet(K)和Tet(L)。
该群蛋白具有14个跨膜α-螺旋,它们具有58%~59%的氨基酸同源性。
这些蛋白主要存在于革兰氏阳性菌中。
tet(K)和tet(L)基因主要存在于小的传递性质粒中,它们偶尔会整合入葡萄球菌染色体、枯草杆菌染色体或金黄色葡萄球菌的大质粒中。
葡萄球菌的大质粒携带tet(K)相对不常见,而小质粒携带tet(K)基因则较普遍。
小质粒代表了一族密切相关的质粒,其大小为4.4~4.7kb。
pT181质粒是这一族的代表,已测出全序。
pT181还可携带除tet(K)外的其他抗药基因。
少数质粒携带的tet(L)已被测序,相互之间具有98%~99%的同源性。
较为特殊的是枯草杆菌染色体上的tet(L),该基因与其他tet(L)基因序列仅有87%的同源性。
第3群蛋白包括Otr(B)和Tcr3,发现于链霉菌属,这些蛋白与第2群蛋白的拓扑结构相似,具14个跨膜α-螺旋。
第4群蛋白包括TetA(P),分离于梭菌属,具有12个跨膜α-螺旋。
第5群蛋白包括从耻垢分支杆菌分离到的Tet(V)。
第6群蛋白包括从纹带棒状杆菌分离到的未命名的蛋白,其被认为是利用ATP而不是质子泵作为能源的。
3.2核糖体保护蛋白(Ribosomalprotectionproteins)
已知9种核糖体保护蛋白,这些存在于细胞质中的蛋白具有保护核糖体免受四环素作用,使细菌具有抵抗多西环素和美满霉素的能力,且耐药谱比携带不含tet(B)外输泵基因的细菌广泛。
有资料说明核糖体保护蛋白与核糖体结合可引起核糖体构型的改变,使四环素不能与其结合,但并不改变或阻止蛋白的合成。
GTP水解可提供核糖体构型变化所需的能量。
核糖体保护蛋白与延伸因子EF-Tu和EF-G有同源性,它们与核糖体的结合是竞争性的。
核糖体保护蛋白和EF-G在核糖体上有重叠的结合位点,核糖体保护蛋白需从核糖体上游离下来使EF-G与核糖体结合[6,7]。
Tet(M)和Tet(O)蛋白是研究得最多的核糖体保护蛋白,它们具有核糖体依赖的GTP水解酶活性。
无论是Tet(M)还是Tet(O)蛋白,当有GTP而不是GDP存在时就会使四环素与核糖体的结合能力减弱[3,8]。
尽管在这一群中只有两个蛋白被广泛研究,但其他核糖体保护蛋白Tet(S)、Tet(T)、Tet(Q)、TetB(P)、Tet(W)和Otr(A)的氨基酸序列与Tet(M)和Tet(O)具有相似性,因此也可能具有GTP水解酶活性,以同样的方式与四环素和核糖体相互作用。
核糖体保护蛋白可根据氨基酸的同源性分类。
第一类包括Tet(M)、Tet(O)、Tet(S)和新发现的Tet(W)蛋白,第二类包括Otr(A)和TetB(P)蛋白,第三类包括Tet(Q)和Tet(T)蛋白。
3.3灭活或钝化四环素的酶(Enzymaticinactivationoftetracycline)
tet(X)基因是唯一通过产生灭活四环素的酶而耐药的。
已报道两株厌氧拟杆菌转座子上携带有tet(X)基因。
tet(X)产生44ku胞浆蛋白,它在氧和NADPH存在时可化学修饰四环素,序列分析表明这个酶与其他NADPH需要的氧化还原酶有同源性。
3.4 其他(未知)耐药机制(Other/unknowmechanismsofresistance) Tet(U)蛋白有低水平的耐四环素能力。
其基因编码的11.8ku蛋白包括105个氨基酸,比外输泵蛋白(45ku)和核糖体保护蛋白(72ku)小。
链霉菌otr(C)基因序列尚未见报道,推测otr(C)基因并不编码外输泵和核糖体保护蛋白,但otr(C)是否与tet(X)类似编码钝化酶,或与tet(U)类似具有一种新的耐药机制尚不明确。
4 四环素类抗生素耐药基因的发生率
4.1 病原菌或条件致病菌(Pathogenicandopportunisticorganisms) 病原菌或条件致病菌中的大部分tet基因与转移质粒、转座子、结合转座子相连,这些转移单位可使tet基因在种间传递或通过结合在更大范围的属间传递[10]。
最初在肠杆菌科和假单胞菌中发现的革兰氏阴性菌tet基因现也在奈瑟菌属、嗜血杆菌属、密螺旋体和弧菌属中相继发现。
tet(B)基因在革兰氏阴性菌tet基因中具有最为广泛的宿主,现已在20种革兰氏阴性菌属中被检测到[11]。
然而,tet(M)已在26个革兰氏阴性菌和革兰氏阳性菌中检测到。
一些基因如tet(E)的宿主范围可能较为有限,因为它们定位于不可转移的质粒上,由此减少了向其他种属转移的机会。
一些种属中的tet基因仅表现较低的耐药水平,不能保护存在于临床和环境四环素浓度下的细菌。
革兰氏阳性菌也可获得四环素抗性质粒,特别是在多重耐药中更为普遍。
1994年的研究资料显示,大约90%耐甲氧西林金黄色葡萄球菌、70%无乳链球菌、70%多药耐药粪肠球菌都具四环素抗性。
“革兰氏阴性菌tet基因”是指那些只在革兰氏阴性菌中被发现的基因。
这些基因的G+C含量(>
40%)高于来源于革兰氏阳性菌的基因。
所有革兰氏阴性菌基因都编码外输泵蛋白,但如果转入革兰氏阳性菌宿主中则不能高效表达。
很多革兰氏阴性菌tet基因受阻抑子调控,与结构基因转录方向相反。
“革兰氏阳性菌tet基因”通常是指发现于革兰氏阳性菌中,具有相对较低的G+C含量(≤35%)的基因,但目前在越来越多的革兰氏阴性菌中发现具有该基因,尤以tet(M)基因最为突出,现已从临床分离的8种革兰氏阴性菌、18种革兰氏阳性菌中被检出。
此外,实验室中可将tet(M)基因转入更多的菌属中[12]。
严格胞内寄生的病原体如衣原体和立克次氏体还未获得四环素抗性,因为这些病原体存在于细胞内,只有细胞同时被两种病原体感染才可能发生基因交换。
但突变导致的耐药性上升则更可能发生在这些胞内寄生的病原体中[13]。
4.2 共生菌(Commensalmicroorganisms) 共生菌与机会致病菌及病原菌具有相同的tet基因、质粒、转座子和结合性转座子,如肺炎链球菌和化脓链球菌及许多口腔草绿色链球菌都可获得的tet(M)、tet(O)、tet(L)和tet(K)基因。
此外,在长期药物压力选择下,革兰氏阳性菌具有从携带一个tet基因转为携带多重tet基因的趋势。
在个别革兰氏阳性菌中可找到不同种类的多重tet基因盒,如分枝杆菌和链球菌,但在革兰氏阴性菌中特别是肠道菌中则不常见[14]。
总之,已经发现很多致病性的革兰氏阴性菌属携带的四环素抗性基因与同属的共生菌相同。
革兰氏阴性菌如嗜血杆菌、奈瑟氏菌和拟杆菌,革兰氏阳性菌属如链球菌都携带与条件致病菌相同的tet基因。
因此,共生菌具有作为病原菌tet基因或其他抗性基因储藏库的作用,并有助于说明细菌菌群保持和传播抗生素抗性基因的机理。
5 tet基因的分布和转移
tet基因广泛存在于从人、动物和环境中分离的细菌中,大多数tet基因都与结合或移动元素相连,这可以部分解释为什么它们在细菌中能广泛分布。
革兰氏阴性菌中tet外输泵基因发现于转座子,并可插入到不同的不相容质粒中。
革兰氏阳性菌外输泵基因与小质粒相连,核糖体保护蛋白基因tet(S)和tet(O)可以存在于结合质粒或染色体上,在染色体上它们不能自己移动。
tet(M)和tet(Q)基因主要与结合染色体元素相连,并编码它们自己的转移。
这些结合转座子转移可将质粒移动到其他菌属中[5]。
5.1 革兰氏阴性细菌 目前39个革兰氏阴性菌属、23个革兰氏阳性菌属及相关菌属的耐四环素机制已经被阐明。
其他尚未明确的tet基因可能存在,因为已检测出不携带现有tet基因的四环素耐药株。
新的抗四环素基因不断被发现,新的菌属也被检出携带tet基因。
tet(A)、tet(B)、tet(C)、tet(D)、tet(E)、tet(G)、tet(H)、tet(I)、tet(J)、tet(Y)、tet(30)和tet(31)基因在革兰氏阴性菌属中广泛存在,这些菌属中大部分属肠道菌群。
tet(B)基因在革兰氏阴性菌中最为广泛,已在不同细菌中检出,如放线共生放线杆菌、流感嗜血杆菌、莫拉杆菌和齿垢密螺旋体[16]。
革兰氏阴性菌中发现的tet基因的数量是不同的,既有携带一种tet基因,如tet(B)、tet(M)或tet(Q),也有发现于埃希氏菌属中多达七条tet外输泵基因。
然而,已经发现大肠杆菌质粒携带不超过一种类型的tet基因。
相反,链霉菌属和革兰氏阳性菌属个别分离株常携带多个基因,编码相同的抗生素抗性,包括四环素抗性。
tet(G)、tet(H)和tet(I)基因在革兰氏阴性菌中很少检出。
科学家们仍在研究某些菌属只携带一种tet基因,而另一些菌属则可携带一系列不同的tet基因的原因。
对革兰氏阴性菌质粒不相容群的研究发现,它们决定其细菌宿主的范围,质粒宿主的变化范围非常严格,如嗜血杆菌携带的结合性大R-质粒,在本菌属外其他宿主中就不能存在。
这些质粒宿主范围可能影响到与它们相连的部分tet基因的传播[5]。
目前,8种革兰氏阴性菌属携带tet(M)基因,7种携带tet(Q),5种携带tet(W),2种携带tet(O),2种携带tet(K),各有1种携带tet(H)、tet(I)、tet(J)、tet(Y)、tet(30)、tet(31)。
根据它们较低G+C含量,tet(K)、tet(L)、tet(M)、tet(O)、tet(P)、tet(S)、tet(T)、tet(Q)、tet(W)[17],可能还有tet(Z)被认为来源于革兰氏阳性菌中。
这证明了来源于革兰氏阳性菌的抗生素抗性基因,特别是核糖体保护蛋白基因可以通过细菌污染在种、属间进行交换,并可成功的整合和表达于一系列不同背景的宿主中的假说。
5.2 革兰氏阳性细菌 目前,已知17种革兰氏阳性菌及霉形体属、脲原体属、放线菌属、诺卡氏菌属、分枝杆菌和链霉菌属等都携带已知的耐四环素基因。
但并不是所有耐四环素革兰氏阳性菌都有确切的tet基因[14]。
共计有18个属携带tet(M)、11个属携带tet(K)、10个属携带tet(L)、7个属携带tet(Q)、5个属携带tet(O)、2个属携带tet(S)、1个属携带tet(P)基因。
近年来发现双歧杆菌携带tet(W)基因,棒状杆菌携带tet(M)以及最新发现的tet(Z)基因,肠球菌中新发现有tet(U)基因,链球菌中有tet(T),耻垢分枝杆菌中发现了tet(V)基因。
tet(K)、tet(L)基因不仅广泛分布于从人、动物、水源分离的革兰氏阳性菌中,而且在分枝杆菌、诺卡氏菌属和分离自病人的链霉菌属中也广泛存在。
tet(M)基因通常与Tn916-Tn1545族结合转座子相连[18]。
这群转座子形成不能复制的环状中间体,这对细胞内的转移和细胞间的结合转移是必要的。
Clewell等研究表明Tn916族转座子可在自然界中找到或在实验室中转至24个属的50种不同菌中。
tet(M)基因可以被转入更多包括革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌的其他菌属中。