整理Survivin基因的研究现状Word文件下载.docx
《整理Survivin基因的研究现状Word文件下载.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《整理Survivin基因的研究现状Word文件下载.docx(5页珍藏版)》请在冰豆网上搜索。
这是由于Survivin基因启动子系列中存在3个细胞周期依赖因子(cellcycledepedentelements,CDE)和一个细胞周期同源性区域(cellcycle-homologyregions,CHR)。
CDE和CHR是G1期抑制元件,调节G2/M期基因表达的半衰期,这使Survivin特异地表达于G2/M期。
1.3组织分布Survivin的组织分布有明显的细胞选择。
它主要表达于胚胎、发育的胎儿组织和大多数肿瘤组织内,而在分化成熟的正常组织中未见表达。
[4]
Survivin存在两种不同的亚细胞定位[5],即定位于细胞核或/和细胞浆中。
Survivin这种不同的分布是由于其转录后修饰不同引起的,这也说明了在不同的肿瘤中Survivin的定位不同。
胞浆中的Survivin与间期微管,中期和晚期中心体,纺锤体两极和有丝分裂纺锤体微管有关。
两种定位不同的Survivin的免疫反应性不同,在细胞周期中独立地受到调节。
Survivin被P34-cyclinB磷酸化被认为是抑制凋亡的首要条件。
[6]只有胞浆Survivin与P34有关,且只有Survivin位于caspases存在的胞浆中才能有效阻断凋亡。
一个不能被磷酸化的Survivin不仅扰乱细胞分化,而且通过底物竞争的方式诱导凋亡,这提示胞浆中和胞核中Survivin有不同的预后意义。
1.4Survivin的异构体Survivin前体mRNA选择性剪接可产生不同的剪接异构体。
1999年Mahotka[7]首先在肾癌细胞中发现2个Survivin异构体:
Survivin-Ex3和Survivin-ZB。
Survivin-Ex3序列中缺少外显子3,具有抗凋亡活性,而Survivin-ZB是把内含子作为隐蔽的外显子,不具备抗凋亡活性,相反可以作为天然存在的Survivin的拮抗剂。
Survivin及其剪接异构体在肿瘤进展中可能发挥作用。
在胃癌、肾癌组织中发现Survivin-Ex3和Survivin-ZB,且前者的抗凋亡作用明显高于后者。
在胃癌中,Survivin-Ex3的表达水平不随临床分期改变,而Survivin-ZB的表达水平则随分期的增加而降低。
Conway等[8]在人的组织内发现了3个Survivin剪接异构体Survivin-140,Survivin-128和Survivin-40,3种异构体均表达于胚胎组织,而在胸腺和睾丸内只有Survivin-140的高水平表达,Survivin-40在分化成熟的组织内未见表达,只有包含BIR结构的Survivin-140、Survivin-128具有抑制caspase的功能。
2、Survivin与肿瘤的发生发展
研究认为,大多数凋亡信号所诱发的细胞凋亡都是通过效应性蛋白酶实现的。
caspase-3是由Fas基因介导细胞死亡的基本死亡因子,为关键效应性蛋白酶,阻断的凋亡过程;
同时,Survivin通过细胞周期依赖性表达,可对抗G2/M期凋亡的诱导,在肿瘤细胞中的过度表达可克服凋亡的关卡(checkpoint),通过有丝分裂促进转化细胞的异常增殖。
肿瘤的形成和发展是一个多步骤多阶段的过程,机制非常复杂。
这其中有多种癌基因,抑癌基因,逆转录酶,抗凋亡基因等的激活和凋亡基因的失活以及它们之间的相互促进和拮抗作用。
现将Survivin在肿瘤发生过程中的作用阐述如下。
2.1Survivin的抗凋亡作用研究认为,大多数凋亡信号所诱发的细胞凋亡都是通过效应性蛋白酶caspase实现的。
caspase-3是由Fas基因介导细胞死亡的基本死亡因子,为关键效应性蛋白酶。
当其与线粒体上p21waf1/cip1或IAP结合后,即在细胞内失活。
Suzuki等[9]的研究发现,在Fas基因和细胞增殖刺激下,Survivin进入到细胞内,与细胞周期调节蛋白CDK4结合,导致CDK2/CyclinE激活和Rb磷酸化,促进DNA复制,缩短G1/S期进程。
另外,Survivin/CDK4复合物形成,使p21waf1/cip1从与CDK4结合的复合物中释放出来,与线粒体procaspase-3相互作用,启动caspase-3的灭活,从而抑制Fas介导的细胞死亡。
此外,Survivin还是p34(cdc2)周期素B1的有丝分裂底物,Survivin在Thr34上的磷酸化是细胞分裂时保证细胞活力所必需的。
Shin等[10]运用体外caspase抑制分析研究证实,Survivin是caspase-3和caspase-7的直接抑制剂,从而阻断凋亡过程。
2.2Survivin与P53基因的关系野生型P53对Survivin为负性调节。
野生型P53在mRNA和蛋白水平抑制Survivin。
[11]当P53突变时,则无法形成与阻遏蛋白sin3及脱乙酰组蛋白(histonedeacecylases,HDAC)形成P53-sins-HDAC复合物结合到Survivin启动子上,修改其染色体构型,导致转录因子E2F2不能转变为E2F-Rb复合物,致使Survivin异常表达。
[12]而高表达的Survivin通过启动抗凋亡机制引起细胞增殖,肿瘤形成。
2.3Survivin与C-Myc基因Zhu等[13]的研究发现,Survivin的促细胞转化作用依赖于C-Myc和cyclinD1。
其高表达引起细胞C-Myc和cyclinD1的表达水平增高。
而原癌基因C-Myc及其编码的蛋白表达异常增加可诱导细胞转化和肿瘤形成。
同时C-Myc蛋白可结合于多种细胞的端粒酶转录酶(humanfelomerasereverasetranscriptase,HTERT)直接调节HTERTmENA的表达,[14]从而激活端粒酶,以自身模板合成端粒DNA片断并加到染色体末端,阻止因细胞分裂造成的端粒缩短,从而延长细胞的寿命,导致细胞增生,永生化和癌变。
2.4Survivin与细胞分裂在抑制细胞凋亡的过程中,Survivin通过阻断线粒体细胞色素C释放,直接抑制下游凋亡效应因子caspase-3和caspase-7起作用,[15]经过与纺锤体纤维的结合,间接抑制caspase对纺锤体的水解作用,有利于保护有丝分裂细胞的完整性,抑制细胞凋亡。
[16]
2.5Survivin与血管生成肿瘤的生成和发展依赖于血管。
血管生成素-1作为血管内皮细胞的特异性配体,是胚胎的血管形成中维持血管稳定性和形成的关键因子。
研究发现,血管生成素-1的作用依赖于Survivin的表达上调,Survivin表达异常增高则促进VEGF诱导的内皮细胞增殖和三维毛细血管网的形成。
[17]
3、Survivin与肿瘤的靶向治疗
现已发现,Survivin在所有常见恶性肿瘤中表达。
如乳腺癌、胃癌、肾癌、黑色素癌、肠癌、神经母细胞癌和卵巢癌等,而在正常组中无表达。
它的这一特性,使得靶向Survivin的免疫治疗和基因治疗能够促进肿瘤细胞的凋亡,抑制其增殖,正常组织却能不受损伤和影响。
Mesri等[18]把含有磷酸化缺失的Survivin突变体(Thr34-Ala)的腺病毒PAD-T34A于体外分别转染前列腺癌,肺癌,宫颈癌和结肠癌细胞后都发生了自发性的凋亡,线粒体释放细胞色素C及caspase-3的活性增加。
相反,用PAD-T34A感染正常的人类细胞,如纤维细胞,内皮细胞,其增生能力不受影响。
MESRI的研究还表明,在免疫缺陷小鼠的3个异种移植乳腺癌模型中,PAD-T34A能抑制肿瘤形成,对已建立肿瘤抑制率达40%,减少肿瘤的腹腔内扩散。
注射PAD-T34A的肿瘤表现出增生细胞丧失,大量凋亡。
CHOI等[19]设计了两种靶向SurvivinmRNA的ribozyme(RZ-1和RZ-2)。
RZ-1和RZ-2能在SurvivinmRNA的核苷酸位点+279和+289切断SurvivinmRNA,将ribozyme的序列克隆到复制缺陷的腺病毒载体,并用它转染乳腺癌McF-7细胞,结果转染的细胞中SurvivinmRNA和蛋白质水平均明显下降,细胞凋亡增加且增强了鬼臼乙叉苷或血清饥饿所诱导的凋亡作用。
可见,作为一种广泛的肿瘤抗原,Survivin可以作为抗肿瘤免疫治疗的一个广泛适用的靶基因。
4、总结
目前,关于Survivin在肿瘤中的研究已经取得了一定的进展,但是还有不少方面需要更深入地进一步研究。
如Survivin与肿瘤发生发展及其临床预后的相关性,Survivin在细胞浆和细胞核中的表达受到何种调节,Survivin的各种异构体之间的关系及作用,以及Survivin在肿瘤靶向治疗中的作用等都需要我们去探究。
5参考文献
[1]丁建.抗肿瘤药物的研究进展与发展策略[J].江西医学院学报,2001,41
(2):
33-39
[2]ADIDAC,CROTTYPL,MOGRATHJ,etal.Devdlopmentallyregulatedexpressionofthenovelcanceranti-apoptosisgenesurvivininhumanandmousedifferentiation[J].AmJPathol,1998,152
(2):
43-49
[3]LiF,AmbrosiniG,ChuEY,etal.Controlofapoptosisandmitoticspindlecheckpointbysurvivin[J].Nature,1998,396:
580
[4]O’CONNORDS,GROSSMAND,PLESCIAJ,etal.Regulationofapoptosisatcelldivisionbyp34cdc2phosphorylationofsurvivin[J].ProeNatlAcadSciUSA,2000,97(24):
13013-13107
[5]FORTUGNOP,WALLNR,GLODINIA,etal.Surviivinexistsinimmunochemicallydistinctsubecllularpoolsandisinvolvedinspindlemicrotubulefunction[J].JCellSci,2002,115(Pt3):
575-585.
[6]O’CONNORDS,GROSSMAND,PLESCIAJ,etal.Regulationofapoptosisatcelldivisionbyp34cdc2phosphorylationofsurvivin[J].ProcNatlAcadSciUSA,2000,97(24):
13103-13107.
[7]MahotkaC,WenzelM,SpringerE,etal.Survivin-deltaEx3andsurvivin-2B:
twonovelsplicevariantsoftheapoptosisinhibitorsurvivingwithdifferentantiapoptoticproperties[J].CancerRes,1999,59:
6097.
[8]ConwayEM,PollefeytS,CornelissenJ,etal.ThreedifferentiallyexpressedsurvivincDNAvariantsencodeproteinswithdistinctantiapoptoticfunctions[J].Blood,2000,95:
1435
[9]SuzukiA,ItoT,KawanoH,etal.Survivininitiatesprocaspase3/p21complexformationasaresultofinteractionwithCdk4toresistFas-mediatedcelldeath[J].Oncogene,2000,19:
1346
[10]ShinS,SungBJ,ChoYS,etal.Ananti-apoptoticproteinhumanSurvivinisadirectinhibitorofcaspase-3andcaspase-7.Biochemistry,2001,40(4):
1117-1123
第五章 环境影响评价与安全预评价[11]MirzaA,McGuirkM,HockenberryTN,etal.Humansurvivinisnegativelyregulatedbywild-typep53andparticipatesinp53-dependentapoptoticpathway[J].Oncogene,2002,21:
2613
环境总经济价值=环境使用价值+环境非使用价值[12]HoffmanWH,BiadeS,ZilfouJT,etal.Transcriptionalrepressionoftheanti-apoptoticsurvivingenebywildtypep53[J].JBiolChem,2002,277:
3247
[13]ZhuH,LiuS,ZhouC,etal.Antrapoptsisgenesurvivinpromotescellgrowthandtransformation[J].ZhonghuaYiXueZaZhi,2002,82(5):
338
(三)规划环境影响评价的公众参与[14]SongY,KongBH,LiuPS,etal.Relationshipbetweenhumantelomerasereversetranscriptasetranscriptionallevelandtelomeraseactivityinthreeovariancancercellines.[J].AiZheng,2003,22:
486
[15]ShinS,SungBJ,ChoYS,etal.Ananti-apoptoticproteinhumanSurvivinisadirectinhibitorofcaspase-3andcaspase-7.Biochemistry,2001,40(4):
B.可能造成重大环境影响的建设项目,应当编制环境影响报告书[16]AndradeF,RoyS,NicholosonD,etalGranzymeBdirectlyandefficientlycleavessereraldownstreamcaspasesubstrates;
inphcationsforCTL-induceelapoptosisimmunity,1998,8(4):
451-460
表四:
项目排污情况及环境措施简述。
[17]MesriM,MbralesRM,AckemannEJ,etal.Suppressionofvascularendothelialgrowthfactormediatedendothelialcellprotectionbysurvivingtargeting[J].AmJPathol,2001,158(5):
1757-1765
(2)辨识和分析评价对象可能存在的各种危险、有害因素,分析危险、有害因素发生作用的途径及其变化规律。
[18]MesriM,WallNR,LiJ,etal.Cancergenetherapyusingasurvivinmutantadenovirus[J].JClinInvest,2001,108:
981
1.建设项目环境影响评价机构的资质管理[19]CHOIKS,LEETH,JUNGMH.Ribozyme-mediatedcleavageofthehumansurvivinmRNAandinhibitionofantiapoptoticfunctionofsurvivinginMCF-7cells[J].CancerGengTher,2003,10
(2):
87-95
(3)环境影响技术评估。
作者单位:
李梅 云南省肿瘤医院病理科云南 昆明 650118
陈芸云南省肿瘤医院病理科云南 昆明 650118
(2)防护支出法作者简介:
李梅:
(1975-),女,云南昆明人,硕士,主治医师,主要从事病理诊断工作。
建设项目所处环境的敏感性质和敏感程度是确定建设项目环境影响评价类别的重要依据,环境影响评价文件应当就该项目对环境的影响做重点分析。
注:
本研究系云南省教育厅资助项目 编号:
5Y0406C
投稿邮箱:
sxzlyx@