植物组织培养实验报告Word格式.docx
《植物组织培养实验报告Word格式.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《植物组织培养实验报告Word格式.docx(15页珍藏版)》请在冰豆网上搜索。
植物激素是一类植物自身合成、同时对其生长发育具有重要调节作用的有机化合物。
生长调节物质对于离题培养中的细胞分裂分化、器官形成和个体再生等均起着重要而明显的调节作用。
一般来说,基本培养基只能保证培养物的生存,维持其最低的生理活动,而只有植物激素的配合使用,才能完成离体培养物中按照需要设计的各个调节环节。
常用的植物组培激素种类主要有生长素类、细胞分裂素类、赤霉素。
1)生长素的生理作用主要是促进细胞分裂和生长,有利于外植体脱分化并启动细胞分裂,有利于形成愈伤组织。
同时生长素和细胞分裂素的协调作用,对于培养物的形态建立十分必要。
在离体培养的分化调节中,生长素促进不定根的形成而抑制不定芽的发生。
在液体培养中,生长素还有利于体细胞胚胎发生。
常用的生长素有吲哚乙酸(IAA)、奈乙酸(NAA)、二氯苯氧乙酸(2,4-D)和吲哚丁酸(IBA)等。
在使用2,4-D时,必须严格控制使用浓度和培养时期,因为高浓度的2,4-D常常抑制器官的发生,在分化培养时不能使用2,4-D代替其他生长素。
2)细胞分裂素的主要作用是促进细胞的分裂,调节器官分化,延迟组织衰老,增强蛋白质合成等。
此外,它还能显著改善其他激素。
离体培养中,细胞分裂素能够促进不定芽的发生,与生长素协调使用能有效调控培养物的生长与分化。
常用的细胞分裂素包括6-卞基嘌呤(6-BA)、激动素(KT)、异戊烯氨基嘌呤(2ip)、玉米素(ZT)等。
3)赤霉素(GA)是一类广泛存在于植物体内的激素,目前已发现的天然赤霉素有20多种。
自然界植物体内的赤霉素具有促进细胞伸长生长、诱导花芽形成、打破种子休眠及诱导单性结实等生理功能。
在离体培养条件下,赤霉素的主要作用时促进细胞伸长生长,与生长素协同作用对形成层的分化具有一定影响,同时还能刺激体细胞胚进一步发育成植株。
三、实验材料、试剂和仪器设备
1.植物材料:
马齿苋、番茄种子诱导的无菌苗、外植体(盘龙参、波斯菊、金叶女贞、黄花苜蓿、菊花、香樟、杜鹃、月季)
2.实验药品(试剂):
甲醛、MS培养基母液(见表1)、蔗糖、琼脂、1%升汞、酒精(75%和90%)、NaOH、HCl、6-BA、NNA、无菌水;
3.仪器设备和实验用具:
高压灭菌锅、天平、pH计、超净工作台、电炉、酒精灯、镊子、解剖刀、剪刀、烧杯、培养瓶、量筒、烧杯、玻璃棒、广口试剂瓶、牛皮纸、滤纸、培养皿、药勺、支架、打火机等。
四、实验步骤
(一)培养基母液的配制(2016/3/4)
1.MS培养基贮备液配制
贮备液I(g)(20×
)
贮备液III(mg)(100×
MgSO4·
7H2O
3.70
500mL
FeSO4·
7H2O
278
100mL
NH4NO3
16.50
Na2EDTA·
2H2O
373
CaCl2·
2H2O
4.40
生长调节剂
KNO3
19.00
6-BA
50mg
50mL
KH2PO4
1.70
NAA
贮备液II(mg))(100×
贮备液IV(mg))(100×
KI
8.3
肌醇
1000
H3BO3
62
烟酸
5
MnSO4·
4H2O
223
盐酸硫胺素
1
ZnSO4·
86
盐酸吡哆醇
Na2MoO4·
2.5
甘氨酸
20
CuSO4·
5H2O
0.25
称量溶解混合定容
CoCl2·
6H2O
表1
1)每种母液中的几种成分称量完毕后,分别用少量的蒸馏水彻底溶解,然后再将它们混溶,定容。
2)贮备液III需加热溶解。
混合后调至pH5.5,定容,保存在棕色玻璃瓶内。
3)6-BA:
1mg/mL(溶于少量1N盐酸后以蒸馏水定容)。
NAA:
1mg/mL(先用少量95%乙醇溶解后以蒸馏水定容)。
4)各种母液配制完成后,分别用玻璃瓶贮存,贴上标签,注明母液号、配制倍数、日期等,放入冰箱冷藏室保存。
一般无机物质的母液在冰箱中可保存半年以上,有机物质的母液保存时间在半年以内,但若发现有沉淀或霉变,应立即需重新配制。
2.其他试剂的配置
1)1mol/L的NaOH:
1瓶
2)1mol/LHCL:
3)0.1%的升汞或2%次氯酸钠:
每个超净工作台一瓶(用时处理5-30min)
4)70~75%酒精:
每个超净工作台一瓶
5)95%酒精:
6)75%酒精棉球:
(二)培养基的配制与灭菌
1.培养基配制
1)配制培养液(MS培养液):
按每次配制500mL培养基计,用量筒或者移液管从各种母液中分别取出贮备液I25mL、贮备液II、Ⅲ、Ⅳ各5mL;
2)溶化琼脂:
用粗天平分别称取5g琼脂、15g蔗糖放入500mL搪瓷缸中,加入蒸馏水400mL,用用电炉加热,边加热边用玻璃棒搅拌,直到液体呈半透明状。
然后再将配好的混合培养液加入到煮沸的琼脂中,最后加蒸馏水定容至500mL,搅拌均匀。
3)调pH:
用滴管吸取物质的量浓度为1mol/L的NaOH溶液,逐滴滴入溶化的培养基中,边滴边搅拌,并随时用精密的pH试纸(5.4~7.0)测培养基的pH,一直到培养基的pH为5.8为止(培养基的pH必须严格控制在5.8)。
4)培养基的分装
溶化的培养基应该趁热分装。
分装时,先将培养基倒入烧杯中,然后将烧杯中的培养基倒入组培瓶(50mL或100mL)中。
注意不要让培养基沾到瓶口和瓶壁上。
组培瓶中培养基的量约50mL。
每500mL培养基,可分装10~15瓶。
5)培养基分装完毕后,应及时封盖瓶口。
最后在组培瓶外壁贴上标签。
2.培养基灭菌(高压灭菌)
1)放培养瓶。
将装有培养基的培养瓶直立于金属小筐中,再放入高压蒸气灭菌锅内。
如果没有金属小筐,可以在两层锥形瓶之间放一块玻璃板隔开。
2)放置其他需要灭菌的物品。
将其他需要灭菌的物品也放入高压蒸气灭菌锅内,如装有蒸馏水的锥形瓶、带螺口盖的玻璃瓶、烧杯、广口瓶(以上物品都要用牛皮纸封口),用牛皮纸包裹的培养皿、剪刀、解剖刀、镊子、滤纸、铅笔等。
3)待需要灭菌的物品码放完毕,盖上锅盖。
在98kPa、121.3℃下,灭菌20min。
灭菌后取出培养瓶,让其中的培养基自然冷却凝固。
最好放置1d后再使用。
3.其他灭菌
1)不耐热的物质将采用过滤灭菌
如赤霉素、玉米素、脱落酸、尿素和某些维生素等。
过滤灭菌的原理:
溶液通过滤膜后,细菌的细胞和孢子等因大于滤膜孔径而被阻。
2)玻璃器皿及耐热用具等可采用干热灭菌
即利用烘箱加热到160-180℃的温度来杀灭微生物。
3)用于无菌操作的器械采用灼烧灭菌
(三)接种室和超净工作台的灭菌处理
1.接种室熏蒸灭菌
长期不用的培养室或接种室要进行熏蒸。
方法:
甲醛、高锰酸钾熏蒸。
甲醛的用量通常按每立方米空间2-6毫升计算,高锰酸钾的用量是甲醛的一半。
室内准备妥当后,把称好的高锰酸钾放在瓷碗或烧杯内(最好在碗或杯下面铺一张报纸,以利清洗),然后将甲醛也倒入碗或杯内,立即出屋关门。
几秒钟后,甲醛溶液即沸腾挥发。
高锰酸钾是一种氧化剂,当它与一部分甲醛作用时,由氧化反应产生的热可使其余的甲醛挥发为气体。
甲醛熏蒸接种室应至少在使用前24小时进行,熏蒸后密闭保持4小时以上再进入室内工作。
甲醛对人的眼、鼻有强烈刺激作用。
因此,可在使用前用氨进行中和。
取与甲醛等量的氨水,倒在另一个烧杯里,迅速放入熏蒸室内,使甲醛和氨水发生中和反应,以消除甲醛味,减少对人体的刺激作用。
使用氨水应在工作前2小时进行。
对有材料的培养室,也可以采用乙二醇加热熏蒸
2.准备组培室
将组培室打扫干净,调至适宜温度
3.超净工作台处理
1)材料准备
用75%酒精擦拭,准备好超净工作台内物品,包括酒精棉球、75%和90%酒精、废液缸、打火机、酒精灯、支架、镊子、解剖刀、解剖剪等
2)灭菌处理
实验开始前先用75%酒精擦拭工作台面,然后开启紫外灯,紫外照射20min-30min。
关闭紫外灯,开启风机10min后打开日光灯。
用70-75%的酒精拭擦台面并消毒双手。
试验用具也应该用酒精消毒。
点燃酒精灯,将金属器械在其火焰上灼烧,冷却待用。
注意:
所有操作应在火焰近处并经过灼烧进行。
金属器械不能过度灼烧,以防退火。
移液管不能灼烧,培养瓶口、塑料材料、橡胶材料过火焰不能时间太长。
(四)无菌苗的培养(2016/3/11)
1.培养基配制(方法同
(二)培养基的配制与灭菌)
种子的萌发采用1/2MS培养基
1/2MS培养基
贮备液Ⅰ
贮备液Ⅱ
贮备液Ⅲ
贮备液Ⅳ
蔗糖
琼脂
12.5mL
2.5mL
15g
5g
2.马齿苋(番茄)种子处理
1)洗去浮尘和上漂的种子,挑选饱满种子,置于培养瓶中流水冲洗30min后倒掉水备用;
2)将种子置于培养瓶中,用75%酒精消毒灭菌30~60s,用无菌水冲洗干净;
3)用1%升汞处理8~10min,然后用无菌水冲洗3~4次,放入无菌培养皿中,置于酒精灯火焰下方,用无菌接种器械进行分离接种。
3.接种及培养
1)用酒精擦洗工作台和手,对接种器具进行灼烧灭菌;
2)打开培养瓶,瓶口在灯焰处旋转灼烧,用镊子(90%酒精浸泡并灼烧)将培养材料置于培养基上,灼烧瓶口,盖上瓶塞。
3)培养瓶贴上标签,做好标记,然后放到光照培养箱中或培养室培养架上进行培养,条件为2000-3000LX,26±
1℃,培养一周。
实验结果:
所有马齿苋无菌苗均染菌(未拍照)
实验分析:
①马齿苋种子消毒、灭菌时间不足
②接种室和培养实灭菌不彻底,环境较脏
③实验操作不正确
④超净工作台不干净
(五)愈伤组织诱导(2016/3/25)
1.培养基的配制(方法同
(二)培养基的配制与灭菌)
愈伤组织诱导培养基
组别
NNA
一
0.5%
25mL
5mL
二
1%
三
四
2.无菌苗和外植体的处理
1)无菌苗处理
从培养瓶中取出无菌苗,用无菌水洗净培养基,切成0.5cm大小,叶片较大的进行裁剪,置于无菌培养皿备用;
2)外植体处理
a将野外植物洗干净尘土并用洗衣粉刷干净;
b将洗净植物切去叶柄,将叶片从叶脉处剪开,再切成3~4mm2的小块;
嫩茎需切取两个节之间的节间部分,长约1cm,流水冲洗30min;
c将外植体置于培养瓶中,用75%酒精持续消毒灭菌18s,然后用无菌水冲洗
d用1%升汞处理12~15min,然后用无菌水冲洗3~4次,放入无菌培养皿中,置于酒精灯火焰下方,用无菌解剖刀切去两端后进行接种。
3.接种及培养(同无菌苗的建立)
4.剔除长菌严重的培养瓶,其余继续培养
5.观察实验现象
材料
染菌率
枯死率
存活率
马齿苋
100%
(2)
所有叶柄基部没有散开,一起消毒
75%酒精15s
升汞:
15min
盘龙参根
盘龙参-叶绿色
100%
盘龙参-叶基部
50%
(1)
苜蓿(花+叶)
花-0
叶-50%
花:
叶:
50%
波斯菊叶
第一周(2016/4/8)
盘龙参根
结果
盘龙参叶
盘龙参叶基部
苜蓿花+叶
第二周(2016/4/15)
开始长愈伤组织
无变化
愈伤组织长势良好
1、仅有无菌苗染菌:
无菌苗本身染菌,但未被发现;
实验培养基凝固不彻底,粘到瓶子壁上;
培养基pH未调好;
操作时,动作不正确
无菌苗仅用无菌水洗涤,未用酒精和升汞
2、外植体有部分枯死:
灭菌过度,时间过长
3、盘龙参组织无变化:
可能由于培养基中植物激素不适宜,培养室温度、光照等不恰当
4、波斯菊长愈伤组织明显,此培养基较适宜波斯菊
5、不同植物对植物激素的要求不同,所以在同一浓度下出现不同的结果
(六)生根实验(类似扦插)(2016/4/15)
1.生根培养基配制(方法同
(二)培养基的配制与灭菌)
生根培养基(1/2MS)
0.2%
0.4%
0.6%
从培养瓶中取出无菌苗,用无菌水洗净培养基,保留部分幼嫩叶片,切成0.5cm大小(材料尽量幼嫩),置于无菌培养皿备用;
b将洗净植物切去老叶,保留顶端嫩叶、嫩茎,切成长约2cm茎段,流水冲洗30min;
d用1%升汞处理13min,然后用无菌水冲洗3~4次,放入无菌培养皿中,置于酒精灯火焰下方,用无菌解剖刀切去两端后(约1.5cm)进行接种。
一瓶接种2~3个茎段,直接插入培养基中,形态学上端朝上;
菊花茎
(1)
月季茎
(2)
月季花
(2)
第一周50%
(1)
第二周100%
(2)
女贞茎(4)
100%(1长愈伤组织、3无变化)
香樟
(1)
100%(有愈伤)
杜鹃
(1)
波斯菊茎
(1)
100%(略长根,第二周长菌)
第一周(206/4/29)
月季花
月季茎
绽开,无根
花苞长真菌,无根
长真菌,无根
叶稍长,无根,未染菌
菊花茎
香樟
褐化,无根
无根
有白色菌点?
or愈伤组织?
杜鹃
波斯菊茎
无根,几乎无变化
长势旺盛,略微生根
女贞茎
无变化,无根
第二周(2016/5/6)
其余材料均无明显变化
波斯菊
开始枯萎,无根
波斯菊开始长菌,黄色细菌,菌落光滑
稍长根,但不明显
综合对比
不同浓度NAA对波斯菊生根的影响(2016/5/6)
NAA浓度低——————————>
高
实验结果显示:
较高浓度NAA诱导长根效果更好。
如图所示,随NAA浓度的增加,波斯菊生根越多,长势越好
(七)生芽实验(2016/5/6)
1.生芽培养基配制(方法同
(二)培养基的配制与灭菌)
生芽培养基(MS)
5%
4%
2.无菌苗和外植体的处理(同上)
b将洗净植物除叶留芽,切成长约2cm,流水冲洗30min;
长芽率
第三周有染菌
12.5%
87.5%
番茄
第一周(2016/5/20)
有部分死亡,未死亡的均已生芽,长势好
该培养基适宜用于诱导波斯菊生芽
无生芽趋势,但是可能要长愈伤组织
该培养基浓度不适宜诱导番茄生芽
第二周(2016/5/27)
茎段生芽长势良好,开始形成愈伤组织
番茄长势较波斯菊缓慢,第二周生芽(腋芽较多),也形成愈伤组织
第三周(2016/6/3)
部分长势良好,愈伤组织和芽军生长旺盛;
波斯菊部分死亡,部分开始长菌,多数为真菌:
1、可能是植物本身含有的菌,培养一段时间后开始生长;
2、培养瓶盖子上部的通气孔有破损
3、培养室内不干净
番茄是无菌苗,未出现染菌情况。
芽和其遇上组织的生长旺盛
五、注意事项
1.配制培养液时应注意:
1)在使用提前配制的母液时,应在量取各种母液之前,轻轻摇动盛放母液的瓶子,如果发现瓶中有沉淀、悬浮物或被微生物污染,应立即淘汰这种母液,重新进行配制;
2)用量筒或移液管量取培养基母液之前,必须用所量取的母液将量筒或移液管润洗2次;
3)量取母液时,最好将各种母液按将要量取的顺序写在纸上,量取1种,划掉1种,以免出错。
4)溶化琼脂需要注意的是,在加热琼脂、制备培养基的过程中,操作者千万不能离开,否则沸腾的琼脂外溢,就需要重新称量、制备。
此外,如果没有搪瓷量杯,可用大烧杯代替。
但要注意大烧杯底的外表面不能沾水,否则加热时烧杯容易炸裂,使溶液外溢,造成烫伤。
2.外植体放入培养基时,注意方向。
每瓶放置外植体的数量,应该根据培养瓶瓶的大小来确定,一般放置胡萝卜4-6块。
注意外植体也不要放得太少,以充分利用培养基中的营养成分。
3.接种用的酒精灯,火焰不要调得太高,接种时应靠近酒精灯火焰操作,接种的速度要快。
4.接种时严防超净工作台内着火。
5.无菌操作培养时:
1)进行培养时,动作要准确敏捷,但又不必太快,以防空气流动,增加污染机会。
2)不能用手触及已消毒器皿,如已接触,要用火焰烧灼消毒或取备品更换。
3)为拿取方便,工作台面上的用品要有合理的布局,原则上应是右手使用的东西放置在右侧,左手用品在左侧,酒精灯置于中央。
4)工作由始至终要保持一定顺序性,组织或细胞在未做处理之前,勿过早暴露在空气中。
同样,培养液在未用前,不要过早开瓶;
用过之后如不再重复使用,应立即封闭瓶口直立可增加落菌机会。
5)吸取营养液、细胞悬液及其它各种用液时,均应分别使用吸管,不能混用,以防扩大污染或导致细胞交叉污染。
6)工作中不能面向操作区讲话或咳嗽,以免唾沫把细菌或支原体带入工作台面发生污染。
7)手或相对较脏的物品不能经过开放的瓶口上方,瓶口最易污染,加液时如吸管尖碰到瓶口,则应将吸管丢掉。
8)