植物标本的采集和制作方法Word文档下载推荐.docx
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如果超过1m
以上，把它折成“N”字形收压起来或分成几段（上段带有花果，中段带叶，下段带根），
将几段汇成一份标本，但要注意将全草高度记录下来。
采3～5份同样的标本，稍加修剪整
齐，每份标本采集后，必须挂上号牌。
3有些植物为雌雄异株，必须分开采集标本，而且要注意不要搞错。
一些寄生性的植物如桑寄生、槲寄生、菟丝子等，采集时应注意连寄主一起采集。
4采集一种植物时，必须仔细观察植物的生长环境、形态特征，注意其主要特点，如花颜色、气味，几经压制后看不出的特征，必须就地对其形态特征加以记录。
记录本上的号码必须与标本上号牌的号码一致，以防混淆。
这样即便采集的标本有时只是植物体的一部分，但有了详细的文字记录，就成了完整的标本了。
5原则上同株植物标本编同一号码，不同株的应编另一号码，以免混乱，尤其是木本植物标本必须这样做。
6采集时要考虑植物资源，不可乱砍滥伐。
（3）记录方法：
野外采集必须具有现场记录，记录内容有专门记录本可按其格式填写。
植物地方名、用途、生态环境（山坡、林下或水沟边等）、海拔高度、花果颜色、气味、乳汁等都要当时记录，否则就影响鉴定的正确性。
采集记录的同时要按种编号，号码写在标签牌上，然后用线栓在标本上，号码同记录本号码一致，这样就可按记录本上的号码找到标本，不致错误。
另外写野外记录和号牌标签应用铅笔，而不用圆珠笔或钢笔，这样不易褪色。
（4）标本压制
1采回的标本应及时整修压制，以免花、叶变形、变色，无法保持原有形状，而失去保存价值。
2先将一块标本夹放平，按标本夹大小铺放5～6层麻纸，纸上放标本，对标本进行整修，对过多的枝、叶、花、果要适当摘去一部分，以免重叠而霉变。
标本各部分均不可露出标本纸外，每层标本纸上视标本大小而放置标本，需四周高低一致，不可一侧厚一侧薄。
每份标本从正面应看到叶背面和腹面两个面上的特征。
整理好的每份标本上再盖2～4层麻纸，以此类推，大约压制50～80份标本后，最上面盖5～6层麻纸，将另一块标本夹盖在上面，用麻绳将标本夹四周捆紧，捆时注意四周用力一致，捆得平展即可。
注意压制标本时必须按标本编号顺序放好，切不可乱放。
捆绑好的标本夹可放在通风处阴干。
3标本压制的最初4～5d内，必须每天翻压一次，用干麻纸替换湿麻纸，决不可疏忽大意，否则就会使标本霉变、落叶、落花或变色。
4～5d后可隔2～3d换一次纸，可捆松点，以免损坏标本，直至完全干燥为止。
换纸的过程要注意对植株的再次整形，换下的湿麻纸要及时晾干、晒干或烘干以备使用。
4换纸过程中，如有花、果、叶脱落，可另装入小纸袋内，记上相同采集号，附在标本上。
对于肉质植物、块根、块茎、鳞茎、肉质果等不易干燥或各部易脱落的标本，要在压制前用沸水冲烫数分钟，待水晾干后再压制，这样处理利于标本压干又可避免其脱落。
5对某些植物过大的根、果不便与标本同时压制的，可挂同一编号的号牌，晾干、晒干，单独妥善保存。
（5）标本消毒和装订：
标本压干后，通常要进行消毒，因为标本上往往有虫卵或霉菌孢子。
消毒一般用升汞（HgCl2）和酒精（95%）配成千分之二至千分之五的升汞酒精溶液，先将溶液放在瓷盘内，将标本浸透静止5min左右，即可用竹筷（不能用铁器）夹起，放在干的吸水草纸中，压干后可以避免生霉及虫害（升汞溶液有剧毒，用时注意防毒）。
消毒后上台纸，这样不致把标本弄坏。
1台纸准备好（台纸规格30×
40cm或再大些），将消毒过的标本贴在台纸上，贴时按自然状态，即先端向上，基部向下，放置在台纸上适当位置，用涂阿拉伯胶（或桃胶）的布条将标本贴附在台纸上或用线缝上，贴和缝的位置，以固定标本为准。
如标本上有脱落的果实和种子，可以用玻璃纸袋装之，贴在台纸左或右上角。
2经过分科、分属、分种鉴定之后，可将鉴定标签贴在右下角，野外记录贴在左上角，这样成为完整的标本。
放入标本橱内密封保存，以便研究和教学时使用。
对已上台纸的储存标本，消毒亦可设立专门的密封消毒容器或单独消毒房间，但必须远离工作房屋以免中毒。
消毒时把装好的标本放在消毒容器内或房间内，用氰化钾或臭气熏杀标本上的所有昆虫和菌类孢子等。
这些消毒药器均有剧毒，必须严格防止漏气，在熏杀36～48h之后，利用远距离操作，将消毒容器或消毒房间的门窗全部打开，使毒气充分熏散之后，取出全部消毒标本，存放在植物标本橱内，密封保存。
（6）标本保管和使用
1腊叶标本按科的分类系统进行分科后，用牛皮纸夹好，在左下角写出科的系统编号，科名（学名）；
科内的属、种分别用牛皮纸夹好，写好学名，按字母顺序排列。
2将牛皮纸夹好的标本依科的顺序放入标本柜内，柜门外贴上相应科的顺序。
3采取防潮、防虫措施：
可放置干燥剂、樟脑丸等，注意关好柜门。
4标本室应有专人保管，并建立严格的使用制度；
标本室应配备观察标本用的桌、椅、解剖镜、放大镜及有关工具等。
保持标本室干燥、通风和整洁。
5看完后的标本应立即入柜，切忽放置在外。
（7）浸制标本的制作
纯防腐性的浸渍法：
①将标本直接浸入5～10%甲醛溶液或70%酒精中。
使用时根据标本含水量的多少选用不同浓度的溶液，一般含水量高的选用低浓度的溶液，含水量低的可选用浓度高的溶液。
②也可将标本直接浸入FAA溶液中。
FAA为一种常用的植物材料固定液。
其配方如下：
50～70%酒精90ml，甲醛5ml，冰醋酸5ml，其中酒精的浓度视标本含水量多少而定。
绿色标本的浸制法：
①醋酸铜、醋酸液处理浸渍法：
取醋酸铜结晶，加以50%醋酸液中，用玻璃棒徐徐搅
动，使至饱和为止，配成原液。
用时加水稀释4倍，然后将标本浸入稀释液中加热煮沸，可
见标本呈黄绿色，继续煮之，标本又会由黄绿色变为绿色，当标本的颜色接近原来的颜色时，即停止加热并将标本取出用清水漂洗。
洗后将标本浸入5%的甲醛溶液中保存。
②硫酸铜液处理，甲醛液浸渍法：
取硫酸铜饱和水溶液750ml，甲醛50ml，加水250ml，配成浸渍液。
将标本在此液中浸8～14日，取出用水漂洗，然后浸入4～5%的甲醛液中保
存。
此法较简单，对一些不能加热或表面附有蜡质不易浸渍及着色的标本比较好。
白色标本的浸制：
①如慈姑，可先在3%～5%的亚硫酸溶液内处理一周左右，再放入1%～4%的亚硫酸
溶液内保存，也可直接放入1%～4%的亚硫酸溶液内保存。
②白色带绿色部分如菜花、白萝卜，可先在5%CuSO4内处理1～3d，漂洗后转入1%～4%的亚硫酸溶液内保存。
红色标本的浸制：
①福尔马林、硼酸混合溶液处理：
用1%的福尔马林和0.8%的硼酸制成混合溶液，将
桃、杏等放入，待红色转为褐色时取出，时间一般1～3d左右，处理后转入0.2%～1%亚硫
酸和0.2%硼酸混合溶液内保存。
②硫酸铜溶液处理：
瓜类、辣椒等用5%硫酸铜溶液处理，约1～2周，一般红色转为褐色后取出，漂洗后放入1%～2%亚硫酸溶液内保存。
黄色标本的浸制：
①硫酸铜处理：
黄色或黄绿色根、叶、果等，可在5%硫酸铜溶液内处理1～5d，经过
漂洗，放入2%亚硫酸溶液内保存。
②用2%亚硫酸及0.1%福尔马林混合溶液处理保存，浑浊时要及时更换保存液。
紫色标本的浸制：
①福尔马林和酒精混合液处理：
20%福尔马林和2%酒精混合液处理保存。
②用2%～3%福尔马林和3%饱和食盐溶液（饱和食盐溶液浓度为100ml水加盐16g）
混合处理2～3个月，然后放入1%～2%福尔马林溶液内保存。
藻类植物标本采集和制作
1．藻类植物基本特征及生长习性
藻类植物一般都具有进行光合作用的色素，能够进行光合作用以供本身所需。
生殖器官为单细胞构造。
植物体无根、茎、叶分化。
藻类植物多数生长于水中，也有些生长在潮湿的树干、石头、墙壁、土壤等地方，还有些生长于动植物体内。
如硅藻门植物喜欢在冷水中，春秋两季出现较多；
金藻门植物多在寒冷秋末至次年早春出现；
甲藻门植物在温暖夏季、碱性水中生活；
蓝藻门植物在温暖夏季生长旺盛，常形成“水花”；
绿藻门植物在春秋两季生长
旺盛；
裸藻门植物在温暖夏季、有机质丰富的水中生活。
因此，各门藻类植物的采集地点、时间需根据它们各自的生活习性确定。
采集之前，必须先了解各种藻类植物的生活习性，否则不易采到所需要的标本。
根据水的多少、有无和藻类植物生活方式将它们分为以下几种类型：
（1）水生藻类：
是指生活在各种水体中的藻类植物，根据它们在水中的生活方式，可分为：
①浮游藻类：
是一群自由漂浮于水中，体积微小，肉眼不能见到的单细胞或群体藻类。
有的种类具有鞭毛，能自由运动，有的不具鞭毛，只能随水漂浮。
裸藻门、绿藻门、金藻门、甲藻门、硅藻门、蓝藻门中都有浮游藻类的存在。
②附生藻类：
多为分枝或不分枝丝状体，也有球形或不规则块状群体性的藻类，还有少数单细胞类型。
它们附着于水中各种基物上，如石块、木椿、水底高等植物及其藻类植物体上。
（2）亚气生藻类：
该类藻生长在比较潮湿的环境中，藻体不完全沉浸在水中，有时可在短暂时间内浸在水中，如土壤表面、潮湿岩石表面、山间洞穴、树干基部、苔藓植物或蕨类植物体上也可发现多种藻类。
（3）气生藻类：
此藻类植物生长在空气中，不直接与土壤接触，在生活期中，一旦遇雨水，立刻恢复其生命活动，如在树皮、树叶、各种岩石、城堡、古建筑物上都能见到气生藻类。
（4）特殊生境中的藻类：
某些藻类植物的生活环境比较特殊。
营共生生活的，如有些蓝藻和绿藻与真菌共生；
也有与苏铁、满江红等高等植物共生的。
有些蓝藻生活在淡水或海水中的贝壳、螺壳等钙质壳内，称为穿钙藻。
有些藻类能分泌碳酸钙于体外，把自己的原植体包埋起来，形成迭成石和上石灰华。
2．标本采集和制作
（1）采集用具：
野外采集之前，须先准备野外工作中必不可少的用具。
采集袋（或采集筒）：
采集袋的大小能容纳野外采集时所用的全部用具。
若无采集袋，可用塑料筒代替。
浮游生物网：
浮游生物网是采集浮游藻类不可缺少的工具。
它是圆锥形，口径约20cm。
常用的浮游生物网多用13号、20号和25号尼龙筛绢制成。
采集大型的浮游藻类用13号和
20号绢网，25号绢网用来采集小型的浮游藻类。
纸袋：
用牛皮纸制成长宽各为10cm大的纸袋，也可购买牛皮信封，从中间剪断，一个可制成两个小纸袋。
标签纸：
用质量好的白纸裁成2×
15cm的纸条，供采集标本时编号用，其编号必须和标本采集记录册的编号一致。
标本瓶：
容30～60mm的玻璃瓶或塑料瓶。
野外采集记录册：
即野外采集时记录的手册，用铅笔按手册内所规定的项目填写，每号标本填写一份记录。
铅笔（HB）：
作记录和编号用。
镊子：
用以挟取标本。
小铲子：
供刮取石表和土表的藻类用。
小锤子：
供敲打生长有藻类的岩石，这类标本紧贴在岩石上，用刀不易刮下，只有用锤子敲，将标本与石头一起取下。
温度计：
测定水体温度。
pH纸：
测定水的酸碱度。
（2）采集方法
浮游藻类：
①直接取水样沉淀浓缩：
小池塘、水库、积水坑等的静水中藻类数量比较多，可直接用大标本瓶采集水样。
每公升水样加15ml鲁格氏液，静置24h，使其沉淀后，将瓶内上部清液倒掉。
在沉淀好的水样中，加入8%～10%甲醛液。
如计量时，采集的水样要定
量。
最后将填写有编号、采集地点和日期的标签放入标本瓶中。
②用浮游生物网采集：
如湖泊、江河等大型水体中的标本不容易直接采取，可用浮游生物网。
使用浮游生物网前，先将网系于2m以上的竿上，检查网头，关好阀门。
捞取时将网作8字形在水中拖动约3～5min。
将网慢慢提起，待水滤出后，浮游藻类集聚网头，用标本瓶收集网中水样，立即用鲁格氏液或甲醛液固定，也可用波恩氏液固定保存。
附生藻类：
在水底石块、木椿、船底、贝壳、树枝、残叶等基物上，生有绿色绒毛状分枝或不分枝的丝状体是刚毛藻属（Cladophora）、基枝藻属（Basicladia）等；
呈棕色粘滑皮
膜状的是硅藻；
呈蓝绿色、黑蓝色或棕红色为蓝藻。
这些藻类可用刀或小铲刮取，或用镊子挟取。
刮取时最好带点基物。
生长于水底的轮藻，可用带龄的耙子或拖草器捞取。
漂浮于水面或半沉于水中的丝状藻类，生活期绿色，生殖期呈棕黄色的藻类是水绵属（Spirogyra）、
双星藻属（Zygnema）、转板藻属（Mougeotia）；
水网藻属（Hydrodictyon）也是绿色，浮于水中；
绿色胶质的囊状体漂浮或附生于水中草、树枝、石块等基物上的是四孢藻属（Tetraspora）；
黄丝藻属（Tribonema）生于水沟中。
上述藻类可用镊子直接捞取，将其置入标本瓶中，再倒入8%～10%甲醛液固定，随后写好标签放入标本瓶中。
气生和亚气生藻类的采集：
在花盆、墙壁、岩石表面、树皮上、叶片上和苔藓植物体上，生有绿色粉状物是原球藻属（Protococcus）、绿球藻属（Chlorococcum）、裂丝藻属（Stichococcus）；
呈桔色的丝状物是桔色藻属（Trentepohlia）；
呈蓝绿色、黄绿色、褐色、灰绿色的粘状物是蓝藻；
呈黑褐色茸毛状的是真枝藻属（Stigonema）；
褐色茸毛状物是单歧
藻属（Tolypothrix）和伪枝藻属（Scytonema）；
硅藻常常呈棕色出现在上述环境中。
这些藻类可用小铲或刀刮取，最好带一部分基物；
生长在干燥岩石上的藻类不易刮取，必须用锤子敲取；
生长在各种生境土壤表面上的藻类，用小铲铲取2～3mm的表土即可。
将此类标本
装入小纸袋内。
在纸袋上直接填写编号、采集地点和日期。
冰雪藻类：
用小铲铲取，立即放入装有1/3～1/2甲醛液（8%～10%）的标本瓶中，同
时放入填写好的标签。
（3）采集记录
野外采集记录是一项重要工作，可以反映藻类植物采集时的生活状态、外部形态和生境特点等，便于以后鉴定和研究标本时查阅，需永久保存。
每号标本作一份记录。
用铅笔按野外记录册上规定的内容记载，同时作好野外标本签的记载，内容与野外记录册的内容一致。
（4）标本制作和保存：
标本的保存可分风干、压制成腊叶标本和浸制三类。
风干标本：
气生、亚气生的藻类植物采集后，直接装入纸袋内，风干保存即可。
保存中注意防潮、防虫、标本柜内须放入樟脑丸。
腊叶标本：
绿藻门的水网藻、刚毛藻、水绵、轮藻属（Chara）、溪菜属（Prasiola）、红
藻门和褐藻门植物都可制成腊叶标本保存。
藻类植物腊叶标本的制作和高等维管植物腊叶标本的制作原理一样，但由于藻类植物的生境与高等植物的生境不同，含水量较大，胶质多，在压制方法上稍有不同，具体步骤如下：
①制作前用清水将标本洗净。
②将备好的台纸浸入盛有清洁水的脸盆内，置于水中的托水板上，台纸大小，需根据制作标本的大小而定。
③洗好的标本置于台纸上，摆正位置，使分枝充分展开，互不重叠。
④轻轻托出托水板，将摆有标本的台纸托出水面，倾斜托水板，尽力流掉其上的水，将标本连同台纸移到吸水纸上，上面复盖纱布，纱布上再复数张吸水纸，压入标本夹内。
⑤每天换吸水纸和干纱布1～2次。
⑥压干的标本自然贴于台纸上，如有自然粘贴不牢的，可用透明胶带粘贴。
有些含钙质的藻类和穿贝藻类，如不除掉藻体和基质中的钙，就不能看清藻体的构造，也不能从基质中取出藻体，故要除钙。
除去钙质最常用的方法是用5%～10%的冰醋酸浸泡，如果藻体内钙质太多，须更换冰醋酸液，直至无气泡产生为至。
浸制标本：
浮游藻类、附生于水中各种基质上的藻类、冰雪藻类，采到后必须马上用甲醛液浸制。
浸制藻类标本常用的固定液有：
1鲁格氏液（Lugol'
ssolutio）n：
是一种常用的固定藻类的固定剂，能防止鞭毛收缩，使绿藻淀粉核变为黑紫色，便于识别绿藻或计算绿藻数量。
配法：
将6g碘化钾溶于20ml蒸馏水中，待全部溶解后，再加入4g碘，待全部溶解后，再加入80ml蒸馏水即可。
由于碘容易升华，因此，24h后必须加3%甲醛溶液。
甲醛液：
最常用的固定剂。
固定蓝藻标本时，用2%甲醛溶液可保存；
固定裸藻和绿藻
用3%甲醛液；
固定鼓藻时，加甲醛液后，再加几滴醋酸。
2波恩氏溶液（Bouin'
用波恩氏溶液固定藻类的优点是细胞变化小，有利于种的鉴定和观察，特别对固定浮游藻类的效果较佳。
用波恩氏溶液固定的标本，经过1～
2d后，须换4%的甲醛液保存。
在100ml蒸馏水中加入苦味酸结晶，边加边搅动，直至苦味酸溶解达饱和时止，再经静置沉淀后，取上清的饱和液75ml，注入烧杯中，加40%甲醛25ml，冰醋酸3ml即可。
苦味酸易燃易爆，平时应在苦味酸中加入20%的水，放在阴凉处，以避免危险。
3FAA（Formalin-aceto-alchohol）固定液：
常用固定剂，效果好，可长期保存。
4团藻固定剂：
效果最好的是碘—甲醛—醋酸液，固定时，不要使其群体互相间集成块。
将碘化钾溶于少量蒸馏水中，待溶解后，再加其它成分。
5硅藻标本的清除处理：
硅藻细胞壁含有大量二氧化硅，因此，标本容易保存。
一般用5%～8%甲醛固定即可。
3．藻类植物标本整体封存制片
（1）水藏法：
仅适于暂时封藏，新鲜标本和液浸的均可。
方法简单易做，但水易蒸发，不能长期保存。
制片用的材料是浮游藻类时，用吸管取少量材料，滴在清洁载玻片上，在显微镜下检查，如有要观察的材料，再滴一滴清水，盖上盖片即可。
观察的材料具鞭毛、运动迅速、不易观察时，可将载玻片静放20min左右，待部分水蒸发后再观察，也可用吸水纸自封好的盖片一端吸出一部分水，这时藻体的运动减慢即可观察，也可用鲁格氏溶液杀死后观察。
丝状藻类观察时，先在载玻片中央滴一滴清水，然后用解剖针或小镊子取少许材料，放在载玻片上的水滴中，并用解剖针将藻体分开，盖上盖片即可。
（2）甘油封藏法：
方法简单，保存时间较长，但此种制片只能平放，不能竖放在切片盒内，盖片上的积灰不能擦，只能用气吹。
封藏剂的配制：
配制三种浓度的甘油，取10ml甘油，加90ml蒸馏水配制成10%的甘油；
取20、40ml甘油，80、60ml水分别配制成20%和40%的甘油。
将三种浓度的甘油分别装入经高压灭菌消毒的瓶中，并在每瓶中投入一颗米粒大小的麝香草粉，以防止甘油发霉。
密封剂的配制：
密封剂有多种，常用的有沥青（取50g清洁沥青，加10ml二甲苯，待其全部溶化为止，检查一下浓度是否合适，太稀再加少量沥青，太浓再加少量二甲苯）、化工漆和加拿大树胶。
后两种可直接用于密封。
封片步骤：
①标本用4%甲醛固定12h。
②在清洁载玻片上滴一滴10%的甘油。
③在解剖镜下选出要制片的材料，放入载玻片上的甘油中，用解剖针轻轻拨动，使材料充分散开，注意不要出现气泡。
④将载玻片放入干燥器或大型容器中，防止灰尘落入，待甘油中的水分逐渐蒸发，浓缩至原来的一半时，加入20%的甘油，再静置待水蒸发，加入40%的甘油，
2～3d后，甘油近于无水状态时，即可进行密封。
⑤取清洁的纱布，在70%酒精中浸一下，
擦掉盖片周围多余的甘油。
⑥用清洁的毛笔，蘸上少量沥青，在盖片四周作8个小沥青点，干后，再用毛笔蘸较多沥青，沿盖片四周边缘涂一薄层，待其干后，从玻片后面对太阳光作一次检查，盖片四周是否有细的、白色透明线条，如有需补封。
⑦贴标签：
标签大小为2×
2cm，其上应注明采集编号、地点和日期。
（3）甘油胶封藏：
这种制片法是藻类植物研究中最适用的一种，它克服了上两种封藏
法的弱点，该法制片可保存10～20年。
甘油胶配制：
白明胶1g，纯甘油7mg，蒸馏水6mg先将白明胶放入盛有水的烧杯中，加热至35℃使胶融化，不要把烧杯直接放在火上加
热，如无水浴锅时，把装有白明胶的烧杯，置于盛有水的普通锅中加热。
当白明胶全部溶化后，再加入甘油，继续加热15min，同时用玻璃棒搅拌，在每100ml中放入1g麝香草酚，防止发霉，再用清洁的细纱布过滤，分装入瓶中待用。
①新鲜标本用4%甲醛固定12h，也可根据不同标本选用不同的固定剂固定。
②在解剖镜下选出制片用的标本，置于清洁载玻片上。
③将甘油胶瓶置于盛有清水的烧杯中，连同烧杯一起放在火上加热至甘油胶溶化，用吸管吸一滴甘油胶滴在载玻片的标本处，盖上盖片。
④待甘油胶凝结后，用刀将盖片四周多余的胶刮掉，再用蘸有70%酒精的清洁
纱布擦去残余的甘油胶。
⑤用蘸有沥青或加拿大树胶的毛笔沿盖片四周涂抹密封。
⑥从玻璃片后面对着阳光检查，看是否有白色透明线条，如有则须再补封一次。
上述甘油和甘油胶封片是不染色的封片，此两种封片法也可在染色后进行封片。
染色应用水溶性染色剂，如苏木色素、番红等。
将固定后的标本用水充分冲洗，去掉标本中的固定剂，进入染色程序。
以苏木色素为例：
①移入4%铁矾溶液中约2h。
②用水反复冲洗。
③
用1%海氏苏木精染色2～12h。
④用水冲洗，去掉染液。
⑤用
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