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自20世纪20年代Stamberg等人提出*淀粉酶

能水解4%-10%勺小麦生淀粉以来,各国科学家在此方面做了大量的研究工作。

本文分别以大米、小麦、玉米为原料,采用正交实验的方法研究生料酿酒工艺,经过实验,

我们认为:

不同的淀粉质原料酒精发酵的能力不同,在相同的条件下,大米的发酵能力最强,玉米次之,小麦最差。

菌种的加量与淀粉质原料的发酵率有关,但并不意味菌种加量愈多,淀粉质原料的出酒率愈高,实验发现菌种加量以1%为宜。

料水比例

(淀粉浓度)与原料出酒率有关,以14%为宜。

这与淀粉浓度在13%-16%寸底物与产

品对菌种的抑制最小的结论一致。

生料浓醪酒精发酵工艺是否合理,有待进一步研究。

介质的PH值与淀粉质原料的出酒率亦有一定的关系,PH=4时淀粉质原料的酒精发

酵率最高,这就说明生料酿酒的效率与糖化酶的活力有关,我们知道PH=4是糖化酶

的最适作用的PHE值。

测定每日酒精的产量,提出酒精发酵的动力学模型,为工业化

生产酒精提供了理论依据。

通过模拟实验我们发现,单一的淀粉酶并不能水解生淀粉,与糖化酶一起使用,其水解力达到单一糖化酶效率的>

F<

倍,这说明简单地利用淀粉

酶、糖化酶及活性干酵母复配生料发酵剂是不可取的,生料酿酒之所以能提高原料的出酒率3-5倍,原因在于群微共酵。

本文旨在为推动生料酿酒技术的普及提供理论指导。

1实验原理

1.1生料酿酒原理

利用大米中富含的淀粉发酵酿酒,通过各种酶的作用,将淀粉转化为可发酵性糖,然后经过酒母的发酵作用,将可发酵糖转化成酒精,生料酿酒的关键是酒曲,酒曲既要能将生淀粉转化为糖,同时又要将糖转化为酒精。

生料酿酒就是酿酒的原料不需要蒸熟,直接用生料就能把淀粉转化成糖,再转化成乙醇。

只要含有淀粉的物质或含糖的物质都能转化成乙醇即食用酒精。

除了大米外,其他粮食都需要粉碎。

要想用生料酿出的白酒口感好,必须搭配好酿酒的原料。

高粱酿酒香,但出酒少。

大米出酒多,但不够暴。

玉米出酒率仅次于大米。

但小酒厂因没有脱胚机械,故酿出的酒就有玉米味。

小麦酿出的酒适合大众口味,但受资源限制,大麦酿味道很好所以搭配好酿酒原料才是关键,一般根据当地产的粮食和当地人口感适当搭配,

工艺:

原料f粉碎f水f糖化酶f活性干酵母f生香酵母f搅拌f封口f发酵f蒸馏T成品

1.2总酸度测定原理

食品中的有机弱酸用标准碱液进行滴定时,被中和生成盐类:

RCOOH+NaOHfCH3COONa+H2O

以酚酞作为指示剂,滴定至溶液显淡红色,30s不褪色为终点。

根据所消耗的标准碱液的浓度和体积。

计算出样品中酸的含量。

1.3总酯测定原理

先用NaOH中和酒样中的酸性物质,然后加入过量且定量的NaOH标准溶液使之与酒样中的酯类起皂化反应:

CH3C00C2H5+Na0FfCH3COONa+C2H5OH

剩余的碱再用硫酸标准溶液滴定至终点,根据皂化反应所消耗碱量计算酯类总量。

1.4甲醇测定原理

甲醇在磷酸酸性条件下,被高锰酸钾氧化为甲醛。

过量的高锰酸钾及在反应中产生的二氧化锰被草酸一硫酸溶液除去。

然后,加入无色的品红一亚硫酸试剂,使之与氧化生成的甲醛作用生成蓝紫色醌形色素。

根据颜色深浅与标准曲线比较定量。

2实验部分

2.1材料、试剂与仪器

2.1.2实验原料

1•糖化酶北京奥博星生物技术有限公司。

2•活性酵母广州丹宝利公司

3•生香酵母湖北安琪酵母股份有限公司产。

4•大米要求颗粒饱满,无霉变,无杂质,大米淀粉含量为9%

5•细菌培养基、酵母培养基

2.1.3主要试剂

1%宁檬酸;

0.01mol/LNaOH溶液;

1%&

酞;

0.05%mol/L硫酸溶液;

甲醇标准溶液;

甲醇标准使用液。

细菌培养基(牛肉膏:

蛋白胨:

氯化钠:

琼脂=1.5:

5:

2.5:

9

酵母培养基(酵母浸液:

葡萄糖:

琼脂=1:

2:

2

高锰酸钾一磷酸溶液:

称取3克KMnO4,加入15毫升H3PO4(85%与70毫升水的混合物中,溶解后加水至100毫升,贮于棕色瓶内,为防止氧化能力降低,保存时间不宜过长.

草酸一硫酸溶液:

称取5克H2C2O4或7克H2C2O42H2O,溶于H2SO4(1:

1中至100毫升

品红一亚硫酸溶液:

称取0.1克碱性品红研细后,分批加入共60毫升80E的水,边加入水边研磨使其溶解,用滴管吸取上层溶液过滤于100毫升容量瓶中,冷却后加人10毫升10%Na2SO3溶液,1毫升浓HCI,再加水至刻度,充分混匀,放置过夜,如溶液有颜色,可加少量活性炭搅拌后过滤,贮于棕色瓶中,置暗处保存,溶液呈红色时,应弃去重新配制。

2.1.4主要仪器

旋转蒸发器RE--52AA(上海亚荣生化仪器厂)、SPX--25B型生化培养箱(上海跃进医疗器械厂)、数显恒温水浴锅、紫外分光光度计、恒温培养箱、手持糖度计、酒精计、电子天平、三角瓶、粉碎机、酸碱滴定管、冷凝管等。

2.2实验方法

2.2.1大米生料酿酒工艺

大米生料酿酒基本工艺路线如下所示:

原料f粉碎f水f生料酒曲f糖化酶f活性干酵母f生香酵母f搅拌f封口f发酵T蒸馏T成品

取粉碎后的大米(40目以上)100g,两份,再取500mL三角烧瓶两个,各加300mL水,然后将称好的大米加入其中,充分搅拌,用1%的柠檬酸调pH值4.0-5.0,温度控制在26〜30T。

按粮、酶比例加入0.3%勺糖化酶,同时加入0.2%勺活性干酵母和0.1%生香酵母,搅拌均匀,做到不成团,不起疙瘩即可,封闭进行发酵,发酵温度30C,发酵期控制为8天。

发酵前期每天搅拌一次,使发酵瓶底部的原料与糖化、发酵剂充分接触,均匀彻底发酵,使所有淀粉能充分利用。

发酵中期,搅拌醪液时一定要注意封闭隔氧。

搅棒要清洗干净,以免发酵醪液染菌,升酸较快、较大,影响出酒率。

发酵后期,不宜频繁搅拌,以减少酒精分的挥发损失。

发酵完毕,采用旋转蒸发仪,将酒蒸出,酒精度在40〜50。

之间掐去酒头(前4〜5mL),取酒,去尾(30°

以下的酒。

2.2.2大米生料酿酒过程监控

发酵前期,进行一次染菌情况检查;

发酵中期,每天一次酒精度、总酸度及糖度的检测;

发酵后期,每两个小时检测一次酒精度、总酸度及糖度。

发酵液的成熟检查:

眼看液面料糟是否都沉入瓶底,醪液由浑浊变清,发酵终止醪液呈淡茶色,整个发酵醪液呈静止状态,无气泡现象;

闻有舒畅的香味和冲鼻的香味逸出;

口尝微酸不甜。

成熟度理化检测指标见表2-1。

表2-1

理化检测指标

检测项目

酒精度(%)

还原糖

总酸

指标

9〜12

<

0.35

0.50

成品检验:

感官无色透明,无沉淀,无悬浮物;

香气具有本产品固有的香气;

口味味醇和,净爽,无邪杂味;

总酯、总酸和甲醇含量测定。

2.2.3检测方法

2.2.3.1总酸度的测定

NaOH的标定:

精确称取0.6克的基准物邻苯二甲酸氢钾,于250mL锥形瓶中,加50mL蒸馏水溶解,加酚酞2滴作指示剂,用配置的NaOH标准溶液滴定至显淡红色,30秒不退色,同时做空白实验,利用公式计算出氢氧化钠标准溶液浓度:

CM1000

(yV2)204.2

c—氢氧化钠标准溶液浓度;

M—基准物邻苯二甲酸氢钾的质量;

V1--滴定时所消耗的

氢氧化钠标准溶液体积;

V2—空白试验所消耗氢氧化钠标准溶液体积。

总酸度的测定:

对于酒类物质,混匀样品直接取样•准确吸取已制备的滤液15mL于250mL锥形瓶中滴加2滴酚酞作指示剂,用O.lmol/L氢氧化钠标准溶液滴定至溶液显淡红色,30秒不褪色,记录消耗0.1mol/L氢氧化钠标准溶液的量,利用下公式计算总酸度。

CVKV0

X0100%

MVi

其中:

X—总酸度%;

C—氢氧化钠标准溶液浓度,mol/L;

V—消耗氢氧化钠标准溶液体积,mL;

M—样品的体积,mL;

V0—样品稀释液总体积;

V1—滴定时吸取样品液的体积;

K=0.06。

223.2总酯的测定

取酒样12.5mL(V3)注入250m1具塞锥形瓶中,加2-3滴酚酞作指示剂,用0.1mol/L氢氧化钠标准溶液滴定至溶液微红,30秒不褪色.

准确加入0.1mol/L氢氧化钠标准溶液12.5mL摇匀,加塞在水浴上回流30分钟,用0.05mol/L硫酸标准溶液(用标定后的0.1mol/L的NaOH标定)滴定至溶液红色刚褪。

按下式

1000(C112.5C22V4)0.088

计算总酯含量:

总酯(g/L以乙酸乙酯计)=124

式中:

C1—氢氧化钠标准溶液的浓度,mol/L;

C2—硫酸标准溶液的浓度,mol/L;

V3-酒样的体积,mL;

V4—滴定消耗硫酸标准溶液的体积,mL。

2.2.3.3甲醇的测定

(1)甲醇标准曲线的制备

吸取0.0,0.20,0.40,0.60,0.80,1.00mL甲醇标准使用液(相当于0,0.2,0.4,0.6,

0.8,1.0mg甲醇)分别置于25mL具塞比色管中,并加入0.5m160%不含甲醇的乙醇溶液。

各加水至5mL,再依次各加2mL高锰酸钾一磷酸溶液,混匀,放置10min,各加2mL草酸—硫酸溶液,混匀使之褪色,再各加5mL品红一亚硫酸溶液,混匀,于20E以上静置0.5h,用2cm比色皿,以零管调节零点,于波长590nm处测吸光度,绘制标准曲线。

(2)样品甲醇含量的测定

根据样品中乙醇浓度适当取样(乙醇浓度303取1.0mL,40%取0.8mL,50%取0.6mL,60%取0.5mL),置于25mL具塞比色管中。

加水至5mL按标准曲线再依次加2mL高锰酸钾—磷酸…方法,测波长590nm处吸光度值。

按下式计算样品甲醇浓度:

c—测定样品中甲醇的含量,mg;

V5—样品体积,mL

3结果与讨论

3.1发酵期间各指标检测

3.1.1糖度

发酵期间的糖度检测结果如表3-1所示:

表3-1-1糖度检测数据表

测底日期总糖度

2016/6/36

2016/6/46

2016/6/57

5

52016/6/65

发酵过程的总糖度大致是成下降状态,符合实验要求。

3.1.2酸度

发酵期间发酵液的酸度检测结果如图3-2所示:

表3-1-2酸度检测数据表

酸度测定测底日期

NaOH用量酸度值

2016/6/3

6.2ml

0.203%

2016/6/4

6.0ml

0.197%

2016/6/5

5.9ml

0.194%

6.5ml

0.213%

2016/6/6

6.9ml

0.226%

3.1.3酒精度

发酵期间的酒精度测定数据如表3-1-3所示:

表3-1-3发酵期间酒精读测试数据表

测底日期

酒精度

9

8

7

发酵期间的酒精度与发酵时间吾明显线性关系,说明测试过程存在些许问题。

3.2成品酒各指标检测

成品就的指标检测包括多方面:

总酸度的检测、总酯的检测、甲醇含量的检测、酒精度的检测等,本次头验也就从上述的四个方面来进行对成品就的指标检测,看看头验做出来的成品就能够达到一个怎样的标准,其检测结果如下:

3.2.1酒精度

成品酒的酒精测试结果如表3-2-1所示:

表3-2-1成品酒酒精度检测数据表

测试样品

成品酒

16.5

3.2.2总酸度

成品酒的总酸度测试数据如表3-2-2所示:

表3-2-2成品酒总酸度检测数据表

酸度测定

7.65ml0.25%

3.2.3总酯

成品酒的总酯的检测数据如表3-2-3所示

表3-2-3成品酒总酯检测数据表

成品酒测定项目

结果数据

总酯测定

0.577g/l

3.2.4甲醇含量

正成品酒的甲醇含量检测数据如表3-2-4所示:

表3-2-4成品酒甲醇含量检测数据表

测定项目样品液甲醇含量

成品酒甲醇酶100ml含量

甲醇含量0.00399mg

0.0000027(g/100ml)

3.2.4.1甲醇标准曲线绘制

甲醇标准曲线的数据如表3-2-5所示:

表3-2-5甲醇标准曲线数据表

甲醇含量(mg)

吸光度值

0.2

0.056

0.4

0.060

0.6

0.064

0.8

0.078

1

0.104

甲醇标准曲线如图3-2-5所示:

图3-2-5甲醇标准曲线图

324.2甲醇含量计算

总酯(g/L以乙酸乙脂计)=1000(C112.5C22V4)0.088

Ci一氢氧化钠标准溶液的浓度,mol/L;

C2—硫酸标准溶液的浓度,mol/L;

V3—酒样的体积,ml;

V4—滴定消耗硫酸标准溶液的体积,mi所以,本实验本小组的成品酒的总酯计算如下:

总酯(g/L以乙酸乙脂计)=

V3

1000(G12.5C22V4)0.088

1000X0.080X12.5—0.051X2X9.0)X).088

12.5

=0.25%

4结论

生料酿酒操作要求在无菌条件下进行,不然已被杂菌污染导致实验失败,所以我们在操作过程中要严格控制操作条件,另外在发酵过程中也要注意发酵温度和搅拌,我们采用摇瓶方式发酵,摇瓶的速度不宜过快,温度控制在30C。

我们一开始培养了两瓶发酵液,值得注意的是,在操作过程只能打开其中的一瓶,是整个操作过程中只能打开这一瓶,不然另一瓶就会陪污染,这样最后面的蒸馏也就没什么意义了。

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