机能实验Word文档格式.docx

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交感缩血管纤维兴奋，引起缩血管效应。

心迷走神经兴奋，心脏产生负性变时变力变传导。

去甲肾上腺素主要作用于血管平滑肌上的α受体，引起小动脉微动脉收缩，外周阻力增加，血压增高；

已酰胆碱可与心脏的M受体结合，使心脏心率变慢，心缩力变小，心输出量减低，血压降低。

[实验器材与药品]

MD-2000微机化实验教学系统，兔手术台，哺乳动物手术器械，气管插管，动脉夹，动脉插管，玻璃分针，血压换能器，保护电极，有色丝线，纱布，注射器。

生理盐水，1%戊巴比妥钠（3ml／kg），肝素，1:

10000去甲肾上腺素，l:

10000乙酰胆碱。

[实验对象] 

家兔

[实验步骤和方法]

1．手术过程

（1）麻醉：

由耳缘静脉注射1%戊巴比妥钠（3ml／kg），待兔麻醉后，仰卧位固定于兔台上

（2）插气管插管：

颈部剪毛，沿颈正中线做一5~7cm长的皮肤切口。

分离皮下组织及肌肉，暴露和分离气管。

在气管下方穿一较粗线备用，于甲状软骨尾侧2~3cm处做“⊥”形切口，插入气管，用备用线结扎固定。

（3）分离颈部神经和动脉：

在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和降压神经。

三条神经中迷走神经最粗，交感神经次之，降压神经最细，常与交感神经紧贴在一起。

分离后分别在各神经下方穿以不同颜色的丝线备用，颈总动脉下方穿两条线备用。

（4）插动脉插管：

在左侧颈总动脉的近心脏端加一动脉夹，然后结扎其远心脏端，动脉夹与结扎线之间相距至少2cm。

用眼科剪刀在靠近结扎线处做一向心脏方向的斜形切口，将连于血压换能器的细塑料管（管内预先注入肝素以抗血凝）向心脏方向插入动脉切口内，然后用备用的线结扎固定。

小心松开动脉夹，即可见血液冲进动脉插管。

（5）实验装置的连接与使用：

将血压换能器与MD-2000微机化实验教学系统的3通道连接，刺激电极与系统的刺激输出连接。

启动计算机，双击桌面上“MD-2000”图标，进入MD-2000生物信号采集分析系统，点击菜单栏“实验”，在下拉菜单中依次选“生理学实验”、“动脉血压调节”，点击“确定”，即进入血压调节实验界面。

2．观察项目：

（1）记录正常血压曲线，辨认血压波的一级波和二级波，有时可见三级波。

（2）用动脉夹夹闭右侧颈总动脉10～15s，观察血压的变化。

（3）由耳缘静脉注射1:

10000乙酰胆碱0.2ml，观察血压的变化。

（4）由耳缘静脉注射1:

10000去甲肾上腺素0.3ml，观察血压的变化。

（5）结扎并剪断右侧迷走神经，电刺激其中枢端，观察血压的变化。

（6）电刺激右侧迷走神经外周端（靠近心脏一端），观察血压的变化。

（7）剪断另外一侧迷走神经，观察血压的变化。

[注意事项]

1．麻醉药注射量要准确，速度要慢，同时注意呼吸变化，以免过量引起动物死亡。

如果实验时间过长，动物苏醒挣扎，可适量补充麻醉药物。

2．手术过程中应尽量避免损伤血管，并注意及时止血，保持手术视野清楚；

3．分离动脉和神经时切勿用有齿镊。

4．注意保护神经不要过度牵拉，并随时用生理盐水湿润。

5．在整个实验过程中，要始终保持动脉插管与动脉的方向一致，防止刺破血管或引起压力传递障碍。

6．实验中每观察一个项目，必须待血压恢复正常后，才能进行下一个项目。

7．每项实验记录必须包括实验前的对照、实验开始的标记及实验项目的注释。

8．实验中注射药物较多，要注意保护耳缘静脉。

[思考题]

简述减压反射的过程。

实验二 

动脉血压、呼吸的综合实验

本实验通过学习动脉血压、呼吸联合记录的方法，观察神经、体液因素对动脉血压和呼吸运动的调节，并探讨其机制。

动脉血压的形成和稳定取决于心脏泵血、外周阻力和循环血量三个方面。

凡能影响上 

述过程的因素，都可影响动脉血压。

心脏收缩能力增强、外周阻力增加（阻力血管—小动脉和微动脉收缩）和循环血量增加，都能使血压升高。

呼吸运动靠机体的呼吸中枢调节，一些因素（如氧分压、氢离子浓度、二氧化碳分压的改变以及气道阻力的变化）可以直接作用于呼吸中枢或通过外周的感受器反射性地刺激呼吸中枢，从而调节呼吸运动。

氧分压降低、氢离子浓度增大、二氧化碳分压升高以及气道阻力增大等，均可使呼吸加深加快。

许多神经、体液因素往往同时影响动脉血压和呼吸运动。

MD2000微机化实验教学系统，压力换能器，张力换能器，兔手术台，哺乳动物手术器械1套，气管插管，动脉插管套管，气袋，橡皮管，螺旋夹，细塑料管，动脉夹，刺激器，刺激电极，三通管，注射器（1ml、2ml、5ml、20m1），纱布，丝线。

1％戊巴比妥钠，0.5％肝素溶液，0.1％乙酰胆碱溶液（ACh），0.1％阿托品溶液，生理盐水，CO2气体，氮气，。

1．手术操作

（1）动物的麻醉与固定：

取兔、称重。

由耳缘静脉缓慢注入1％戊巴比妥钠溶液（3ml／kg），待兔角膜反射或脚趾疼痛反射完全消失、呼吸减慢后，将其仰卧固定于兔台上，拉直颈部，剪去颈前部毛。

（2）分离颈部神经、气管和血管，作气管插管和动脉插管：

于颈部正中做5～7cm切口，按常规方法分离气管并插入气管插管，固定，夹闭气管插管的一侧管口。

分离右侧迷走神经（最粗）、减压神经（最细）。

分离左侧颈总动脉，穿入两条缝合线备用。

由耳缘静脉注射0.5％肝素溶液lml，然后进行动脉插管，结扎固定，并连接压力换能器。

注意分离气管时，勿损伤位于气管两侧的甲状腺动脉；

分离神经时，不要过度牵拉，并随时用生理盐水湿润；

分离动脉时，勿损伤其小分支。

（3）游离膈肌小片：

剪去胸骨剑突处兔毛，沿腹白线切开3~5cm长皮肤，暴露出胸骨剑突部位，仔细分离剑突周围组织后，剪断与胸骨柄相连的胸骨（注意不可剪的太深，以免将膈肌片剪断或造成气胸，如有出血可用棉花压迫之），游离出剑突，用带线的做成钩状的大头针钩住剑突，连接拉力换能器。

2．观察项目

（1）观察正常血压、呼吸曲线；

（2）增加吸入气CO2的浓度，记录血压、呼吸曲线；

（3）静脉注射0.1％ACh溶液0.05ml／kg，记录血压、呼吸曲线；

（4）在气管插管另一侧管上接一根50cm长的橡皮管，记录血压、呼吸曲线；

（5）电刺激右侧迷走神经，记录血压、呼吸曲线；

（6）失血效应：

由另一侧颈总动脉放血，记录血压、呼吸曲线。

1．麻醉药注射量要准，速度要慢，同时注意呼吸变化，以免过重引起动物死亡。

如实验时间过长，动物苏醒挣扎，可适量补充麻醉药。

2．在整个实验过程中，要保持动脉插管与动脉方向一致，防止刺破血管或引起压力传 

递障碍。

3．手术操作时，动作要轻，以减少不必要的手术性出血和休克。

4．注意保护神经不要过度牵拉，并经常保持湿润。

5．实验中，注射药物较多，注意保护耳缘静脉。

6．给予影响措施或注射药物时，时间不宜过长、量不宜过多，同时密切观察血压、呼吸的变化，以免实验失败。

7．每次给药后均以少量生理盐水冲洗注射器，以保证药液完全进入体内：

每项实验后，应等血压、呼吸基本恢复并稳定后，再进行下一项实验。

电刺激一侧迷走神经，对血压和呼吸有何影响？

为什么？

实验三 

影响尿生成的因素

学习从输尿管和膀胱引流尿液的方法，观察影响尿生成的若干因素。

尿的生成是持续不断的。

尿的生成包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收、分泌和排泄三个过程。

肾小球的滤过作用受滤过膜的通透性、肾小球有效滤过压和肾小球血浆流量等因素的影响。

肾小球和集合管重吸收受小管液溶质浓度和血液中抗利尿激素及肾素-血管紧张素-醛固酮系统等因素的影响。

凡能影响上述过程的因素都可影响尿的生成，从而引起尿量的改变。

MD2000微机化实验教学系统，兔手术台，哺乳动物手术器械，纱布，丝线，棉绳，塑料烧杯×

2，细塑料管（或膀胱插管），培养皿，注射器（20ml×

2、10ml×

2、5ml×

1、1ml×

3），头皮静脉针，计滴器。

1％戊巴比妥钠溶液，20％葡萄糖溶液，1:

10000去甲肾上腺素，0.1％酚红，20％甘露醇，10％NaOH，呋塞米（速尿），垂体后叶素，生理盐水。

1．麻醉 

耳缘静脉注射1％戊巴比妥钠溶液（3m1／kg）进行麻醉，仰卧位固定于兔手术台上。

2．手术 

腹部剪毛，于耻骨联合上方正中做一3~5cm长的切口，沿腹白线切开腹壁，将膀胱向尾侧移出体外，暴露膀胱三角，确认输尿管后，将靠近膀胱处的输尿管用止血钳做钝性分离，穿线备用。

将近膀胱端的输尿管穿线结扎，在靠近结扎线处剪一斜向肾脏的小口，将充满生理盐水的细塑料管向肾脏方向插入输尿管，备用线结扎固定。

此后，可看到尿液从细塑料管中慢慢逐滴流出。

也可从膀胱引流尿液。

同样切开腹壁后，将膀胱向尾侧移至腹外。

先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位，用线结扎膀胱颈部，以阻断它同尿道的通路。

然后，在膀胱顶部选择血管较少处，剪一纵行小切口，插入膀胱插管（可用一弯头滴管代替），插管口最好正对着输尿管在膀胱的入口处，但不要紧贴膀胱后壁而堵塞输尿管。

用线沿切口结扎两道，将切口边缘固定在管壁上。

手术结束后，用浸有38℃生理盐水的纱布覆盖创面。

3．在一侧耳缘静脉安置好头皮静脉针，用胶布固定并由专人负责缓慢推入少量生理盐水，其速度以针头不被堵塞为宜，为下面各项实验注射备用。

4．实验装置的连接与使用 

将插入输尿管内的细塑料管或插入膀胱内的插管所引流出的尿液，滴在记滴器上，记滴器与系统的4通道连接，描记尿滴数。

进入MD-2000微机化实验教学系统的“泌尿实验”，记录尿滴数。

（仪器使用详见MD-2000微机化实验教学系统）。

5．观察项目：

（1）正常尿量。

（2）由耳缘静脉注射37℃生理盐水20ml（1min内注射完），观察尿量的变化。

（3）自耳缘静脉注射垂体后叶素2U，观察尿量的变化。

（4）自耳缘静脉注射20％甘露醇5.0ml，观察尿量的变化。

（5）由耳缘静脉注射1:

10000去甲肾上腺素0.3ml，观察尿量的变化。

（6）自耳缘静脉注射20％葡萄糖5.0ml，观察尿量的变化。

（7）自耳缘静脉注射0.1％酚红0.5ml，观察并记录从注射开始到兔尿液中出现酚红的时间（为能清楚观察到酚红，可在收集尿液的培养皿中加10％NaOH1~2滴，以呈现玫瑰红色作为指示）。

（8）自耳缘静脉注射呋塞米（5mg／kg），5分钟后开始观察尿量的变化，连续观察5~7分钟。

1．为保证动物在实验时有充分的尿液排出，实验前给兔多食菜叶或给兔用水灌胃。

2．手术操作应尽量轻柔。

腹部切口不可过大，避免损伤性闭尿。

剪开腹膜时，注意勿伤及内脏。

3．实验中需多次静脉注射，故需保护好兔耳缘静脉。

应尽量从静脉远端开始注射，逐步移向根部，以免反复注射时造成困难。

4．输尿管插管时，应仔细辨认输尿管，要插入输尿管腔内，勿插在管壁与周围结缔组织间，插管应妥善固定，防止滑脱。

同时，注