烟草组培苗实验步骤Word文档下载推荐.docx

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超净工作台、 

酒精灯、 

解剖刀、 

镊子

二、实验方法与步骤

1、MS培养基母液的配制

母液

成分

规定量(mg/L)

浓缩倍数

称取量

(mg)

母液定溶体积(ml)

配1LMS培养基吸取量(ml)

倒入1000ml容量瓶中用蒸馏水定容至刻度,置小口瓶中保存,贴上标签注明化合物名称(或编号),浓缩倍数,配制日期和配制者姓名,CaCl2·

2H2O配制同上置于另一小口瓶中。

2、微量元素母液的配制

按要求浓缩100倍的数值称取,分别将各种化合物称量除铁盐(FeSO4·

7H2O和Na2-EDTA.2H2O)作为一组单独配制外,其余化合物可混合置于烧杯内加少量蒸馏水溶解后,定容在1000ml容量瓶中,置小口瓶中保存,贴上标签

3、铁盐配制将FeSO4·

7H2O和Na2-EDTA.2H2O分别溶于450ml蒸馏水中,加热,(很重要)不断搅拌,溶解后,两液混合,调PH至5.5加水定容至1000ml,置于小口瓶中,贴上标签。

4、有机物母液配制,按母液要求浓缩50倍,除蔗糖按3%单独临时称量外,其余分别称量后,溶解,定容在500ml容量瓶中,置于小口瓶中保存,贴上标签。

5.母液最好在2~4℃的冰箱中贮存,特别是有机类物质,贮存时间不宜过长,无机盐母液最好在一个月内用完,如发现有霉菌和沉淀产生,就不能再使用。

(1) 

制备母液和营养培养基时,所用蒸馏水或无离子水必须符合标准要求,化学药品必须是高纯度的(分析纯)。

(2) 

称量药物采用高灵敏度的天平,每种药品专用一药匙。

生长调节剂母液配制:

为了操作方便,节约时间,生长调节剂也可如同配制母液一样,先配成原液,这样配制培养基时只要稍加计算,按需要量取即可。

不同药品在配制时若不溶于水,可用少量不同的溶剂先溶解,萘乙酸(NAA),吲哚乙酸(IAA),赤霉素(GA3),2,4-D等生长素和玉米素(ZT)可先用少量95%酒精溶解,然后加水,如溶解不完全再加热。

激动素(KT)和6-苄基嘌呤(BA)可溶于少量1mol/L的盐酸中,叶酸需用少量稀氨水溶解。

称取50mg生长调节物质,溶解后,在100ml的容量瓶中定容,配制的母液每毫升则含有生长调节物质0.5mg,配制后一般要求在低温(0~4℃)保存,配制培养基时如每升(1000ml)需添加的生长调节剂物质为0.5mg时,则取1ml母液即可。

三、培养基配制和灭菌

本次实验使用 

(1)愈伤组织诱导及其幼芽分化培养基:

MS+2,4-D 

0.5 

mg/L 

+6-BA 

1.0 

mg/L;

(2)幼芽增殖培养基:

MS+6-BA 

+NAA 

0.2 

(3)生根培养基:

MS+NAA 

mg/L。

注意事项:

上述培养基均在MS固体培养基溶化后降低到50左右后,加入相应激素所得, 

MS固体培养基的配置过程在此不作过多赘述 

上述培养基均附加3%蔗糖,0.8%琼脂,pH5.8,培养温度25±

2℃,光照强2000lx。

母液吸取量的计算 

配制培养基的升数 

公式1:

母液吸取量= 

母液体积(CC)×

(配制培养基的升数/母液浓缩倍数)

公式2:

(培养基要求的含量/母液每CC的含量)(各种生长调节剂) 

各种母液按顺序编号排列 

A. 

大量元素;

B.CaCl2.2H2O;

C.微量元素 

D.铁盐;

E.有机物;

F.生长素萘乙酸(NAA):

配制0.5mg/ml的NAA称取50mg 

, 

NAA用少量95% 

酒精溶解后加蒸馏水定容至1000ml;

G..细胞分裂素、激动素(KT)配制0.5mg/ml的KT 

称50mgKT用少量1N 

HCL溶解后,加蒸馏水定容至100ml。

配制培养基(1000ml) 

1. 

琼脂:

称取5~7g琼脂,加入300ml蒸馏水,加热溶解直至完全溶解为止. 

2. 

蔗糖3%用质量较好的白糖代替,称取30g白糖,溶于溶有琼脂的300ml蒸馏水

中。

3、各种母液的吸取(培养基1L) 

用50ml量筒量取大量元素母液(A)和CaCl2·

2H2O母液(B)各100ml 

分别用10ml移液管或吸管吸取微量元素(C),铁盐(D)母液各10ml 

(3) 

用10ml移液管或吸管吸取有机物(H)10ml 

(4) 

移取激素 

将上述溶液全部混合于琼脂与蔗糖溶液中,混合均匀后,加热至80℃左右,用酸度计或精密PH试纸测定培养基的PH一般要求5.8~6.0,过酸过碱则用1N 

NaoH和1N 

HCL调整。

分装:

用一个接有胶管的分装器趁热装培养基,1000ml培养基分装到25-30个三角瓶中,每个三角瓶约30ml左右(一般占试管、三角瓶容量1/4~1/3左右)注:

培养基勿碰瓶壁。

包装:

分装好的三角瓶用封口膜包扎好,标明培养基代号即可进行灭菌。

用具清理和洗涤:

各种母液按原位置摆整齐,用过的量筒,移液管、烧杯、铝锅等用水洗涤干净,然后按次序放回原处。

四、培养基的灭菌——高压蒸汽灭菌(高压蒸汽灭菌锅的使用方法)

具体操作步骤:

高压锅放水至平把架;

把包扎好的培养基装入高压锅;

3. 

盖上热压锅盖,上紧螺帽(注意对角拧紧螺帽)关上气阀和安全阀. 

4. 

然后接通电源. 

5. 

压力计升至0.05MPa时,打开放气阀,排除冷空气(此步很重要)。

6. 

排除冷空气后,关闭放气阀,待压力升到0.11MPa位置时,开始计算灭菌时间,具体方法:

当压力锅指针升至0.12MPa时,关闭电源,待指针下降至0.11MPa时接通电源,不断重复此操作过程,维持20分钟。

7. 

灭菌时间达到20分钟后,除去电源,打开放气阀(注意要逐渐放气)待高压锅内的空气完全排除后,打开热压灭菌锅盖(注意对角扭松螺帽)稍待冷后再把培养基取出。

8. 

经过灭菌的营养培养基不宜放置太长,应尽早使用,但为了在使用前能检查培养基有无微生物污染,可将培养基置于25℃下保存4天,如果培养基需要贮存较长时间,可在4℃低温下保存。

 

灭菌高压锅有大型卧式、中型立式、小型手提式等多种型号和规格,无论哪种型号,操作的步骤都很相近。

进水→放进培养基→盖紧锅盖→关上放汽阀→检查安全阀→接上加热源→待压力升至0.05MPa时排锅内冷空气,关上放气阀→0.11MPa(121℃)下灭菌20~25分钟,保持稳定压力→除热源→逐渐打开放气阀→锅内空气排除完后→开放锅盖→稍冷后取出培养基。

五、植物材料表面灭菌——消毒剂灭菌

外界或室内选取的植物材料,都不同程度地带有各种微生物。

这些污染源一旦带入培养基,便会造成培养基污染。

因此,植物材料必须经严格的表面灭菌处理,再经无菌操作手续接到培养基上,这一过程叫做接种。

1、接种步骤:

第一步:

清理材料→→流水冲洗→→加入吐温(或洗衣粉)清洗 

→→自来水冲洗 

第二步:

对材料的表面浸润灭菌 

70%酒精浸10-30秒→→无菌水 

第三步:

灭菌剂处理→→ 

0.1-1%升汞5-8 

min(或其他灭菌剂) 

第四步:

无菌水进行冲洗 

1.灭菌剂一般要临时配制,现配现用.升汞可以短期储存。

2.对去除较容易的灭菌剂灭菌后无菌水冲洗3-4次,升汞一般5-8次,每次不少于3min 

3.灭菌时要轻轻的搅拌,消除气泡,使消毒更彻底。

4.灭菌时间是从倒入消毒液开始,至倒入无菌水时为止。

5.灭菌液要充分浸没材料。

2、无菌操作可按以下步骤进行:

(1)在接种3天前用甲醛熏蒸接种室,并于接种前3小时打开其内紫外线灯进行杀菌;

(2)在接种前20分钟,打开超净工作台的风机以及台上的紫外线灯;

(3)接种员先洗净双手,在缓冲间换好专用实验服,并换穿拖鞋等;

(4)上工作台后,用酒精棉球搽拭双手,特别是指甲处。

然后搽拭工作台面;

(5)先用酒精棉球搽拭接种工具,再将镊子和剪刀从头至尾过火一遍,然后反复过火尖端处,对培养皿要过火烤干;

(6)接种时,接种员双手不能离开工作台,不能说话、走动和咳嗽等;

材料吸干后,一手拿镊子、一手拿剪刀或解剖刀,对材料进行适当的切割。

(如叶片切成0.5cm2的小块;

茎切成含有一个节的小段。

微茎尖要剥成只含1-2片叶原基)在接种过程中要经常灼烧接种器械,防止交叉污染。

(7)接种完毕后要清理干净工作台,可用紫外线灯灭菌30分钟,若连续接种,每5天要大强度灭菌一次。

六、烟草叶片愈伤组织的诱导和不定芽的分化

(1)于超净台中彻底冲洗外植体;

70%酒精消毒3min;

无菌水冲洗3遍,每遍3min;

将烟草叶片残留的水分用灭过菌的滤纸吸干;

白瓷板上用消毒的解剖刀分割为1-1.5cm2的小块;

接入相应的MS培养基上,每瓶接种4-5块。

接入

(1)中培养。

(2)约2~3d后,叶片外植体卷曲、增厚、膨胀;

(3)15d后外植体脱分化形成疏松絮状浅黄绿色的愈伤组织,愈伤组织诱导率为100%

(4)30d后,从叶片外植体产生的疏松愈伤组织上分化出许多浅黄绿色芽点

(5)60d后,不仅从愈伤组织上分化出越来越多幼芽,芽诱导频率(芽数/块愈伤组织)为25~35,而且还可观察到,该愈伤组织较早分化产生的幼芽叶片呈现不同程度白化(或缺绿)。

但此时若将此缺绿幼芽切下,转接至不加2,4-D的幼芽增殖培养基

(2)上。

(6)3~5d后即可恢复正常,缺绿症状消失,并可不断增殖,发育成绿色健壮

的小苗。

七、诱导生根及移栽与数据记录

取约3~4cm长的无根小苗接种于生根培养基(3)中,约7~8d后,几乎所有外植体均从其基部产生白色幼根,根诱导频率为3~5,部分在培养基表面的根具大量白色根毛。

当试管苗长至5~6cm高时,打开瓶口,在散射光下放置2d后取出,洗去根部残留培养基,种植于经过消毒的珍珠岩、泥炭土和菜园土等量混合的基质中,成活率可达95%以上。

烟草叶片愈伤组织诱导情况

编号

每瓶接种数

愈伤组织诱导率

愈伤组织状态

染菌率

烟草叶片愈伤组织再生植株情况

分化率

每个愈伤组织分化芽数

分化情况

烟草叶片诱导生根情况

生根率

生根情况

再生植株分化根数

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