SiemensAdvia系列生化仪参数详细讲解Word文档格式.docx
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所有的Advia系列，都是两个试剂盘，两个试剂针，反应盘是单盘，塑料反应杯，一根样本针。
除ADVIA1200外，都有一个稀释盘和稀释样本针，稀释样本针将原始样本加入到稀释样本盘中，按照最高可达1:
75的比例进行样本稀释，然后通过样本针将稀释后的样本转移到反应盘中。
同样，在反应盘上也可以进行最高1:
75的样本稀释，这样二者相乘，样本的稀释比例高达1:
5625。
稀释样本盘也是塑料杯，有自己单独的搅拌器、冲洗站。
ADVIA的试剂也可以进行稀释，所以节省试剂。
但由于设计理念的关系，其孵育介质有孵育油，也就是油浴。
3M生产的孵育油价格较贵，而且需要半年更换。
除常规的清洗剂外，反应杯空白比色也需要单独的活化剂，加上稀释样本或试剂用的生理盐水，总体下来ADVIA的耗材较多，而且总成本也不少。
所有的ADVIA系列都是R1+S+R2方式。
反应时间可选择：
3分钟、4分钟、5分钟、10分钟、15分钟、长程反应21分钟和31分钟。
ADVIA1200没有稀释样本盘，所以样本直接被转移到反应杯上。
加样速度4.5秒，读点13.5秒，R1+S后读第一点，10分钟反应读点42个，R2在19点前加入。
反应杯总数231个，反应体积为80-430ul，R1和R2加入体积范围在5-300ul之间。
3分钟（最后读点14）、4分钟（最后读点18）、5分钟（最后读点21）、10分钟（最后读点42）、15分钟（最后读点63）、长程反应21分钟和31分钟。
ADVIA1650和1800加样速度为3秒，读点时间是6秒，R1+S后读第一点，10分钟反应读点98个，R2在49点前加入。
反应杯总数221个，反应体积为80-300ul，R1和R2加入体积范围在15-150ul之间。
ADVIA2400加样速度为2秒，读点时间是14秒，R1+S后读第一点，10分钟反应读点41个，R2在22点前加入。
反应杯总数340个，反应体积为60-180ul，R1和R2加入体积范围在10-100ul之间。
二、基本参数介绍：
主读点：
M.DET.Pm/n也就是MainDetectpoint的简写，m和n是主读点区的起止点，0<
m<
n，也就是说m和n两点是在启动反应后的两个点，m点的读点必须设置，n可以不设置（填写0就是不设置），双试剂中是指R2加入之后的一组时间点，据此计算吸光度速率或平均值用于浓度计算；
子读点：
S.DET.Pp/r。
也就是subsidiaryDetectpoint的简写，p和r是子读点区的起止点，0<
p<
r,r点可以不设置。
子读点是指需要读取反应空白的区域，一般指启动反应之前的试剂和样本空白，在双试剂中是指R2加入前的一组时间点。
读点：
N，在终点法反应中，读点不小于三个，如果小于三个，系统自动前移满足三个。
在速率法当中，读点不能少于六个，如果小于六个，系统自动前移满足六个。
根据反应方法，子读点可以选择也可以不选择。
u/d和U/D旗标：
U和u表示上限，D和d表示下限，当超过小写u/d范围时，用大写U/D显示。
空白：
Blank（u/dU/D），这里指的是试剂空白的上下限。
就是以去离子水为样本的检测，主要用来监测试剂性能，是以主读点区主波长的吸光度值为基准的，当试剂的空白吸光度超过u/d上下限范围，就会用U/D显示出来，提醒操作人员注意试剂问题。
试剂空白是可以选择是否进行监测的。
Blanku/d的定义是，在下降速率当中，Blanku也就是空白上限为2ABS，Blankd为主读点吸光度的50%；
在上升速率当中，Blanku也就是空白上限为最高主读点吸光度的150%，Blankd为主读点吸光度的50%。
图1Blanku/U/d/D示意图
修正点：
E2。
E2表示试剂和样本加入后的几个点的吸光度值，用来进行LIH（乳糜、黄疸、溶血等标本）或底物耗尽的监测。
E2都将监测试剂空白以及样本加试剂的结果，也就是说E2=样本+R1的E2吸光度减去试剂空白的E2吸光度。
读点前移：
Point-Forwarding。
在速率法中，高浓度样本往往很快消耗完反应物，而底物却大量存在，速率反应很快停止。
当系统监测到这种情况时，会自动将主读点前移至发生速率反应的区域。
在使用读点前移的技术时，需要增加一个主读点M.DET.Pl，l<
n。
如果m和n主读点被监测到发生底物耗尽，那么自动前移读取l和m之间的读点。
图2读点前移示意图
图2所示中，m和n点之间出现底物耗尽现象，由于设置了l点，所以自动将读点移至l和m之间读取。
同样，l和m以及m和n之间要多于6个读点。
如果判断底物耗尽，就要借助样本吸光度限制这个概念。
样本吸光度限制：
Sampleu/d。
Sampleu或d只能选择一个，这是根据反应方向的不同而设定的，下降速率反应将只有Sampled，上升速率反应将只有Sampleu。
其要求监测R2加入之前和之后的数个读点的吸光度值，依然是主波长的吸光度值。
R2加入之前的监测点就是我们前面说的E2，R2加入之后的监测点是主读点区的最后两个点，叫做选择点。
E2和选择点进行计算：
Sampleu/d=选择点的吸光度-（E2*K）
其中：
E2=样本和R1的E2点吸光度值–试剂空白的E2点吸光度值
K=（R1+S）/（R1+S+R2）是体积系数。
当E2用于底物耗尽探测时，读点自动选取第7点，这样会避开LIH因素干扰。
判断依据，在下降速率反应中，当Sampled大于选择点吸光度时，认为是底物耗尽；
在上升速率反应中，当Sampleu小于选择点吸光度时，认为是底物耗尽。
图3底物耗尽示意图
图3的所示中，Sampled大于主读点区m和n最后两点的吸光度值，所以判断为底物耗尽，自动将读点前移到l和m点。
这里有一个问题，如果m点也处于底物耗尽的区域怎么办？
前移的结果也会不准确。
所以ADVIA的读点前移技术并不是那么可靠，为了保证可靠，其采用了非常复杂的计算方式，目的只有一个，规避东芝的弹性速率法。
这里简单的介绍一下弹性速率法。
其原理是监测速率反应的主读点区，并根据设置的吸光度差值进行没两个相邻读点的吸光度差，当实际读取的吸光度差值小于设定的吸光度差值时，就会判断为底物耗尽。
而底物耗尽判断后自动将读点前移至预先设置的两个点的区域，这样可以充分避开ADVIA中的如果m点也在底物耗尽区域的可能。
读点前移不在这里做详细介绍，后面有单独的章节。
反应方法：
有五个选择，EPA、RRA、2PA、CRA和IMA；
EPA反应方法：
就是常说的终点法，可以是一点终点法，也可以是两点终点法。
一点终点法时，子读点p和r无效，填为0；
两点终点法时，子读点p和r要填写，而且要在R2加入之前。
终点法读点要求至少三个点，不足三个点时，系统自动前移补足。
图4EPA终点法示意图
RRA反应方法：
也就是常说的速率法，可以是单速率法，也可以是双速率法。
采用单速率法时，读取主读点区的m和n的区域进行每分钟速率计算。
采用双速率法时，还要读取R2加入之前的子读点区p和r的区域进行每分钟速率计算，然后主读点和子读点相减再进行浓度计算。
使用速率法时，系统将自动进行E2吸光度计算。
但在参数设置，可以选择是否选择E2corre，也就是是否选择E2修正。
用DO或NotDo选择。
在速率法当中，Blanku/d必须输入，并且可以选择在R2加入前一点插入检查点CHECKD.P.I，此检查点将于试剂空白数据进行比较，借以判断试剂是否有问题。
但此法仅在下降速率法和IMA方法中使用。
如果不使用，则填写0。
当然，在速率法当中，也可以选择底物耗尽监测而增加的主读点M.DET.P.l。
图5RRA速率法示意图
2PA反应方法：
也就是常说的两点速率法。
也是速率法的变种，区别在于不进行主读点间的两个点的线性监测。
其余与速率法完全一样。
图62PA两点法示意图
CRA反应方法：
官方说法为随着时间的变化反应接近恒定，曲线由最小二乘法拟合，也有称为固定点法。
大致意思是选择读点区的两个点进行吸光度值得最小二乘法计算。
是根据时间和吸光度的数值进行计算的，无论是速率法还是终点法均可采用。
当子读点被采用时，p=r≠0，或p≠0，r=0时，是速率法，速率计算是根据两点间曲线的正切线；
当p<
r时，用两点间连接直线进行计算。
当不采用子读点时，为终点法，采用最大时间吸光度和空白吸光度进行计算。
说实话，真不知道这个方法是做什么项目的，中文没有解释，英文的解释很少，也没发现实例。
图7CRP固定点法示意图
IMA反应方法：
也就是免疫比浊法。
是采用最小二乘法计算的速率法。
对于R1的加入量太少，无法进行E2计算时，这个方法就变得有用了。
也就是说，在很多免疫比浊项目里，R1的加入量往往小于R2的量，所以引发了一系列的计算和判别上的困难，IMA就是为了解决这个难题的。
样本和第一试剂加入量太少，就无法进行E2的计算，没有E2就无法进行前带监测和底物耗尽的监测，所以在IMA方法中R2之后插入监测点CheckD.P.I,用于弥补R1和S的不足。
采用IMA方法设置检查点后，系统自动计算limitvalues值（设备默认0.003），此法对浑浊样本的处理很有成效，所以用在免疫比浊项目上。
图8IMA免疫比浊法示意图
图9IMA应用示意图
IMA的其它使用方法与速率法一样，仅限于R1+S低于反应杯最小容量的测试项目里。
如果不存在这样的项目，那么即便是免疫比浊项目，也应该采用常规速率法或终点法。
定标方法：
因数定标、线性定标和非线性定标；
在参数界面里的Calcmthd，也就是计算方式里，有ABS和STD/MSTD选择，表示吸光度和单点定标/多点定标计算。
在ADVIA的所有机型里，定标中的零浓度点用试剂空白替代，所以在定标之前要做试剂空白，如果不做试剂空白，仪器会认为试剂空白就是原点。
注意这个差别，与奥林巴斯的不同。
奥林巴斯的试剂空白和零浓度校准点是两个概念，而在adiva里合二为一。
参数界面里的Formula，也就是公式才是选择定标方法的地方。
因数定标：
如果在Calcmthd里选择ABS，那就意味着你要采用因数定标，那么在Formula里只有一个可以选择，那就是Linear,因数定标只能用于线性定标。
因数定标也就是直线方程里的Y=KX+B中的K，所以也叫K值定标法。
而B的确定则需要试剂空白，所以因数定标法必须做试剂空白，然后结合给出的K值进行定标曲线的绘制，然后依据这个曲线进行浓度计算。
在Advia中，K值的给出是在参数界面的Standardssetting中的FV中。
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