临床常见标本的采集方法Word文档下载推荐.docx

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查结果；

2．选择动脉血管后,常规皮肤消毒,用动脉采血针〔内有肝素垂直刺入血管,针管自动吸入0.5ml后,用消毒干棉球压住穿刺处快速拔出针头。

局部按压5min以上,防止血肿形成；

3．拔出后立即将针头用橡皮封闭,隔绝空气。

随即挫动注射器,使血液与肝素充分混匀,立即送检。

送检过程中要防止针头橡皮脱落,造成空气直接进入注射器。

如有不慎脱落,必须如实向检验人员说明情况,并告知临床医生,以免影响检验结果和临床诊断。

如确因不能及时送检,可将标本短时间内保存于4℃冰箱中。

三、生化检验标本的采集

注意病人生理因素对检验结果的影响,如年龄、性别、体型、情绪、运动、体位改变等。

研究表明,CH、ALP、UA等项目易受年龄的影响,性激素的测定男女差别巨大。

受情绪影响较大的项目有GLU、GH、CA、Cor、PRL等。

另外,血清中CH、ALB、ALT、ALP、AST、TG、AMY及血清Ca等项目受体位改变因素影响较大。

还应注意饮食对测定结果的影响,包括病人是否真正空腹及不进流食。

空腹一般控制在12—16h最佳,过长或过短对某些测定结果可产生影响,如GLU、BUN、CR、ALB、UA、TG、电解质、肝功能等。

个别项目需病人控制饮食,如血脂测定前最好连续素食3天,以防产生假性结果。

注意药物对测定结果的影响,目前以证明至少有100多种药物对多项生化检验结果有影响,如利胆剂可使血清CH升高；

肝素使血清CH降低,APTT显著升高,大剂量的维生素C对氧化酶法测定血清GLU有负干扰,CH、TG的Trinder反应产生负干扰,咖啡因造成血GLU、CH增高,冠心平导致血清中TG和LDH增高,大剂量青霉素可使血清CK、ALT、CR升高而BIL降低等。

尽可能在标本采集前2d停服药物,却因治疗需要无法停药者,应在检验申请单上注明用药种类和剂量,以备参考。

此外,对采样时间要求严格的检验项目,应详细告诉病人真确记录时间,何时采取标本等事宜,如24h尿蛋白和电解质测定,糖耐量试验等。

对于如激素易受生理因素影响的项目,需多次测定时,最好选择每天的同一时间采样,以便减少昼夜变化的影响,便于比较和分析。

四、葡萄糖耐量试验标本的采集

OGTT检查前三天停用胰岛素、肾上腺皮质激素等药物,可正常饮食〔每天碳水化合物量一般控制在250—300g。

试验前一天晚上餐后不再进食〔空腹8—124h。

标本采集后应立即送检,切忌不同时间点的多份标本采集后一起送检。

五、血液流变学标本的采集

采集前三天停用具有溶栓抗凝作用和降脂的药物,女性避开月经期。

采集前空腹12h以上,前一天晚上低脂饮食,患者处于静息状态。

避免在输液过程中采血,禁止在输液手臂同侧采集血液,抽血时病人取坐位肘部静脉采血。

采血后立即送检并检测,最好在4h内完成,存放于4℃冰箱可延长至12h.血样不宜在0℃以下存放,以免RBC发生破裂。

六、疟原虫标本的采集

间日疟及三日疟患者应在发作后数小时至十余小时采血为宜,恶性疟患者应在发作开始时采血。

怀疑疟疾的患者一次检查阴性应多次复查,必要时骨髓涂片检查疟原虫。

采集的静脉血标本应尽快送检,标本应及时制成学膜片。

血膜片可于室温中保存,尽早检查。

七、微丝幼标本的采集

以晚上22时至次日凌晨2时病人从睡眠中醒来后,立即采血为宜。

如夜间采血确有困难的病人可采用诱出法,即在白天口服海群生2~6mg/kg体重,15~30min后采集血液。

采用试管浓集法：

取含有0.4ml枸橼酸钠的真空试管〔黑色盖子,采集静脉血2ml注入试管,轻轻颠倒混匀6~8次,防止标本凝固。

标本采集后应尽快送检,并及时制成血膜片尽快检查。

检验后的剩余血液可以放在冰箱保存3d

八、乳酸测定标本的采集

检测前三天,待检者不要做剧烈运动,抽取标本前禁食12h.。

在患者处于安静状态后2h采集标本,并嘱患者不可用力握拳。

九、血药浓度监测标本的采集

对于治疗药物的检测,应根据药代动力学选择服药后的最适时间抽血检测。

欲了解药物的长期效应,通常在药物的第5个半衰期〔药物的稳定期采血；

欲了解药物的峰值效应,通常在用药1~2h采集〔地高辛和毛地黄毒苷为6~8h。

十、激素检测标本的采集

许多激素在一天24h内的分泌量不同的。

如可的松在血液中的峰值为早晨4~6时,GH、LH和FSH均以阵发性方式释放。

在测定此类激素时,有必要采集连续时间间隔的数份血标本,以其中间值为测定值；

而血清中肾素活性在体位由卧位变为站位时,将出现明显增高。

ACTH分泌峰值期在6~10时,低值期在0~4时,波动幅度为150%~200%。

妇科激素采血前建议静坐30min,标本采集前需要停止类固醇药、甲状腺素、ACTH、雌激素或性腺激素的治疗,否则会影响检测结果。

抽血检查时患者和医生应准确把握月经周期,以便解释检验结果。

十一、尿液分析表本的采集

患者留取标本前24h禁止服用维生素C等药物,勿食深色素食物。

禁服磺胺类药物,禁止加甲醛等防腐剂。

嘱患者清洁尿道口及周围皮肤,防止粪便、清洁剂、粉剂、油类及有色物质等污染尿液。

最好留取晨尿或"

二次晨尿"

〔清晨排空膀胱,空腹收集2h的尿液,也可随时留取中段尿,尿量不少于10ml。

尿标本2h内送检,避免强光照射。

十二、尿三杯试验标本的采集

取尿杯3个,标明1、2、3。

于清晨第一次排尿时,分为三段排于3个尿杯中,每杯不少于5ml。

第一杯留取最前段部分尿液,第二杯留取中段尿液,第三杯尽量留取最后段部分尿液。

注意尿液要一次性排出,中间不可间断,留尿后立即送检。

十三、尿红细胞位相标本的采集

留取标本前病人按常规尿检准备。

留取早晨第一次尿的中段尿〔晨尿10ml于洁净容器中〔必要时清洗外阴,2~8℃冷藏保存。

早上8时到检验科时,留取新鲜的中段尿10ml于洁净容器里〔必要时清洗外阴,两次留取的尿液一并及时送检。

注意留尿前不要喝大量的水〔B超以后的尿不能用且保证尿样不受污染〔女性以避开行经期。

十四、24h尿蛋白定量标本的采集

留取标本前病人按常规尿检准备。

准备一洁净、无污染的干燥盛尿大容器,从检验科领取5ml甲苯作为防腐剂。

具体步骤：

1.在收集标本的第一天〔如早晨7时,病人排空膀胱中的的尿液,弃去不要。

此后,连续收集24h的全部尿液排入大容器中。

留取第一次尿液时把5ml甲苯一并倒入；

2.在结束收集标本的第二天〔如早晨7时,病人排空膀胱中的尿液,收集于盛尿容器里；

3.准确测量并记录总尿量；

4.充分混匀全部尿液,取出约5ml于常规尿管中,贴上标识,送检验科检测,其余尿液弃去不要。

注意24h留尿完毕后,须将全部标本充分混匀,准确记录尿量,再取出约10ml检测标本。

十五、大便常规标本的采集

必须使用洁净、干燥、无吸水性的的容器,禁止用棉拭子、纸巾、纸盒等留取或存放。

尽量选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便,外观无异常的粪便必须从表面、深处和粪端多处获取标本。

检查绕虫卵时,需用软黏透明纸拭子,在清晨排便前自肛门周围拭取标本,也可用棉拭子拭取,但必去立即送检。

检查痢疾阿米巴滋养体,应于排便后迅速送检,立即检查。

冬季采取保温措施。

十六、精液常规标本的采集

检查前禁欲〔性生活、手淫及遗精3~7d,已明确精子形成低下时,应禁欲7d后再收集标本。

排精次数与禁欲时间可能对检查结果产生一定的影响,有报道禁欲时间过长,精液量虽然增多,但精子活力有所下降。

留取标本前排净尿液,必要时清洗外阴部。

用手淫或其他的方法,将一次射出的全部精液收入洁净、干燥的加盖容器内,有报道分布射精收集的各段精液分析中,最前段精液中精子的密度最高,以后各段渐依次减少,故精液采集时应收集全部标本。

勿使用可能被酸碱污染或对精子产生影响的容器,乳胶或避孕套内含有抑制精子活力的滑石粉,应禁止使用。

标本送检时需正确注明采样时间,30min内保温送检。

精液常规检查如果出现一次异常结果,应隔1周后再复查,连续检查2次至数次,间隔应大于7d不能仅凭一次检查结果作出判断。

十七、常见临床微生物标本的采集

微生物检验工作的成败除了实验室的能力和效率外,很大程度上要看标本采集和送检环节的质量。

由于标本的采集和处理不当,可能造成检验结果的假阳性和假阴性。

因此微生物标本的采集应遵循如下原则：

1.尽量在抗菌药物使用前采集标本。

采集标本前应至少停药3d.如病人不能停药,应在下次抗生素使用前采集。

2.标本采集时,应严格执行无菌操作,减少或避免机体正常菌群及其他杂菌的污染。

3.标本采集后应立即送至微生物实验室,放置时间过长会影响检验结果。

如不能立即送检,一般应放2~8℃冷藏的条件下保存〔血液培养采集后若不能及时送检,可于室温保存。

某些菌种〔淋病奈瑟均、脑膜炎奈瑟菌、嗜血杆菌、肺炎链球菌等。

不仅要及时送检,而且再送检的过程中要注意保温。

4.盛标本的容器必须经灭菌处理〔到微生物实验室领取,但不得使用消毒剂和酸类剂处理,以免残留物影响细菌的生长。

送检时,标本切勿污染容器的瓶口和外壁,防止污染和传播。

5.送检标本应注明标本来源和检验目的,以正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。

1.血液及骨髓标本的采集：

采血的部位多为肘中静脉,疑为亚急性细菌性心内膜炎时,以肘动脉和股动脉采血：

为宜。

切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采血。

采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养瓶前,应更换针头或过火消毒。

血培养瓶不用时放常温即可,不必放在冷藏室。

采血次数及间隔时间：

急性发热性疾病〔如脑膜炎、细菌性肺炎等需尽快进行抗菌治疗。

急性骨髓炎、化脓性关节炎等需要紧急手术的患者,立即从两臂分别采取2份标本。

对感染性心内膜炎的患者再24h内采血3次,每次间隔不少于30min,必要时次日再作血培养2次。

对发热原因不明者两次抽血间隔为60min,必要时于24~48h后再抽血2次。

国外资料统计,1次血培养菌血症的检出率为80%,2次可达90%,3次可达99%.每次采血量成人5~10ml,婴幽儿为1~2ml。

培养基：

血液为10：

1,以稀释血液中的抗生素、抗体、补体、溶菌酶等杀菌物质。

有人主张对于长期接受抗菌药物治疗的病人,培养基：

血液应大于20：

1.骨髓一般采集1~2ml

血标本的采集和培养各环节必须严格无菌操作,以免发生标本的污染。

同时,不可将血培养中出现的不常见细菌或一些皮肤表面的正常细菌随意的判断为污染菌。

因为对一些大量使用抗生素、免疫制剂以及机体免疫力降低的病人,条件致病菌或非致病菌均可引起菌血症、败血症。

两次血培养结果为同一种细菌,患者2~3周后血中抗体效价明显升高,应该作为菌血症的病原菌处理。

厌氧菌培养应作为血培养检查的常规方法,特别是疑为厌氧菌感染者。

同时还必须注意L型细菌的培养。

2.脑脊液标本的采集：

对患者进行腰椎穿刺,采集脑脊液3~5ml,盛于无菌试管和血培养瓶中送检。

脑脊液标本尽量在抗生素治疗前采集,穿刺过程中应严格无菌操作,防止污染。

由于脑膜炎奈瑟氏菌离体后容易自溶,流感嗜血杆菌及肺炎链球菌容易死亡,故标本采集后应立即送检微生物实验室。

脑膜炎奈瑟氏菌等许多细菌对外界抵抗力比较弱,应注意保暖、防止干燥和日光直射。

为防止采集的标本