全国细菌耐药监测网技术方案版.docx

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全国细菌耐药监测网技术方案版

全国细菌耐药监测网技术方案（2020年版）

全国细菌耐药监测网（ChinaAntimicrobialResistanceSurveillanceSystem，CARSS）是唯一由政府建立，覆盖全国二、三级医疗机构的大型细菌耐药性监测网络。

通过本监测网络，可获取有科学价值的、分层的细菌耐药性及变迁信息，掌握全国细菌耐药性流行趋势及新威胁，为政府、卫生行政部门制定相关政策及评估干预措施的有效性提供科学依据。

全国细菌耐药监测网包括主动监测和被动监测两种形式，常规开展被动监测，定期或不定期开展主动监测。

主动监测技术方案根据监测目标另行制定。

本方案仅涉及被动监测。

为了维持监测结果的有效性及可比性，保证监测结果质量，特制订本方案。

本方案由国家卫生计生委合理用药专家委员会全国细菌耐药监测学术委员会讨论通过，每年审核，定期修订。

一、监测范围

收集网点医院按规范化操作、自临床标本中分离的有临床意义和公共卫生意义的普通细菌及其抗菌药物敏感性试验（以下简称药敏试验）结果。

以收集资料为主，必要时，收集菌株用于复核结果和质量控制。

为了提高监测数据质量，各网点医院应提高临床标本，特别是无菌体液标本送检率；提高送检标本，特别是痰液、血液标本合格率。

各实验室应提高细菌，特别是苛养菌的检出率，应掌握分离细菌的临床意义，注意收集感染病原菌。

二、目标细菌

目标细菌为自临床标本中分离的有临床意义的细菌，包括以下标本及细菌：

（一）无菌部位标本（血液、脑脊液、骨髓、胸水、膀胱穿刺尿、腹水、无菌腔隙穿刺液、组织等）来源的所有非污染细菌；

（二）开放部位合格标本（痰、咽拭、尿液、粪便等）来源的具有临床意义的细菌。

三、目标细菌鉴定

采用专业认可的鉴定系统或手工方法进行目标细菌鉴定。

所有分离细菌尽可能鉴定到种，如表皮葡萄球菌，而非凝固酶阴性葡萄球菌。

四、抗菌药物敏感性试验

根据国际标准、行业要求或仪器制造商建议，规范地进行药敏试验，可采用手工法、仪器法，报告抑菌圈直径（mm）、最小抑菌浓度（MIC值，µg/ml）。

全国细菌耐药监测网不接受仅为“耐药（R）”、“中介（I）”、“剂量依赖敏感（SDD）”、“敏感（S）”的报告结果。

采用自动或半自动仪器进行药敏试验时，应按照仪器制造商的要求补充试验，报告经补充试验确认的药敏结果。

商品化药敏试验药物浓度范围若不覆盖判断折点，需根据本院临床需要及本方案要求进行补充试验，报告经补充试验确认的药敏结果。

五、特殊耐药性检测方法（不包含分子生物学检测方法）

（一）甲氧西林（苯唑西林）耐药葡萄球菌（MRS）

1、金黄色葡萄球菌和路邓葡萄球菌甲氧西林（苯唑西林）耐药性 

待测菌按照纸片扩散法操作步骤，采用30µg头孢西丁纸片于33～35℃孵育16～18h，或按照微量肉汤稀释法操作步骤，33～35℃孵育，头孢西丁16～20h，苯唑西林24h。

头孢西丁≤21mm或≥8µg/ml，或苯唑西林≥4µg/ml为甲氧西林（苯唑西林）耐药金黄色葡萄球菌或路邓葡萄球菌。

2、路邓葡萄球菌、伪中间葡萄球菌、施氏葡萄球菌、表皮葡萄球菌以外的凝固酶阴性葡萄球菌甲氧西林（苯唑西林）耐药性 

待测菌按照纸片扩散法操作步骤，采用30µg头孢西丁纸片于33～35℃孵育24h，或按照微量肉汤稀释法操作步骤，采用苯唑西林于33～35℃孵育24h，头孢西丁≤24mm或苯唑西林≥0.5µg/ml为甲氧西林（苯唑西林）耐药凝固酶阴性葡萄球菌（MRCNS）。

头孢西丁纸片法若18h后即出现耐药可报告为MRCNS。

3、表皮葡萄球菌甲氧西林（苯唑西林）耐药性

采用头孢西丁纸片法、苯唑西林微量肉汤稀释法检测。

检测方法同2。

待测菌亦可按照纸片扩散法操作步骤，采用1µg苯唑西林纸片于33～35℃孵育16～18h，苯唑西林≤17mm为甲氧西林（苯唑西林）耐药表皮葡萄球菌。

4、伪中间葡萄球菌和施氏葡萄球菌甲氧西林（苯唑西林）耐药性

采用苯唑西林纸片法或微量肉汤稀释法检测。

检测方法同表皮葡萄球菌。

（二）青霉素不敏感肺炎链球菌

对于苯唑西林纸片抑菌圈直径≤19mm的肺炎链球菌，需使用MIC方法测定其对青霉素的敏感性。

（三）高水平氨基糖苷类药物耐药肠球菌筛选试验

1、纸片扩散法 

将0.5麦氏浊度待测菌菌悬液接种于MH平板，贴120µg庆大霉素或300µg链霉素纸片，35±2℃孵育16～18h，抑菌圈直径6mm为耐药、≥10mm为敏感，7～9mm为不确定，需以微量肉汤稀释法或琼脂稀释法确认。

2、微量肉汤稀释法 

按照微量肉汤稀释法标准操作要求将待测菌菌悬液接种于含500µg/ml庆大霉素脑心浸液肉汤（BHI）于35±2℃孵育24h，或接种于含1000µg/ml链霉素的BHI肉汤于35±2℃孵育24～48h（若24h敏感继续孵育），任何生长为耐药。

2、琼脂稀释法 

将10µl0.5麦氏浊度待测菌菌悬液接种于含500µg/ml庆大霉素BHI平板于35±2℃孵育24h，或接种于含2000µg/ml链霉素BHI平板于35±2℃孵育24～48h（若24h敏感继续孵育），＞1个菌落为耐药。

（四）金黄色葡萄球菌和肠球菌属对万古霉素敏感性

万古霉素MIC≥8µg/ml菌株筛查试验：

将0.5麦氏浊度待测金黄色葡萄球菌菌悬液10µl或肠球菌菌悬液1～10µl接种于含6µg/ml万古霉素的BHI平板（最好用微量移液管滴加，也可以用棉拭子在菌悬液中浸润后挤干，涂布直径10～15mm或划线接种），35±2℃孵育24h，＞1个菌落可能为金黄色葡萄球菌对万古霉素敏感性减低或肠球菌属对万古霉素耐药。

（五）β-内酰胺酶检测

1、葡萄球菌属

（1）青霉素MIC≤0.12µg/ml或抑菌圈直径≥29mm的金黄色葡萄球菌 待测菌按照纸片扩散法操作步骤，10U青霉素纸片35±2℃孵育16～18h，如纸片边缘界限清晰（cliff现象）为β内酰胺酶阳性，否则为阴性。

（2）青霉素MIC≤0.12µg/ml或抑菌圈直径≥29mm的金黄色葡萄球菌和凝固酶阴性葡萄球菌 以头孢硝噻吩纸片刮取MH或血琼脂平板孵育16～18h后青霉素或头孢西丁纸片抑菌圈边缘菌落，室温1小时或遵循产品说明书，出现红色/粉红色为β-内酰胺酶阳性。

当金黄色葡萄球菌头孢硝噻吩试验阴性时，需经青霉素纸片边缘试验确证其是否为产β-内酰胺酶菌株。

2、流感嗜血杆菌和卡他莫拉菌

以头孢硝噻吩纸片刮取35±2℃孵育的HTM平板（流感嗜血杆菌）或35℃孵育20～24h后MH平板（卡他莫拉菌）上的菌落，红色/粉红色为β-内酰胺酶阳性。

（六）克林霉素诱导性耐药试验

1、葡萄球菌属 

按照纸片扩散法操作步骤，将0.5麦氏浊度待测菌菌悬液接种于MH平板，15µg红霉素纸片和2µg克林霉素纸片边缘相距15～26mm，35±2℃孵育16～18h，与红霉素相邻侧抑菌圈出现“截平”（D形抑菌圈）或克林霉素抑菌圈内有薄雾状生长时为阳性，应报告克林霉素耐药；或将0.5麦氏浊度待测菌菌悬液接种于含4µg/ml红霉素和0.5µg/ml克林霉素的阳离子调节MH肉汤（CAMHB），35±2℃孵育18～24h，任何生长为阳性，应报告克林霉素耐药。

2、肺炎链球菌和β溶血链球菌 

按照纸片扩散法操作步骤，将0.5麦氏浊度待测菌菌悬液接种于含5%羊血的MH平板或胰酶大豆琼脂平板（TSA），15µg红霉素纸片和2µg克林霉素纸片边缘相距12mm，35±2℃,5%CO2孵育20～24h，与红霉素相邻侧抑菌圈出现“截平”（D形抑菌圈）或克林霉素抑菌圈内有薄雾状生长时为阳性，应报告克林霉素耐药；或将0.5麦氏浊度待测菌菌悬液接种于含1µg/ml红霉素和0.5µg/ml克林霉素的CAMHB（含2.5%～5%溶解马血），35±2℃孵育20～24h，任何生长为阳性，应报告克林霉素耐药。

六、目标药物

我国幅员广阔，各医疗机构用药习惯不同，同一种细菌药敏试验所选择的药物不尽相同。

为使耐药监测结果能有效应用于抗菌药物临床使用及管理，下表斜体加粗的抗菌药物为各种属细菌必须监测的药物，其他为建议监测药物。

除必须监测的药物外，其他监测药物由各医疗机构微生物学、药学、感染病学专家讨论，遵循以下原则确定：

（一）参照国际、行业要求，并根据标准每年度更新（应至少遵循上一年度的标准）；

（二）根据各种属细菌特点，选择相应药物进行药敏试验。

尽量包括本医院临床有效的常用抗菌药物，适当选择临床少用但使用价值高的药物；

（三）根据耐药监测结果调整监测药物种类。

                                 表：

全国细菌耐药监测网监测药物

细菌名称

监测药物（斜体加粗者为必须监测药物）

葡萄球菌属

青霉素、苯唑西林1、庆大霉素、红霉素、克林霉素、左氧氟沙星（或环丙沙星）、万古霉素2、替考拉宁、利奈唑胺、达托霉素（除外呼吸道标本）2a、SMZco、头孢洛林、夫西地酸、四环素（或米诺环素或多西环素）、利福平、呋喃妥因（尿标本）

肺炎链球菌

分离自脑脊液的肺炎链球菌：

青霉素2、万古霉素、阿莫西林/克拉维酸、头孢曲松2（或头孢噻肟2）、美罗培南2

分离自脑脊液以外的肺炎链球菌：

青霉素2（或苯唑西林纸片3）、红霉素、克林霉素、左氧氟沙星（或莫西沙星）、万古霉素、SMZco、阿莫西林/克拉维酸2、头孢呋辛2、头孢曲松2（或头孢噻肟2）、美罗培南2、利奈唑胺

β溶血链球菌群4

红霉素、克林霉素、青霉素（或氨苄西林）、头孢曲松（或头孢噻肟、头孢吡肟）、万古霉素、左氧氟沙星

草绿色链球菌群

青霉素2（或氨苄西林2）、红霉素、克林霉素、左氧氟沙星、万古霉素、头孢曲松（或头孢噻肟、头孢吡肟）

肠球菌属

青霉素（或氨苄西林）、庆大霉素（高浓度）或链霉素（高浓度）、左氧氟沙星（或环丙沙星）、万古霉素、替考拉宁、达托霉素（除外呼吸道标本）2a、利福平、利奈唑胺、米诺环素（或多西环素）、呋喃妥因（尿标本）、磷霉素（尿标本，粪肠球菌）

流感嗜血杆菌和副流感嗜血杆菌

氨苄西林、氨苄西林/舒巴坦、头孢呋辛（或头孢克洛）、头孢曲松（或头孢噻肟）、美罗培南（脑脊液标本）、左氧氟沙星（或莫西沙星）、SMZco、阿奇霉素

肠杆菌科细菌（大肠埃希菌、克雷伯菌属、变形杆菌属、肠杆菌属、枸橼酸杆菌、沙雷菌属等）

氨苄西林、头孢唑林、头孢呋辛、头孢西丁、头孢曲松（或头孢噻肟）、头孢他啶、氨曲南、阿莫西林/克拉维酸、氨苄西林/舒巴坦、头孢哌酮/舒巴坦、哌拉西林/他唑巴坦、头孢吡肟、亚胺培南（或美罗培南）5、庆大霉素（或妥布霉素）、阿米卡星、左氧氟沙星（或环丙沙星）、SMZco、头孢洛林、四环素（或米诺环素或多西环素）、替加环素6、多黏菌素2、头孢他啶/阿维巴坦、磷霉素（尿标本，大肠埃希菌）、呋喃妥因（尿标本）

肠杆菌科细菌（志贺菌属、沙门菌属）

氨苄西林、头孢曲松（或头孢噻肟）7、左氧氟沙星、SMZco、氯霉素7

铜绿假单胞菌

哌拉西林、哌拉西林/他唑巴坦、头孢他啶、氨曲南、头孢哌酮/舒巴坦、头孢吡肟、亚胺培南（或美罗培南）、庆大霉素（或妥布霉素）、阿米卡星、左氧氟沙星（或环丙沙星）、多黏菌素2、头孢他啶/阿维巴坦

不动杆菌属

头孢他啶、头孢噻肟（或头孢曲松）、氨苄西林/舒巴坦、头孢哌酮/舒巴坦、哌拉西林/他唑巴坦、头孢吡肟、亚胺培南（或美罗培南、多尼培南）、庆大霉素（或妥布霉素）、阿米卡星、左氧氟沙星（或环丙沙星）、多黏菌素2、四环素（或米诺环素或多西环素）、替加环素6、SMZco

嗜麦芽窄食单胞菌

左氧氟沙星、SMZco、米诺环素、头孢他啶2、氯霉素2

洋葱伯克霍尔德菌

头孢他啶、SMZco、美罗培南、左氧氟沙星 2、米诺环素、氯霉素2

其他非肠杆菌科细菌2

头孢他啶、头孢吡肟、氨曲南、亚胺培南（或美罗培南）、哌拉西林/他唑巴坦、庆大霉素（或妥布霉素）、阿米卡星、左氧氟沙星（或环丙沙星）、SMZco

淋病奈瑟菌8

头孢曲松（或头孢克肟）、四环素、环丙沙星、青霉素、大观霉素、阿奇霉素2

注释：

“1”表示葡萄球菌属细菌对苯唑西林的药敏试验方法参照本文件五

（一）。

“2”表示须用MIC法。

“2a”表示只能用肉汤稀释法。

“3”表示当OXA≤19mm时，须用MIC方法测定青霉素敏感性。

“4”表示对β内酰胺类不需常规做药敏。

“5”表示当CRE检出率＜1%时需对检测结果复核。

“6”表示自动化仪器或纸片扩散法检测替加环素敏感性，结果为中介或耐药时需采用微量肉汤稀释法进行确认。

“7”表示仅用于肠道外分离菌株。

“8”常规不需做药敏。

七、数据收集与上报

详见《全国细菌耐药监测网信息系统数据上报标准》。

（一）数据录入

     采用WHONET软件录入质控数据、向临床报告的药敏试验结果以及其它监测数据。

（二）数据上报

质控数据及监测数据上报周期为每季度1次。

每季度第一个月15日前，通过“全国细菌耐药监测网信息系统”完成上一季度监测数据传送，并及时确认反馈信息。

（三）数据审核与反馈

所有上报数据将通过“全国细菌耐药监测网信息系统”自动进行汇总、审核、反馈。

审核合格的数据将进入系统数据库进行分析。

用户上传的不合格数据信息将反馈至用户并在修正后重新接受。

八、质量控制

全国细菌耐药监测网网点医院至少应遵循以下质量控制要求：

（一）培养基、试剂

     新批号或新购入相同批号的培养基应进行无菌试验、生长试验、生长抑制试验（适用时）。

新批号或新购入相同批号的试剂、染色剂应以质控菌株（已知结果的菌株）进行质控。

全国细菌耐药监测网不接受无质控要求的自动或半自动鉴定、药敏仪器的检测结果。

（二）抗菌药物敏感性试验

1、日常质控 应每周以质控标准菌株对向临床报告及向本监测网报告的所有药物进行质控。

若检测频率小于每周1次，则每个检测日应进行质控。

2、失控处理 日常质控失控时，连续检测20～30天，每一组药物/细菌超出参考范围（抑菌圈直径或MIC）的频率应不超过（≤）1/20或3/30；也可采用替代质控方案，即连续5天，每天对每一组药物/细菌重复测定3次，每次单独制备接种物，15个数据超出参考范围（抑菌圈直径或MIC）的结果应不超过（≤）1个，若失控结果为2～3个，则如前述，再进行5天，每天3次重复试验，30个数据失控结果应不超过（≤）3个。

此后，恢复日常质控。

采用自动或半自动仪器进行药敏试验时，应按照仪器制造商的要求进行质控。

（三）结果复核

全国细菌耐药监测网将定期或不定期收集网点医院监测菌株进行鉴定、药敏复核。

九、特殊情况处理

当出现下列不常见耐药现象时，各监测网点医院首先需自行复核实验结果，若确认结果属实，需立即与省级监测中心联系，必要时，省级监测中心向全国细菌耐药监测网质量管理中心报告，决定是否送菌。

请同时保留菌株直至收到反馈信息。

各省级监测中心将确认情况反馈至申请复核单位，同时，需上报国家卫生计生委合理用药专家委员会，由全国细菌耐药监测学术委员会讨论后提出具体措施和意见。

（一）不常见耐药菌

至少包括：

1、对万古霉素、替考拉宁、利奈唑胺、达托霉素及替加环素中介及耐药的葡萄球菌；

2、对青霉素耐药的化脓性链球菌。

（二）菌种转运

按菌种运送要求取新鲜菌种转种于平皿、冻存管或转运培养基中，在符合生物安全要求的条件下，通过有资质的快递公司寄送。

附件2

全国细菌耐药监测网网点医院微生物实验室质量和能力要求（2020年版）

为了保证全国细菌耐药监测结果的准确性，不断提高监测工作质量，遏制细菌耐药性增长，特对影响细菌耐药性监测结果准确性的因素提出规范性要求，包括检验前、中、后全过程，人员、设备、设施、环境、方法学等各方面。

一、人员

微生物实验室负责人应满足以下要求：

①具有医学及其相关专业或生物学本科及以上学历，从事微生物检验工作至少3年，或具有医学及其相关专业专科学历，从事微生物检验工作至少5年；②具有中级或以上专业技术职称；③具备细菌学检验质量控制、生物安全相关知识；④具有培训、沟通、管理等能力。

负责细菌耐药监测数据上报人员应从事细菌检验工作至少1年，能够正确使用全国细菌耐药监测信息系统完成数据上报工作，并应用统计软件对本院细菌耐药性监测数据进行分层分析。

从事细菌检验的新员工或离岗半年及以上员工经评估合格后方可独立操作。

从事细菌检验人员应相对固定（至少固定2人），数量满足工作需要，每年需参加专业学习，包括自行组织学习、线上学习、外出学习等形式。

二、设施与环境

设施和环境应与检测内容相适应。

（一）布局

微生物实验室若为独立单元，应划分为实验区和非实验区。

实验区应具有安全运行、清洁、维护所需空间，有足够的空间摆放随时使用的物品；非实验区应有存放私人物品的设施、工作人员用餐和休息的场所。

微生物实验室若为临床实验室的一部分而非独立单元，可与其它实验室共享非实验区。

（二）设施

1.温度、湿度、通风 应依据所用分析设备和实验过程的要求，制定环境温、湿度控制要求并记录。

应有温、湿度失控时的处理措施并记录。

2.照明 避免阳光直射。

灯光能够分区控制，以便根据需要调节光线。

3.水槽 安装足够的水槽供染色、废液处理和洗手等使用。

洗手水槽应独立设置，不可与处理标本的水槽混用。

水龙头应为非手触式，备洗手液。

实验室出口附近最好安装洗手水槽，以供工作人员离开时洗手。

4.工作台 工作台面大小、高度适宜，材料应光滑、致密、耐用，易清洁、消毒，抗污染。

放置重型设备的工作台足够牢固，减少震动。

    5.其他 应配备个人防护装备，如护目镜、防护服、手套、口罩、帽子，以及必要的消防、防盗等安全设施。

实验室应配置不间断电源（UPS）和（或）双路电源以保证关键设备（如需要控制温度和连续监测的分析仪、培养箱、冰箱等）的正常工作。

宜配备含酒精速干手消毒剂。

（三）生物安全

微生物实验室是对病原菌进行分离、培养、鉴定等临床检测工作的特殊场所，其设计和管理应在风险评估的基础上，确定实验室生物安全水平，确保工作人员在安全的条件下开展工作，遵循安全、舒适、高效的原则，满足以下基本要求：

①至少符合生物安全2 级（BSL2）标准；②尽可能减少病原菌对实验室内部以及外部环境的污染；③有足够空间放置仪器设备，工作人员能够安全地从事检验工作和质量控制活动。

国家卫生健康委员会（原卫生部）制定的《人间传染的病原微生物名录》明确规定了各种病原体操作的防护要求，检验过程中发现高致病性病原体时，应按相关法规的要求处理。

由于实验室可能接触高于预期风险的标本，故具有潜在生物危害的标本应在生物安全柜中开盖、处理。

信息有限标本的风险评估可参考医学、流行病学资料，如发病率、病死率、可疑传播途径、暴发调查资料、标本来源地信息。

      三、设备和试剂

实验室设备的种类和数量应满足临床需要，至少包括：

生物安全柜、CO2培养箱、普通培养箱（包括温度可调培养箱）、冰箱、光学显微镜、细胞离心机、组织碾磨器具、游标卡尺（适用时），以及与细菌分离、培养、鉴定、药物敏感性试验相适应的试剂（含培养基、质控菌株等）。

（一）设备校准和计量学溯源

新设备经性能验证，且满足要求方可用于患者标本检测。

应遵循国家、行业要求制定设备和试剂校准、检定周期，并保存记录。

鉴定仪、药敏仪、血培养仪的校准应满足制造商的要求，其他建议如下：

1、每12个月进行检定或校准的设备宜包括：

生物安全柜（高效过滤器、气流、负压等参数）、CO2培养箱（CO2浓度显示计、温度显示器或温度计）、细胞离心机、压力灭菌器、游标卡尺、普通培养箱（温度显示器或温度计）、温度计、移液器、微量滴定管或自动分配器。

2、每6个月进行检定或校准的设备应包括浊度仪。

3、保存仪器功能监测记录的设备宜包括：

温度依赖设施（冰箱、培养箱、水浴箱、加热块等每日记录温度）、CO2培养箱（每日记录CO2浓度和温度）、超净工作台（定期做无菌试验）、压力灭菌器（至少每个灭菌包外贴化学指示胶带、内置化学指示卡，定期进行生物监测）。

（二）设备维护与维修

制定预防性维护计划并记录的设备至少应包括：

生物安全柜、CO2培养箱、鉴定仪、血培养仪、压力灭菌器、超净工作台、显微镜和离心机。

如果设备故障影响了方法学性能，如自动化药敏仪器的光学系统故障，在设备修复、校准后，实验室应通过检测质控菌株或已知结果标本的方式进行性能验证。

（三）试剂和耗材验收

试剂和耗材验收试验应符合如下要求：

1、新批号及每一货次试剂和耗材使用前，通过新旧批号平行实验或常规质控等方法进行验证，并记录。

2、新批号及每一货次试剂和耗材，如吲哚试剂，杆菌肽，奥普托辛，X、V、XV 因子纸片等使用阴性和阳性质控菌进行验证。

3、新批号及每一货次的药敏试验纸片使用前以标准菌株进行验证。

4、新批号及每一货次的染色剂（如革兰染色）使用已知阳性和阴性（适用时）的质控菌株进行验证。

5、新批号及每一货次直接抗原检测试剂（无论是否含内质控）使用阴性和阳性外质控进行验证。

6、培养基外观良好（平滑、水分适宜、无污染、适当的颜色和厚度，试管培养基湿度适宜），新批号及每一货次的商品或自配培养基应检测相应的性能，包括无菌试验、生长试验或与旧批号平行试验、生长抑制试验（适用时）、生化反应（适用时）等，应以质控菌株进行验证；

7、一次性定量接种环每批次抽样验证。

（四）自配试剂和耗材记录

自配试剂或培养基，应记录制备过程，内容至少包括：

1、培养基（试剂）名称和类型；

2、配制日期和配制人员；

3、培养基（试剂）的体积；

4、分装体积；

5、成分及其含量、制造商、批号；

6、最初和最终pH值（适用时）；

7、无菌措施，包括实施的方式、时间和温度（适用时）；

8、储存条件及时间。

四、检验前过程

（一）标本采集手册

实验室应遵循行业标准或指南编写、定期审核标本采集和运送标准化操作程序供医务人员查阅并遵照执行（相关技术资料可参考下文“参考文献”）。

“标本采集手册”除符合通用要求外，还应明确规定以下内容：

1.不同部位标本的采集方法，如：

明确说明并执行血培养标本采集的消毒技术、采血量。

诊断成人不明原因发热、血流感染时应在24h内不同部位至少采集2套，每套2瓶（需氧、厌氧各一瓶）；

2.合格的标本类型、送检次数、标本量；

3.明确规定需要尽快运送的标本；

4.合适的运送培养基；

5.延迟运送标本的保存方法及期限；

6.安全运送方法（如：

密封容器、无标本外漏等）。

（二） 申请单信息

除一般要求外，应标明标本来源和种类，必要时说明感染类型和（或）目标微生物、抗菌药物使用信息。

（三）标本采集和运送

应遵循实验室制定的“标本采集手册”采集和运送标本。

医务人员应记录标本采集时间，并尽可能记录患者自采标本的采集时间。

（四）标本接收

实验室接收的所有标本均应进行纸质或电子登记，记录接收时间，拒收以下标本：

①容器不适合或泄漏，如培养标本未置无菌容器或标本渗漏；②标本错误或不恰当，如培养标本含福尔马林等固定液、Foley导尿管头培养、拭子干涸；③送检时间延迟或转送温度不适合。

五、检验过程

实验室应遵循行业标准或指南制定合格标本（或不合格标本）标准、各种标本处理的标准化操作程序、标本保留期限（用于核对或必要的补充试验），宜建立紧急检查程序，明确需要紧急处理的标本类型、检验项目，并遵照执行（相关技术资料可参阅“参考文献”）。

（一）细菌培养和鉴定

所选择的涂片、染色技术、培养基、培养环境应能识别、分离相应病原菌；鉴定方法应符合相关要求，如：

通过革兰染色、菌落形态、生长条件、代谢反应、生化和酶活性、血清学、抗菌药物耐药谱等特性鉴定。

组织标本应碾磨后检验；痰培养应先染色镜检评估标本合格性，至少接种血平板和巧克力平板；尿液常规进行定量培养