《环境微生物学》和《大气污染控制工程》实验教案.docx
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《环境微生物学》和《大气污染控制工程》实验教案
三、《环境微生物学》和《大气污染控制工程》部分
实验一水中细菌总数的测定
一、目的要求
l.学习水样的采取方法和水样细菌总数测定的方法。
2.了解水源水的平板菌落计数的原则。
二、基本原理
本实验应用平板菌落计数技术测定水中细菌总数。
由于水中细菌种类繁多,它们对营养和其他生长条件的要求差别很大,不可能找到一种培养基在一种条件下,使水中所有的细菌均能生长繁殖,因此,以一定的培养基平板上生长出来的菌落,计算出来的水中细菌总数仅是一种近似值。
目前一般是采用普通肉膏蛋白胨琼脂培养基。
三、器材
l.培养基:
肉膏蛋白胨琼脂培养基,无菌水。
2.仪器或其他用具:
灭菌三角烧瓶,灭菌的带玻璃塞瓶,灭菌培养皿,灭菌吸管,灭菌试管等。
3.玻璃器皿的洗涤和灭菌
3.1玻璃器皿的洗涤
①新购置的玻璃器皿,因含游离碱,应先在此2%盐酸中浸泡数小时,用自来水冲洗干净,再用蒸馏水冲洗1-2次并沥干。
②培养细菌的玻璃器皿,应先经高压蒸汽灭菌,趁热倒出培养基,用热肥皂水或洗涤剂洗刷残渍,再用清水冲洗干净,最后用蒸馏水冲洗1-2次,沥干。
③洗涤剂吸管量,可先置3%来苏液内浸30min或高压政策蒸汽灭菌,再用洗涤剂洗涤,用清水及蒸馏水冲洗干净。
④洗涤染色瓶时,可在5%漂白粉中浸泡24h后,再用常规方法洗涤干净。
⑤含油脂的玻璃器皿,应单独高压灭菌洗涤,趁热倒出污物,置100℃干燥箱内烘0.5h,再放入5%碳酸氢钠水中煮沸,先去脂再行常规洗涤。
3.2玻璃器皿的灭菌
(1)高压蒸汽灭菌
这是应用研究最广泛的灭菌方法,灭菌是用高压蒸汽灭菌锅进行。
手提式高压蒸汽灭菌器,使用方便,其操作方法主注意事项如下:
①打开锅盖或从加入口处向锅内加入适量的水。
②加水后,将待灭菌器皿放入锅内,不要塞得过紧,以使锅内温度均匀,再将锅盖盖好,拧紧螺旋,使其密封。
③打开放气阀,打开热源加热至水沸腾,让锅内冷空气充分逸出。
否则锅内温度达不到压力表所指示的对应温度,灭菌不彻底。
当冷空气由排气孔排尽后,再关紧放气活塞。
等锅内蒸汽压上升至所需压力时,控制热源,维持所需时间,一般为0.10343MPa(121℃)表压,保持20min。
④灭菌完毕,关闭热源,必须待压力自然降至“0”时,方可启盖取出灭菌物品,否则易发生危险。
(2)干热灭菌
实验室中常用的还有热空气灭菌的方法,即将洗干净的待灭菌器皿均匀放入恒温干燥箱内,便不得与内层底板直接接触。
关闭箱门,开户电源开关,用恒温调节器,使温度上升至160-170℃,维持2h,即可达到灭菌目的。
灭菌完毕后,需关闭电源开关,待温度降至50℃以下时,方可开门取物,否则玻璃器皿可因骤冷而爆裂。
4.培养基的制备
配制一般培养基的主要程序可分为:
调配、溶化、调节Ph、澄清过滤、分装、灭菌、鉴定等步骤。
①调配:
按培养基配方准确称取各成分,用少量水溶解。
对于肉膏之类粘、胶状物,可盛在小烧杯或表面皿中称量,然后加水移入培养基中。
此外,也可放在称量纸上称量后直接放入水中,这时如稍微加热,肉膏便会与称量纸分离,然后立即取出纸片。
蛋白胨等极易吸潮物质,在称取时动作要迅速。
此外,维生素、氨基酸、无机盐等微量成分,可预先配制高深度的贮备液,在配制培养基过程中再按配方比例取一定量加入培养液中即可。
②融化:
将各成分混匀于水中,最好以流通蒸汽融化0.5h,如在电炉上融化应随时搅拌,如有琼脂成分时,应注意防止外溢。
融化后,应注意补充失去的水分,补足至原体积。
制备大量培养基时,除玻璃器皿外,还可用搪瓷桶、铝锅等容器加热融化,但不可用锅或铁锅,以免金属离子进入培养基中影响细菌生长。
③调节pH值:
一般细菌用的培养pH调整在6.8-7.2之间,但也有需要酸性或碱性的培养基。
培养基高压灭菌后,pH值约降低0.1-0.2,故调节时应比实际需要的pH值高0.1-0.2。
但有时也可降低0.4,因所使用的灭菌器不同而不同。
调节pH值,用盐酸和氢氧化钠,因为在相同pH值下,有机酸比无机更易抑制微生物生长,因此,除非特殊情况,最好不要用乙酸等有机酸来调节pH值。
一般用精密pH试纸调节(精确到0.1pH单位),必要时也可酸度计。
调节时需注意逐步滴加,勿使过酸或过碱而破坏培养基中某些组分。
④过滤澄清:
培养基配成后,一般都有沉渣或混浊,需过滤,使其清晰透明方可使用。
液态培养基常用滤纸过滤;固态培养基如琼脂培养基,加热后需趁热用脱脂棉或多层纱布过滤。
⑤分装:
将调节pH值后的培养基按需要趁热分装于三角瓶或试管内,以免琼脂冷凝。
分装量不宜超过容器的2/3,以免灭菌时外溢。
分装时应注意勿使培养基粘附于管口与瓶口部位,以免沾染棉塞而滋生杂菌。
基础培养基一般常分装于三角瓶内,分装的量应根据使用目的和要求决定,但必须定量分装,以便灭菌后使用。
琼脂斜面分装量为试管容量的1/5,灭菌后须趁热放置成斜面,斜面长度约为试管长度的2/3。
半固体培养基分装量约占试管长度的1/3,灭菌后趁热直立,待冷却凝固。
高层琼脂分装量约为试管长度的1/3,灭菌后直立凝固待用。
琼脂平板是将灭菌后的培养基,冷却至50℃左右,在无菌条件下倾入灭菌平皿内。
内径9cm的平皿倾注培养基约15ml左右,使培养基平铺于皿底部,凝固后即成。
倾注培养基时,切勿将皿盖全部启开,以免空气中尘埃及细菌落入。
新制成的培养平板,表面水分较多,不利于细菌的分离,通常应将平皿倒扣置于37℃培养箱内约30min,待平板干燥后使用。
⑥灭菌:
加热配制培养基后,在2h内进行了灭菌处理。
不要把未灭菌的培养基冷藏或存放。
绝大多数培养基都应放在高压灭菌器内于121℃灭菌,并应在达到这一温度后持续15min。
糖类液态培养基或含有其他特殊成分的培养基,高压蒸汽灭菌会使其分解,一用滤膜过滤灭菌。
或者将不耐热物质用其他方法灭菌(如流通蒸汽灭菌)后,再加入已灭菌的培养基中。
⑦保存:
配制好的培养基,不宜保存过久,以少量勤配制为宜。
每批应注明制作日期。
已灭菌的培养基可在4-10℃存放1个月。
存放时应避免阳光直射,并且要避免杂菌浸入和液体蒸发。
当发酵管中的液体培养基存放在冰箱或者适中的低温时,可能有空气溶解进去,以致在37℃培养时,会在管内形成空气泡。
因此,凡存放在低温的发酵管,使用前应先予以培养过夜,弃去有气泡的管子。
液态培养基在室温下存放超过一周,可能有水分蒸发,如果管内液体损失10%,应弃去不用。
5.各种培养基的成分与制备
为减少配制中的误差,尽量选用市售已配好的综合培养基。
(1)营养琼脂培养基
蛋白胨 10g 牛肉浸膏 3g
氯化钠 5g 琼脂 15-20g
蒸馏水 1000ml
将上述成分混匀后,调节pH为7.4-7.6,过滤去除沉淀,分装于玻璃容器中,经121℃高压蒸汽灭菌15min,贮存于暗处备用。
(2)乳糖蛋白胨培养液
蛋白胨 10g 牛肉浸膏 3g
氯化钠 5g 乳糖 5g
1.6%溴甲酚紫乙醇溶液 1ml
蒸馏水 1000ml
将蛋白胨、牛肉浸膏、乳糖、氧化钠加热溶解于1000ml蒸馏水中,调节pH为7.2-7.4,再加入1.6%溴甲酚紫乙醇溶液1ml,充分混匀,分装于含有倒置的小玻璃管的试管中,于高压蒸汽灭菌器中,在115℃高压蒸汽灭菌20min,贮于暗处备用。
此培养基适用于检验大肠菌群时作发酵试验用。
根据实际需要,也可按上述配方比例(除蒸馏水外)配成二倍、三倍或五倍浓缩的乳糖蛋白胨培养液,制法同上。
(3)品红亚硫酸钠培养基(多管发酵用)
蛋白胨 10g 乳糖 10g
琼脂 20-30g 磷酸氢二钾 3.5g
无水亚硫酸钠 5ml 蒸馏水 1000ml
5%碱性品红乙醇溶液 20ml
①贮备培养基:
先将琼脂加至900ml蒸馏水中,加热溶解,然后加入磷酸氢二钾及蛋白胨,渴匀使其溶解,再以蒸馏水补足至1000ml,调节pH为7.2-7.4。
趁热用脱脂棉或多层纱布过滤,再加入乳糖,混匀后定量分装于烧瓶内,置高压蒸汽器中,在115℃高压蒸汽灭菌20min。
贮于暗处备用。
②平板培养基:
将上述贮备培养基加热融化。
以无菌操作,根据瓶内培养基的容量,用灭菌吸管按1:
50的比例吸取一定量的5%碱性品红乙醇溶液置于灭菌空试管中;再按1:
200的比例称取所需的无水亚硫酸钠置于另一灭菌空试管内,加灭菌水少许使其溶解,再置于沸水浴中煮沸10min灭菌。
用灭菌吸管吸取已灭菌的亚硫酸钠溶液,滴加于碱性品红乙醇溶液内至深红色褪成淡红色为止(不宜多加)。
将此混合液全部加入已融化的贮备培养基内,并充分混匀(防止产生气泡)。
立即将此种培养基适量(约15ml)倾入已灭菌的空平皿内,待其冷却凝固后,倒置冰箱内备用。
此种已制成的培养基于冰箱内保存不宜超过两周,如培养基已由淡红色变成深红色,则不能再用。
(4)伊红美蓝培养基(ERB培养基)
蛋白胨 10g 乳糖 10g
琼脂 20g 磷酸氢二钾 2.0g
蒸馏水 1000ml 2%伊红(曙红)水溶液 20ml
0.5%美蓝(亚甲基蓝)水溶液 13ml
①贮备培养基:
先将琼脂加至900ml蒸馏水中,加热溶解,然后加入磷酸氢二钾及蛋白胨,渴匀使其溶解,再以蒸馏水补足至1000ml,调节pH为7.2-7.4。
趁热用脱脂棉或多层纱布过滤,再加入乳糖,混匀后定量分装于烧瓶内,置高压蒸汽器中,在115℃高压蒸汽灭菌20min。
贮于暗处备用。
②平板培养基:
将上述贮备培养基加热融化。
以无菌操作,根据瓶内培养基的容量,用灭菌吸管按比例吸取一定量的2%伊红水溶液及0.5%美蓝水溶液加入已融化的培养基内,并充分混匀(防止产生气泡)。
当混合好的培养基冷却至45℃,便立即将此种培养基适量(约15ml)倾入已灭菌的空平皿内,待其冷却凝固后,倒置冰箱内备用。
四、操作步骤
l.水样的采取
(1)自来水:
先将自来水龙头用火焰烧灼3min灭菌,再开放水龙头使水流5min后,以灭菌三角烧瓶接取水样,以待分析。
(2)池水、河水或湖水:
应取距水面l0~15cm的深层水样,先将灭菌的带玻璃塞瓶,瓶口向下浸入水中,然后翻转过来,除去玻璃塞,水即流入瓶中,盛满后,将瓶塞盖好,再从水中取出,最好立即检查,否则需放入冰箱中保存
2.细菌总数测定
(1)自来水
①用灭菌吸管吸取lml水样,注入灭菌培养皿中。
共做两个平皿。
②分别倾注约15mL己溶化并冷却到45℃左右的肉膏蛋白胨琼脂培养基,并立即在桌上作平面旋摇,使水样与培养基充分混匀。
③另取一空的灭菌培养皿,倾注肉膏蛋白胨琼脂培养基15mL作空自对照。
④培养基凝固后,倒置于37℃ 温箱中,培养24h,进行菌落计数。
⑤两个平板的平均菌落数即为lml水样的细菌总数。
(2)池水、河水或湖水等
①稀释水样:
取3个灭菌空试管,分别加入9ml灭菌水。
取lml水样注入第一管9ml灭菌水内、摇匀,再自第一管取1ml至下一管灭菌水内,如此稀释到第三管,稀释度分别为10-1、10-2与10-3。
稀释倍数看水样污浊程度而定,以培养后平板的菌落数在30~300个之间的稀释度最为合适,若三个稀释度的菌数均多到无法计数或少到无法计数,则需继续稀释或减小稀释倍数。
一般中等污秽水样,取10-1、10-2、10-3三个连续稀释度,污秽严重的取10-2、10-3、10-4三个连续稀释度。
②自最后三个稀释度的试管中各取lmL稀释水加入空的灭菌培养皿中,每一稀释度做两个培养皿。
③各倾注15ml已溶化并冷却至45℃左右的肉膏蛋白胨琼脂培养基,立即放在桌上摇匀。
④凝固后倒置于37℃培养箱中培养24h。
3.菌落计数方法
(1)先计算相同稀释度的平均菌落数。
若其中一个平板有较大片状菌苔生长时,则不应采用,而应以无片状菌苔生长的平板作为该稀释度的平均菌落数。
若片状菌苔的大小不到平板的一半,而其余的一半菌落分布又很均匀时,则可将此一半的菌落数乘2以代表全平板的菌落数,然后再计算该稀释度的平均菌落数。
(2)首先选择平均菌落数在30~300之间的,当只有一个稀释度的平均菌落数符合此范围时,则以该平均菌落数乘其稀释倍数即为该水样的细菌总数。
(3)若有两个稀释度的平均菌落数均在30~300之间,则按两者菌落总数之比值来决定。
若其比值小于2,应采取两者的平均数;若大于2,则取其中较小的菌落总数。
(4)若所有稀释度的平均菌落数均大于300,则应按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数。
(5)若所有稀释度的平均菌落数均小于30,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数。
(6)若所有稀释度的平均菌落数均不在30~300之间,则以最近300或30的平均菌落数乘以稀释倍数。
五、实验报告
1.结果
(1)自来水
(2)池水、河水或湖水等
2.思考题
(1)从自来水的细菌总数结果来看,是否合乎饮用水的标准?
(2)你所测的水源水的污秽程度如何?
(3)国家对自来水的细菌总数有一标准,那么各地能否自行设计其测定条件(诸如培养温度,培养时间等)来测定水样总数呢?
为什么?
实验二、实验室环境和人体表面微生物的检查
一、目的要求
1.证明实验室环境与体表存在微生物。
2.比较来自不同场所与不同条件下细菌的数量和类型。
3.观察不同类群微生物的菌落形态特征。
4.体会无菌操作的重要性。
二、基本原理
平板培养基含有细菌生长所需要的营养成分,当取自不同来源的样品接种于培养基上,在适宜温度下培养1~2d内每一菌体即能通过很多次细胞分裂而进行繁殖,形成一个可见的细胞群体集落,称为菌落。
每一种细菌所形成的菌落都有它自己的特点,例如菌落的大小,表面干燥或湿润、隆起或扁平、粗糙或光滑,边缘整齐或不整齐,菌落透明或半透明或不透明,颜色以及质地疏松或紧密等。
因此,可通过平板培养来检查环境中细菌的数量和类型。
三、器材
l.培养基:
肉膏蛋白胨琼脂平板。
2.仪器或其他用具:
无菌水,灭菌棉签(装在试管内),接种环,试管架,酒精灯或煤气灯,记号笔,废物缸。
四、操作步骤
每组在“实验室”和“人体”两大部分中各选择一个内容做实验,或由教师指定分配,最后结果供全班讨论。
l.写标签
任何一个实验,在动手操作前均需首先将器皿用记号笔做上记号,写上班级、姓名、日期,本次实验还要写上样品来源(如实验室空气或无菌室空气或头发等),字尽量小些,写在皿底的一边,不要写在当中,以免影响观察结果。
培养皿的记号一般写在皿底上。
如果写在皿盖上,同时观察两个以上培养皿的结果,打开皿盖时,容易混淆。
2.实验室细菌检查
(1)空气:
将一个肉膏蛋白胨琼脂平板放在当时做实验的实验室,移去皿盖,使琼脂培养基表面暴露在空气中;将另一肉膏蛋白胨琼脂平板放在无菌室或无人走动的其他实验室,移去皿盖。
lh后盖上两个皿盖。
(2)实验台和门的旋钮
①用记号笔在皿底外面中央画一直线,再在此线中间处画一垂直线。
②取棉签:
左手拿装有棉签的试管,在火焰旁用右手的手掌边缘和小指、无名指夹持棉塞(或试管帽),将其取出,将管口很快地通过煤气灯(或酒精灯)的火焰,烧灼管口;轻轻地倾斜试管,用右手的拇指和食指将棉签小心地取出。
塞回棉塞(或试管帽),并将空试管放在试管梁上。
③弄湿棉签:
左手取灭菌水试管,如上法拨出棉塞(或试管帽)并烧灼管口,将棉签插入水中,再提出水面,在管壁上挤压一下以除去过多的水分,小心将棉签取出,烧灼管口,塞回棉塞(或试管帽),并将灭菌水试管放在试管梁上。
④取样:
将湿棉签在实验台面或门旋钮上擦拭约2cm2的范围。
⑤接种:
在火焰旁用左手拇指和食指或中指使平皿开启成一缝,再将棉签伸人,在琼脂表面顶端接种,即滚动一下,立即闭合皿盖。
并按图27-2E和F,将原放棉签的空试管拨出棉塞(或试管帽),烧灼管口,插入用过的棉签,将试管放回试管架。
⑥划线:
另取接种环在火焰上灭菌,按图3—3方法进行划线,整个划线操作均要求无菌操作,即靠近火焰,而且动作要快。
3.人体细菌的检查
(1)手指(洗手前与洗手后)
①分别在两个琼脂平板上标明洗手前与洗手后(班级、姓名.日期)。
②移去皿盖,将未洗过的手指在琼脂平板的表面,轻轻地来回划线,盖上皿盖。
③用肥皂和刷子,用力刷手,在流水中冲洗干净,干燥后,在另一琼脂平板表面来回移动,盖上皿盖。
(2)头发:
在揭开皿盖的琼脂平板的上方,用手将头发用力摇动数次,使细菌降落到玻脂平板表面,然后盖上皿盖。
A.接种时,用左手将平皿开启一缝;
B.棉签伸入平板接种;
C.用己灭菌并冷却了的接种环划线;
D.第二部分划线;
E.最后部分划线
(3)咳嗽:
将去皿盖的琼脂平板放在离口约6~8cm处,对着琼脂表面用力咳嗽,然后盖上皿盖。
(4)鼻腔
①按照实验台检查法的步骤②和③,取出棉签,并将其弄湿。
②用湿棉签在鼻腔内滚动数次。
③按实验台检查法的步骤⑤和⑥,接种与划线,然后盖上皿盖。
4.将所有的琼脂平板翻转,使皿底朝上,放37℃培养箱,培养1~2d。
五、结果记录方法
(1)菌落计数 在划线的平板上,如果菌落很多而重叠,则数平板最后1/4面积内的菌落数。
不是划线的平板,也一分为四,数l/4面积的菌落数。
(2)根据菌落大小、形状、高度、干湿等特征观察不同的菌落类型。
但要注意,如果细菌数量太多,会使很多菌落生长在一起,或者限制了菌落生长而变得很小,因而外观不典型,故观察菌落的特点时,要选择分离得很开的单个菌落。
菌落特征描写方法如下:
①大小:
大、中、小、针尖状。
可先将整个平板上的菌落粗略观察一下,再决定大、中、小的标准,或由教师指出一个大小范围。
②颜色:
黄色、金黄色、灰色、乳白色、红色、粉红色等。
③干湿情况:
干燥、湿润、粘稠。
④形态:
圆形、不规则等。
⑤高度:
扁平、隆起、凹下。
⑥透明程度:
透明、半透明、不透明。
⑦边缘:
整齐、不整齐。
六、菌落总数计算方法
T—平皿暴露时间(分钟)
七、实验报告
1.结果
(1)将你自已的平板结果记录于下表中。
(2)与其他同学所做的结果进行比较
2.思考题
(1)比较各种来源的样品,哪一种样品的平板菌落数与菌落类型最多?
(2)人多的实验室与无菌室(或无人走动的实验室)相比,平板上的菌落数与菌落类型有什么区别?
你能解释一下造成这种区别的原因吗?
(3)洗手前后的手指平板,菌落数有无区别?
(4)通过本次实验,在防止培养物的污染与防止细菌的扩散方面,你学到些什么?
有什么体会。
实验三 大气环境中TSP的测定
一、目的要求
大气环境中TSP是一种常规的污染物,它们对人体健康、植被生态和能见度等都有着非常重要的直接和间接影响。
因此,对TSP污染物的浓度监测是环境监测中一项重要的工作。
本实验在校园中及附近的工业区、公路傍进行采样分析。
通过本实验,应达到以下目的:
(1)掌握重量量测定大气环境中TSP浓度的方法;
(2)了解TSP污染物对人体健康的危害;
(3)学习环境监测中质量控制和保证的概念。
二、基本原理
通过具有一定切割特性的采样器,以恒速抽取一定体积的空气,空气中粒径小于100μm的悬浮颗粒物被截留在已恒重的滤膜上。
根据采样前、后滤膜质量之差及采样体积,计算总悬浮颗粒物的浓度。
滤膜经处理后,可再进行组分分析。
本方法适用于大流量或中流量总悬浮颗粒物采样器(简称采样器)进行空气中总悬浮颗粒物的测定。
方法的检测限为0.001mg/m3。
总悬浮颗粒物含量过高或雾天采样使滤膜阻力大于10kPa时,本方法不适用。
三、实验仪器和材料
(1)大流量或中流量采样器:
1台,应按HYQ1.1-89《总悬浮颗粒物采样器技术要求(暂行)》的规定。
(2)大流量孔口流量计:
1个,量程0.7-1.4m3/min,流量分辨率0.01m3/min,精度优于±2%。
(3)中流量孔口流量计:
1个,量程70-160L/min,流量分辨率1L/min,精度优于±2%。
(4)U型管压差计:
1个,最小刻度0.1hPa。
(5)X光看片机:
1台,用于检查滤膜有无缺损。
(6)打号机:
1台,用于在滤膜及滤袋上打号。
(7)镊子:
1个,用于夹取滤膜。
(8)超细玻璃纤维滤膜:
10片,对0.3μm标准粒子的截留效率不低于99%,在气流速度为0.45m/s时,单张滤膜阻力不大于3.5kPa,在同样气流速度下,抽取经高效过滤器净化的空气5h,1cm2滤膜失重不大于0.012mg。
(9)滤膜袋:
10个,用于存放采样后对折的采尘滤膜,袋面印有编号、采样日期、采样地点、采样人等项栏目。
(10)滤膜保存盒:
1个,用于保存、运送滤膜,保证滤膜在采样前处于平展不受折状态。
(11)恒温恒湿箱:
1台,箱内空气温度要求在15-30℃范围内可调,控温精度±1℃;箱内空气相对湿度控制在(50±5)%,恒温恒湿箱可连续工作。
(12)总悬浮颗粒物大盘天平:
1台,用于大流量采样器滤膜称量,称量范围≥10g,感量1mg,标准差≤2mg。
(13)分析天平:
1台,用于中流量采样滤膜称量,称量范围≥10g,感量0.1mg,标准差≤0.2mg。
四、实验方法和步骤
1.采样器的流量校准
新购置或维修后的采样器在启用前,须进行流量校准。
其校准方法按仪器使用说明书进行。
2.总悬浮颗粒物含量测试
(1)滤膜准备:
①每张滤膜均需用X光看片机进行检查,不得有针孔或任何缺陷。
在选中的滤膜光滑表面的两个对角上打印编号。
滤膜袋上打印同样编号备用。
②将滤膜放在恒温恒湿箱中平衡24h,平衡温度取15-30℃中任一点,记录下平衡温度与湿度。
③在上述平衡长期保持下称量滤膜,大流量采样器滤膜称量精确到1mg,中流量采样器滤膜称量精确到0.1mg。
记录下滤膜质量m0(g)。
④称量好的滤膜平展地放在滤膜保存盒中,采样前不得将滤膜弯曲或折叠。
(2)安放滤膜及采样:
①打开采样头顶盖,取出滤膜夹。
用清洁干布擦去采样头内及滤膜夹上的灰尘。
②将已编号并称量过的滤膜绒面向上,放在滤膜支持网上,放上滤膜夹,对正,拧紧,使不漏气。
安装好采样头顶盖,按照采样器使用使用说明,设置采样时间,即可启动采样。
③样品采完后,打开采样头,用镊子轻轻取下滤膜,采样面向上,将滤膜对折,放入号码相同的滤膜袋中。
取滤膜时,如发现滤膜损坏,或滤膜上尘的边缘轮廓不清晰、滤膜安装歪斜(说明漏气),则本次采样作废,需重新采样(记录表格见附录C)。
(3)尘膜的平衡及称量:
尘膜在恒温恒湿箱中,与二次滤膜平衡条件相同的温度、湿度下,平衡24h。
在上述平衡条件下称量滤膜,大流量采样器滤膜称量精确到1mg,中流量采样器滤膜称量精确到0.1mg。
记录下滤膜质量m1(g)(记录表格见附录D)。
滤膜增重,大流量滤膜不小于100mg,中流量滤膜不小于10mg。
(4)计算:
式中:
t――累积采样时间,min;
QN――采样器平均抽气流量,即式(1-3)或式(1-4)QHN或QMN的计算值;
K――常数,大流量采样器K=1x106,中流量采样器K=1x109。
(5)测试方法的再现性:
当两台总悬浮颗粒物采样器安放位置相距不大于4m,不少于2m时,同时采样测定总悬浮颗粒物含量,相对偏差不大于15%。
五、数据记录与处理
按下表进行。
六、问题分析与讨论
1.大气环境中的TSP的主要污染来源有哪些?
2.大气环境中的TSP有哪些危害?
3.如何预防TSP的污染?
实验四空气中甲醛污染的测定监测
一、目的要求
室内空气污染对人体健康的影响最为显著,与大气环境相比有其特殊性。
室内空气污染监测是评价居住环境的一项重要工作。
本实验选择刚装修完和装修已久的不同房间,或者在一个刚装修完房间的不同通风条件下,进行采样分析。
通过本实验达